染料 NHS 抗体标记试剂盒的一般操作规程
染料 NHS 抗体标记试剂盒的一般操作规程
概述
Broadpharm 抗体共轭试剂盒含有最流行的磺化活性染料,最适合标记抗体和其他敏感蛋白。该试剂盒提供用于标记抗体的优化试剂,每个抗体可标记 2.5-3 个标签,还提供用于纯化标记分子的脱盐柱。在反应中,染料 NHS 酯是受控的过量反应成分。它在弱碱性 pH 下与抗体赖氨酸的胺基发生反应。抗体的纯化是通过使用离心浓缩器进行尺寸排阻过滤实现的。100 μg 试剂盒可在约 100 μl 容量中标记 50-200 μg 抗体,1 mg 试剂盒可在约 500 μl 容量中标记 1-5 mg 抗体。
注:不建议用该试剂盒标记 IgM 抗体,因为 IgM 在碱性反应条件下可能会变性。该试剂盒也可用于标记非免疫球蛋白。对于不同的蛋白质,染料储备液与蛋白质量的比例可能需要优化。根据蛋白质分子量的不同,染料去除方法可能需要调整。要通过超滤去除游离染料,蛋白质应比超滤膜的截留分子量(MWCO)至少大 3 倍。对于分子量为 10-30 kDa 的蛋白质的超滤,建议使用截留分子量为 3 kDa 的超滤瓶。

注:收到后,将成分 NHS 存放在 -20°C 下,将反应缓冲液存放在 4°C 下。让所有成分达到室温,开瓶前短暂离心,开始连接前立即配制所需的溶液。以下 SOP 是标记山羊抗小鼠 IgG 抗体的示例。
配制工作溶液
1. 抗体工作溶液:在所提供的反应缓冲液成分中,抗体浓度最好为 2 毫克/毫升。
注:
- BP Fluor 488 和荧光素的反应缓冲液为 1M NaHCO3,pH 8.5。其他染料的反应缓冲液为 10mM PBS,pH 7.4。
- 必要时将反应缓冲液中的抗体浓度调整为 2 mg/ml。即 100 微克试剂盒在 100 微升反应缓冲液中加入 200 微克抗体。对于 1 毫克试剂盒,可根据标记反应体积(最大约 500 微升)所需浓度调整含量。
- 应将抗体溶解在提供的缓冲液 B 组份中进行标记反应。
如果抗体溶解在甘氨酸缓冲液中,则必须用 1X PBS 或 1M NaHCO3 进行透析,或使用 Amicon Ultra-0.5,10 kDa 分子量截止值(MWCO)(密理博公司的 Cat # UFC501008),以去除抗体沉淀中广泛使用的游离胺或铵盐(如硫酸铵和醋酸铵)。
- 不纯的抗体或用牛血清白蛋白(BSA)或明胶稳定的抗体不能很好地标记。
- 标记效率随抗体浓度和染料 NHS/蛋白质摩尔混合比(MR)而变化。为获得最佳标记效率,建议最终抗体浓度范围为 1-10 mg/ml。 一般来说,抗体浓度和 MR 越高,染料的标记效率就越高。
- 注:对于抗体 lgG(150KDa),MR 是建议的染料与抗体摩尔比。
表 1: 染料 NHS 的建议混合比 (MR):抗体摩尔比。
|
对于大多数生物应用,这里列出了共轭物的最佳 DOL 供参考。
|
2. 计算活性染料储备溶液的适当体积。

其中
质量:抗体质量(微克)
MW:抗体分子量
MR:表中的活性染料:抗体比率
Conc:下面制备的活性染料储备溶液的浓度(纳摩尔/微升)。
注:100 微克试剂盒为 2 毫微摩尔/微升;1 毫克试剂盒为 10 毫微摩尔/微升
样本实验方案
1. 对于 100 μg 试剂盒,在提供的缓冲液 B 组份中制备浓度为 2 mg/ml 的抗体储备液。(用旋转柱去除标记后的染料,最大处理量为 130 μl)。
对于 1 毫克试剂盒,根据所提供的缓冲液 B 组份中的抗体浓度进行调整。
2. 让一小瓶染料 NHS 升温至室温,然后加入 50 µl 无水二甲基亚砜。涡旋使染料溶解。100ug 试剂盒的活性染料储备液浓度为 2 nmol/µl;1mg 试剂盒的活性染料储备液浓度为 10 nmol/µl。
3. 根据公式 1 向抗体缓冲液瓶中加入适量的活性染料溶液,混匀。用铝箔纸包裹小瓶,防止抗体/染料溶液受光,室温下轻轻摇晃孵育 1 小时。
缓冲液交换和过量染料去除
100 μg 试剂盒,通过旋柱去除过量染料:
1. 取下 Zeba Spin 脱盐柱的底部封盖,然后松开但不要取下盖子。
2. 将色谱柱放入 1.5-2.0 毫升的收集管(微离心管)中。以 1,500 × g 离心 1 分钟,除去储存液。
3. 在柱子上压实的树脂向上倾斜的一侧做一个标记。在随后的离心步骤中,将柱放入微离心机中,标记朝外。
4. 将色谱柱转移到一个新的收集管中,打开盖子,将标记反应样品缓慢地涂抹到密实 树脂床的顶部(体积不超过 130 μl)。
5. 以 1 500 × g 离心 2 分钟,收集样品。使用后丢弃脱盐柱。
6. 染料抗体在 4°C 下储存 < 1 个月。如需长期保存,请在 -20°C 或 -80°C 下保存,可选择使用稳定剂(如 0.1% 牛血清白蛋白)和 0.02-0.05% 叠氮化钠。
通过蛋白质浓缩器去除 1 毫克试剂盒中的过量染料:
1. 用 400 至 500 μl 反应缓冲液或去离子水将浓缩器膜 “过滤装置 ”水合,然后进行 14,000 x g 微速离心 3 分钟。丢弃过滤装置和收集管中的液体。
2. 向浓缩器/过滤装置中加入 500 μl 的染料抗体进行离心。微速离心 14,000 x g,8 分钟,或离心至过滤装置中剩余的最小体积 ~ 50 μl。丢弃收集管中的废液。
3. 向过滤装置中加入反应缓冲液进行脱盐,总体积不超过 500 μl;通常为 ~450 μl。微速离心 14000 x g,8 分钟,或离心至过滤装置中剩余的最小体积 ~ 50 μl。丢弃收集管中的废液。
4. 重复步骤 3 两次。
5. 将过滤装置中的染料抗体收集到微离心管中。
6. 为达到最大回收率,可选择在过滤装置中加入少量缓冲液 B 组份(由用户决定),以冲洗掉残留的抗体,微离心脉冲旋转,从过滤装置中收集抗体/反应缓冲液,加入步骤 5 的微离心管中,混匀。
染料/蛋白质配比计算
要计算染料与抗体的比率,可测量共轭物的吸收光谱,或 280 纳米波长处的吸收(AAb)和染料吸收最大值处的吸收(Adye)。染料标记抗体的典型吸收光谱如下所示。根据染料的不同,最大值的波长也可能不同。
|

A ᵈʸᵉ : 染料的吸光率
Ɛ ᵃᵇ : 生物分子在 280 纳米波长处的摩尔消光系数
A ᵃᵇ : 染料-蛋白质共轭物在 280 纳米波长处的吸光率
CF: 280nm 处的修正系数,用于计算染料在 280nm 处的吸收情况
Ɛ ᵈʸᵉ : 染料的摩尔消光系数
抗体染料的储存
抗体共轭物应在有载体蛋白存在的情况下保存
排错
|
FAQ
Q:优化后的 D/P 比率是多少?
A:这取决于染料和应用。例如,对于 800 CW,IgG 抗体的 D/P 比为 1:1 - 2:1,适合 Western 和 In-Cell Western 应用。对于 IgG 抗体,较高的 D/P 比(3:1 - 4:1)仍可用于 Western 印迹检测,但可能会增加背景,因此在其他应用中的表现并不理想,但对于 BP Fluor 488 和荧光素,大多数应用都需要 D/P 4-9。
对于体内成像应用,共轭物的染料/蛋白质比率可能会影响蛋白质的生物或生化活性、信噪比、血液清除率和生物分布。
Q: 我可以用这些染料 NHS 标记试剂盒标记其他蛋白质吗?
A: 可以。请查看下面的 BP Fluor 647 参考表;对于其他染料,请相应使用此表。
表 1. 推荐的 BP Fluor 647 染料 NHS 与蛋白质摩尔比 (MR)、10mM PBS pH 7.4 和标记 12-150 kDa 蛋白质的典型产量
|
危险品化学品经营许可证(带存储)