GLP-1R、GIPR与GCGR在肥胖症和2型糖尿病代谢调控及多受体激动剂治疗中的作用
GLP-1R、GIPR与GCGR在肥胖症和2型糖尿病代谢调控及多受体激动剂治疗中的作用
GLP-1R、GIPR与GCGR共同调节胰岛激素分泌、肝糖输出、摄食行为和能量代谢。多受体激动剂通过平衡降糖、食欲抑制与能量消耗作用,提高肥胖症和2型糖尿病的综合代谢干预效果。
关键词:GLP-1R;GIPR;GCGR;肥胖症;2型糖尿病;肠促胰素;胰高血糖素;双重受体激动剂;三重受体激动剂;能量代谢
1 GLP-1R、GIPR与GCGR的分子特征及组织分布
1.1 三类受体的结构特征
GLP-1R、GIPR与GCGR均属于B1类G蛋白偶联受体,由较大的胞外氨基末端结构域、七次跨膜结构域和胞内羧基末端组成。肽类配体的羧基端首先与受体胞外结构域结合,配体氨基端进一步进入跨膜核心并诱导受体活化。三类受体均以Gs蛋白—腺苷酸环化酶—cAMP通路为主要信号轴,同时可根据细胞类型、配体结构和受体构象募集β-arrestin或激活其他信号分支。
1.2 GLP-1R的组织分布
GLP-1R主要表达于胰岛β细胞、脑干和下丘脑部分神经元以及迷走神经相关通路,在部分胃肠道和心血管组织中也可检测到。胰岛GLP-1R主要调节葡萄糖依赖性胰岛素分泌,中枢及神经通路中的GLP-1R参与饱腹感、食物奖赏和摄食行为调节。由于部分外周组织中的受体表达量较低,组织分布应结合RNA、特异性抗体和功能反应综合判断。
1.3 GIPR的组织分布
GIPR主要表达于胰岛β细胞、脂肪组织、骨组织和中枢神经系统。胰岛GIPR可增强葡萄糖刺激性胰岛素分泌,脂肪组织GIPR参与营养物质摄取、脂质储存和脂肪细胞内分泌调节,中枢GIPR则参与摄食和能量平衡。GIPR的代谢作用具有组织和营养状态依赖性,不能简单归纳为促进或抑制脂肪积累。
1.4 GCGR的组织分布
GCGR在肝细胞中高度表达,是胰高血糖素调节肝糖原分解、糖异生、氨基酸分解和尿素循环的主要受体。GCGR也分布于肾脏、胰岛和部分神经系统区域,但其全身代谢作用主要由肝脏介导。药理性GCGR激活可提高肝糖输出,也可增强脂肪酸氧化和能量消耗,因此治疗效应取决于升糖作用与减脂作用之间的平衡。
1.5 受体内化与信号持续时间
三类受体激活后均可发生磷酸化、β-arrestin募集和内吞,但不同激动剂引起的内化速度、内体信号和膜循环能力存在差异。受体结合亲和力并不能完全代表体内药效,持续cAMP信号、组织暴露、受体再循环及配体降解稳定性共同决定降糖和减重效果。
表1 GLP-1R、GIPR与GCGR的主要生物学特征
受体 | 主要内源性配体 | 主要组织 | 核心生理作用 |
GLP-1R | GLP-1 | 胰岛β细胞、中枢及迷走神经相关通路 | 促进胰岛素分泌、抑制摄食、延缓胃排空 |
GIPR | GIP | 胰岛β细胞、脂肪组织、骨和中枢 | 促进胰岛素分泌、调节营养储存和脂肪组织功能 |
GCGR | 胰高血糖素 | 肝脏、肾脏和胰岛 | 促进肝糖输出、氨基酸分解和能量消耗 |
2 肠促胰素与胰高血糖素信号的生理调控
2.1 GLP-1的分泌与降解
GLP-1主要由肠道L细胞在葡萄糖、脂肪酸、氨基酸和胆汁酸等营养刺激后分泌。活性GLP-1包括GLP-1(7-36)amide和GLP-1(7-37),进入循环后可被二肽基肽酶-4迅速切割,因此内源性活性GLP-1的循环半衰期较短。GLP-1的生理作用还可通过肠道局部和迷走神经传入途径实现,并不完全依赖较高的外周血浓度。
2.2 GIP的分泌与餐后反应
GIP主要由小肠K细胞分泌,葡萄糖和脂肪摄入均可诱导其释放。GIP是健康状态下餐后胰岛素分泌的重要调节因子,但长期高血糖可降低β细胞对GIP的响应。改善血糖毒性和β细胞状态后,部分GIP促胰岛素效应可以恢复。
2.3 胰高血糖素的分泌调节
胰高血糖素主要由胰岛α细胞分泌,低血糖、氨基酸摄入、运动和交感神经激活可促进其释放,高血糖、胰岛素及生长抑素则限制其分泌。蛋白质摄入后,胰高血糖素增加可促进氨基酸分解并防止胰岛素升高导致低血糖,构成肝脏与胰岛α细胞之间的氨基酸调节环路。
2.4 葡萄糖依赖性胰岛素分泌
GLP-1R和GIPR激活后通过Gs蛋白提高cAMP水平,并进一步激活蛋白激酶A和EPAC2,促进钙信号、胰岛素颗粒动员和胞吐。该作用需要葡萄糖代谢引起的膜去极化和细胞内钙升高,因此在较低血糖状态下,肠促胰素受体激动通常不会独立诱导强烈胰岛素分泌。
2.5 肠促胰素与胰高血糖素的动态平衡
进食后,GLP-1和GIP增强胰岛素分泌并限制餐后血糖升高;空腹、运动和低血糖状态下,胰高血糖素通过GCGR维持肝糖输出。三类受体使胰岛、胃肠道、中枢和肝脏根据营养状态动态调整葡萄糖供应、营养储存和能量利用。
3 三类受体对血糖稳态、食欲与能量代谢的协同作用
3.1 GLP-1R对血糖稳态的调节
GLP-1R激活可增强葡萄糖依赖性胰岛素分泌,并在高血糖条件下间接抑制胰高血糖素释放,从而减少肝糖输出。GLP-1R激动还可延缓胃排空,降低营养物质进入小肠的速度,使餐后血糖峰值下降。
3.2 GIPR对胰岛功能的调节
GIPR激活可增强β细胞对葡萄糖刺激的响应,提高餐后早期胰岛素分泌。在GLP-1R同时激活的条件下,GIPR可进一步改善血糖控制,并可能通过中枢和脂肪组织信号增强减重效果。其治疗作用不仅取决于胰岛素分泌,还受受体效力、营养状态和中枢暴露影响。
3.3 GCGR对肝糖输出的调节
GCGR通过cAMP—蛋白激酶A信号促进肝糖原分解,并调节糖异生相关酶和底物利用。该作用是维持空腹和低血糖时血糖稳定的必要机制,但在2型糖尿病中,胰高血糖素分泌过多或抑制不足会增加空腹及餐后肝糖输出。
3.4 中枢食欲与食物奖赏调节
GLP-1R激活可作用于下丘脑、脑干和迷走神经相关环路,增强饱腹感并降低高能量食物奖赏。GIPR的中枢作用与神经元类型和代谢状态有关,在与GLP-1R共同激活时可提高减重效应。GCGR对摄食的影响更多通过肝脏代谢、循环信号和神经传入间接实现。
3.5 脂质代谢与能量消耗
GLP-1R激动引起的减重主要来自能量摄入降低,GCGR激活则可促进肝脏脂肪酸氧化、氨基酸分解和能量消耗。GIPR可改变脂肪组织血流、营养物质摄取和脂肪细胞功能。多受体激动剂将摄食抑制、胰岛素分泌和能量消耗组合,可获得强于单一受体激动的综合代谢效应。
3.6 多受体效力配比
多受体激动剂的关键不是对每种受体均实现最大激活,而是建立适合的相对效力。GCGR活性过强可能增加肝糖输出和心率,GLP-1R活性过强可能加重恶心和胃排空延迟,GIPR活性不足则可能削弱胰岛素分泌和协同减重作用。
4 GLP-1R、GIPR与GCGR异常信号与肥胖症及2型糖尿病
4.1 肠促胰素效应减弱
2型糖尿病患者餐后肠促胰素效应通常下降,其中GLP-1促胰岛素作用相对保留,而GIP促胰岛素效应下降更明显。其主要原因并非单纯肠促胰素分泌不足,而是慢性高血糖、β细胞功能衰退和受体下游信号受损共同导致的反应性下降。
4.2 胰岛β细胞功能衰退
慢性高血糖、游离脂肪酸升高、氧化应激和内质网应激可降低β细胞对GLP-1和GIP的响应,并减少葡萄糖刺激性胰岛素分泌。随着β细胞储备持续下降,即使提高受体激动强度,降糖能力也会受到限制。
4.3 胰高血糖素分泌异常
2型糖尿病常伴随空腹胰高血糖素升高或进食后胰高血糖素抑制不足,使肝糖输出在不需要时仍然维持。α细胞葡萄糖感知异常、胰岛内胰岛素和生长抑素信号减弱以及肝脏胰高血糖素敏感性变化均可参与这一过程。
4.4 中枢饱腹信号受损
肥胖状态下,下丘脑炎症、瘦素抵抗和奖赏环路异常可降低生理性饱腹信号的效力。长效GLP-1R及多受体激动剂通过更强和更持久的受体刺激,可部分克服内源性肽类信号持续时间短和中枢反应不足的问题。
4.5 脂肪组织与肝脏代谢异常
脂肪细胞肥大、缺氧和炎症会降低脂肪组织储存能力,增加脂肪酸向肝脏和骨骼肌外溢,并加重胰岛素抵抗。肝脏胰岛素抵抗与胰高血糖素相对过量共同促进肝糖输出和脂质积累,形成高血糖、脂肪肝和高胰岛素血症相互促进的代谢循环。
5 GLP-1R单受体激动剂的降糖与减重机制
5.1 增强胰岛素分泌
GLP-1R激动剂提高β细胞cAMP水平,增强葡萄糖刺激后的胰岛素颗粒释放。由于作用具有葡萄糖依赖性,单独应用时严重低血糖风险相对较低,但与外源胰岛素或磺脲类药物联合时仍需关注低血糖。
5.2 抑制异常胰高血糖素信号
GLP-1R激动剂可在高血糖状态下降低胰高血糖素分泌,从而减少肝糖原分解和糖异生。该效应主要由胰岛内胰岛素、生长抑素和神经调节间接介导,并不是所有α细胞均需要直接表达高水平GLP-1R。
5.3 延缓胃排空
GLP-1R激动剂可减慢胃内容物进入小肠的速度,降低餐后葡萄糖吸收和血糖峰值。短效激动剂的胃排空作用通常较突出,持续使用长效激动剂后该作用可出现一定程度的快速耐受,因此长期降糖和减重更多依赖胰岛和中枢机制。
5.4 抑制食欲和能量摄入
GLP-1R激动剂通过中枢和迷走神经相关通路增强饱腹感,减少每餐进食量并降低高能量食物偏好。其减重作用主要来自持续降低能量摄入,而不是明显提高基础能量消耗。
5.5 改善胰岛素抵抗与肝脂肪
随着体重和内脏脂肪下降,肝脏及骨骼肌胰岛素敏感性提高,游离脂肪酸通量和肝脏脂质沉积减少。血糖、血脂和炎症状态的改善还可进一步降低β细胞负担,但不同代谢效应中体重依赖和体重非依赖成分的比例并不完全相同。
5.6 单受体激动的作用限制
GLP-1R激动剂的最大剂量常受到恶心、呕吐、腹泻、便秘和胃排空延迟限制。个体对食欲抑制和胃肠道反应的敏感性差异明显,停药后摄食增加和体重回升也提示肥胖症通常需要持续治疗和生活方式管理。
6 双重与三重受体激动剂的协同治疗机制
6.1 GLP-1R/GIPR双重激动
GLP-1R/GIPR双重激动剂同时增强葡萄糖依赖性胰岛素分泌、中枢饱腹信号和脂肪组织代谢调节。Tirzepatide是代表性GLP-1R/GIPR双重激动剂,其作用并非两种单受体激动简单相加,而与两类受体的相对效力、组织暴露、药代动力学和内化特征共同相关。
6.2 GLP-1R/GCGR双重激动
GLP-1R/GCGR双重激动剂利用GLP-1R降低食欲、促进胰岛素分泌并限制高血糖,同时利用GCGR增强脂肪酸氧化和能量消耗。GLP-1R活性必须充分抵消GCGR促进肝糖输出的作用,因此两类受体效力配比是决定疗效与安全性的关键。
6.3 GIPR/GCGR双重激动
GIPR激活可增强葡萄糖依赖性胰岛素分泌,从而部分缓冲GCGR激活引起的血糖升高。该组合可同时作用于胰岛、脂肪组织和肝脏,但其食欲抑制和长期减重能力取决于分子的中枢暴露和GIPR信号特征。
6.4 GLP-1R/GIPR/GCGR三重激动
三重激动剂将GLP-1R介导的摄食抑制、GIPR介导的胰岛功能增强和GCGR介导的能量消耗整合到同一分子中。Retatrutide是该类分子的代表,其设计目标是在维持血糖控制的同时进一步提高体重和肝脂肪改善幅度。SAR441255也是一种能够相对均衡激活GLP-1R、GIPR和GCGR的单分子三重激动剂,可用于研究三类受体协同调节体重和血糖的作用机制。

图1 SAR441255三重受体激动剂协同激活GLP-1R、GIPR和GCGR促进减重并改善血糖控制的作用机制
6.5 信号偏向与受体内化
多受体激动剂可在cAMP产生、β-arrestin募集、受体内化和内体信号之间表现出不同偏向。降低快速内化或延长膜表面信号可能增强持续药效,但也可能改变受体脱敏、组织选择性和不良反应,因此不能仅用单一cAMP效力评价候选分子。
6.6 协同作用与效力平衡
多受体协同应表现为不同受体在机制上相互补充,例如GLP-1R和GIPR提高胰岛素分泌并限制GCGR的升糖效应,GCGR则补充GLP-1R主要依赖减少摄食的减重机制。受体比例失衡可能使附加靶点转变为不良反应来源,而不是提高疗效。
表2 单受体与多受体激动策略的作用差异
激动策略 | 主要作用 | 主要优势 | 主要限制 |
GLP-1R单受体激动 | 促进胰岛素分泌、抑制摄食 | 降糖和减重机制明确 | 胃肠道反应限制剂量 |
GLP-1R/GIPR双重激动 | 增强胰岛功能和中枢代谢调节 | 降糖和减重作用增强 | GIPR作用受组织和代谢状态影响 |
GLP-1R/GCGR双重激动 | 减少摄食并提高能量消耗 | 有利于体重和肝脂肪改善 | GCGR活性过强可升高血糖 |
GIPR/GCGR双重激动 | 增强胰岛素分泌并促进能量利用 | 同时调节胰岛、脂肪和肝脏 | 食欲抑制强度不确定 |
GLP-1R/GIPR/GCGR三重激动 | 整合胰岛、中枢和肝脏作用 | 综合代谢效应较强 | 效力配比和安全性控制复杂 |
7 多受体靶向药物在肥胖症和2型糖尿病中的临床应用
7.1 2型糖尿病血糖控制
GLP-1R单受体激动剂和GLP-1R/GIPR双重激动剂可降低空腹及餐后血糖,并改善糖化血红蛋白。实际疗效受基线血糖、病程、β细胞储备、肾功能和联合用药影响,不能仅根据受体激动效力预测个体降糖幅度。
7.2 肥胖症体重管理
多受体激动剂可通过持续抑制食欲、减少食物摄入、改善脂肪组织功能和提高能量消耗促进体重下降。治疗评价应同时观察腰围、内脏脂肪、血压、甘油三酯和胰岛素抵抗,避免仅依据总体体重判断代谢获益。
7.3 肥胖症合并2型糖尿病
肥胖症合并2型糖尿病患者同时存在高血糖、胰岛素抵抗、异常脂肪分布和心血管危险因素。多受体激动剂可同时作用于胰岛、中枢、肝脏和脂肪组织,适合用于需要兼顾血糖和体重控制的代谢表型。
7.4 代谢相关脂肪性肝病
GLP-1R激动可通过减重和改善胰岛素抵抗降低肝脂肪,含GCGR活性的双重或三重激动剂还可增强肝脏脂肪酸氧化和脂质动员。肝脂肪下降并不必然代表肝脏炎症和纤维化同步逆转,因此应分别评价影像、肝酶和组织学指标。
7.5 心血管与肾脏代谢风险
体重、血糖、血压、炎症和血脂改善可共同降低心肾代谢风险,但不同分子的长期心血管和肾脏作用不能仅由其受体组成推断。含GCGR活性的药物还需关注心率、血压和肝脏代谢变化。
7.6 不良反应与剂量递增
常见不良反应包括恶心、呕吐、腹泻、便秘、腹部不适和食欲过度下降。缓慢递增剂量可降低初期胃肠道反应,含GCGR活性的药物还需监测血糖、心率、肝酶和氨基酸代谢。
7.7 身体成分与营养管理
快速减重通常同时减少脂肪量和瘦体重,因此应结合双能X线吸收法或其他身体成分检测评价脂肪和肌肉变化。足量蛋白质摄入、抗阻训练和合理减重速度有助于减少瘦体重过度下降。
8 受体结合、信号活性与代谢效应评价
8.1 受体结合评价
可利用重组受体蛋白、受体表达细胞或细胞膜制备物进行配体结合和竞争结合实验,主要指标包括平衡解离常数、半数抑制浓度、结合速率和解离速率。多受体激动剂应在统一实验平台和相近受体表达条件下分别测定三类受体,以获得可比较的相对亲和力。
8.2 cAMP信号活性
cAMP是GLP-1R、GIPR和GCGR激活最直接的功能读数。评价时应同时比较半数有效浓度、最大效应和信号持续时间,并以GLP-1、GIP和胰高血糖素等内源性配体作为参照,避免仅依据单一EC50判断多受体激动剂的效力平衡。
8.3 β-arrestin募集与受体内化
β-arrestin募集可反映受体磷酸化和脱敏倾向,受体内化实验可评价膜表面受体减少及胞内转运。将cAMP、β-arrestin和内化结果联合分析,可判断候选激动剂是否存在信号偏向以及不同受体间的偏向差异。
8.4 胰岛激素分泌评价
GLP-1R和GIPR活性可通过葡萄糖刺激性胰岛素分泌实验评价,并设置低、中、高葡萄糖条件确认作用是否具有葡萄糖依赖性。GCGR相关研究可检测肝细胞cAMP、糖原分解和葡萄糖输出,并同步测量胰岛素、C肽和胰高血糖素。
8.5 摄食与胃排空评价
摄食实验应分别记录首餐摄入、累计摄食量、食物偏好和进食频率,并通过条件性味觉厌恶等实验排除因恶心或不适导致的摄食下降。胃排空需要独立评价,不能将胃内容物排空减慢直接解释为中枢饱腹作用。
8.6 能量消耗与底物利用
间接测热可检测氧耗、二氧化碳产生、呼吸交换率和活动水平,用于分析总能量消耗及脂肪、糖类底物利用。能量消耗结果应结合体重、瘦体重、摄食量和环境温度分析,避免将体型差异误判为药物作用。
8.7 血糖、体重与肝脏代谢评价
综合代谢评价包括空腹血糖、口服葡萄糖耐量、糖化血红蛋白、胰岛素、C肽、胰高血糖素、体重、腰围和身体成分。含GCGR活性的候选药物还应检测肝糖输出、肝脂肪、血浆氨基酸、尿素循环指标和脂肪酸氧化。
表3 GLP-1R、GIPR与GCGR相关研究的主要评价指标
评价层级 | 主要指标 | 主要目的 |
受体结合 | Kd、Ki、结合速率、解离速率 | 比较三类受体亲和力 |
受体激活 | cAMP、EC50、最大效应 | 确定受体效力与效能 |
信号偏向 | β-arrestin募集、受体内化 | 评价脱敏和胞内转运 |
胰岛功能 | 胰岛素、C肽、胰高血糖素 | 判断激素分泌调节 |
摄食效应 | 食物摄入、胃排空、食物偏好 | 区分饱腹与胃肠道作用 |
能量代谢 | 氧耗、呼吸交换率、活动量 | 判断能量消耗和底物利用 |
临床代谢 | HbA1c、体重、腰围、身体成分 | 评价综合降糖和减重效果 |
肝脏代谢 | 肝脂肪、肝糖输出、氨基酸 | 评价GCGR相关代谢作用 |
9 产品
9.1 受体、配体与功能干预产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 主要用途 |
Recombinant Human GLP-1R Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,His标签,≥95%(SDS-PAGE) | GLP-1R配体结合、抗体筛选及受体功能研究 | |
Centocor patent anti-GLP-1R(anti-GLP1R) | 无动物源,无载体,重组,ExactAb™,低内毒素,无叠氮钠,已验证,≥95%(SDS-PAGE&SEC-HPLC),见COA | GLP-1R结合、受体表达及抗体干预研究 | |
GLP-1(7-36),amide TFA | ≥98% | 作为内源性活性配体研究GLP-1R激活、cAMP信号和胰岛素分泌 | |
(Ser8)-GLP-1(7-36)amide,human | ≥99% | 比较GLP-1类似肽的稳定性与受体激动活性 | |
GLP-1(7-36)-Lys(Biotin),amide,human | ≥98% | GLP-1R配体结合、受体定位及亲和力检测 | |
GLP-1(9-36)amide TFA | ≥98% | 研究GLP-1降解产物及其非经典代谢作用 | |
GLP-1R Antagonist 1 | Moligand™,10 mM in DMSO | 验证GLP-1R依赖性信号和药物作用特异性 | |
BETP,GLP-1受体的正变构调节剂 | Moligand™,≥98%(HPLC) | 研究GLP-1R正变构调节及配体协同作用 | |
NNC 0640,胰高血糖素和GLP-1受体的负变构调节剂 | Moligand™,≥97%(HPLC) | 比较GLP-1R与GCGR变构抑制及受体交叉调控 | |
人胰高血糖素样肽1(GLP-1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测人样本或培养体系中的GLP-1 | |
Recombinant Human GIPR Protein | 无动物源,无载体,His标签,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE),见COA | GIPR配体结合、抗体筛选及受体功能评价 | |
GIPR Human Pre-designed siRNA Set A | — | 敲低GIPR并验证其促胰岛素和代谢调控作用 | |
GIPR基因敲除HEK293T细胞RIPA裂解液 | — | GIPR蛋白检测和抗体特异性验证的阴性对照 | |
Recombinant Human GIP Protein | 无载体,His标签,≥90%(SDS-PAGE),见COA | GIP相关抗体筛选、蛋白检测及配体研究 | |
GIP,human TFA | ≥99% | 作为GIPR标准配体研究cAMP和胰岛素分泌 | |
(Pro3)GIP,human | ≥99% | GIPR拮抗及受体特异性验证 | |
人抑胃肽(GIP)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测人样本或培养体系中的GIP | |
GCGR Human Pre-designed siRNA Set A | — | 敲低GCGR并研究肝糖输出和胰高血糖素信号 | |
GCGR基因敲除HEK293T细胞RIPA裂解液 | — | GCGR蛋白检测和抗体特异性验证的阴性对照 | |
Crotedumab(anti-GCGR) | 无动物源,无载体,重组,ExactAb™,低内毒素,无叠氮钠,已验证,≥95%(SDS-PAGE&SEC-HPLC),见COA | GCGR抗体阻断及肝糖输出调控研究 | |
Volagidemab(anti-GCGR) | 无动物源,无载体,重组,ExactAb™,低内毒素,无叠氮钠,已验证,≥95%(SDS-PAGE&SEC-HPLC),见COA | 研究GCGR阻断对血糖和胰高血糖素作用的影响 | |
GCGR antagonist 2 | ≥99% | 抑制GCGR并验证胰高血糖素信号依赖性 | |
胰高血糖素TFA | ≥95% | GCGR激活、肝细胞cAMP和葡萄糖输出研究 | |
Biotinyl-Glucagon(1-29),human,bovine,porcine | — | GCGR结合、配体追踪及受体内化研究 | |
GLP-1R/GIPR agonist-1 | — | 研究GLP-1R与GIPR双重激活及协同代谢效应 | |
GIP/GLP-1 dual receptor agonist-1 | — | 比较双受体激动对cAMP、胰岛素分泌和细胞反应的影响 |
9.2 受体激动剂与信号调控化合物
产品名称 | CAS号 | 作用类型 | 主要用途 |
GLP-1(7-36)amide | GLP-1R内源性激动剂 | 作为GLP-1R标准配体,研究cAMP信号和葡萄糖依赖性胰岛素分泌 | |
GIP(1-42),human | GIPR内源性激动剂 | 作为GIPR标准配体,研究肠促胰素效应和胰岛素分泌 | |
Glucagon,human | GCGR内源性激动剂 | 激活GCGR,研究肝糖输出、氨基酸代谢和能量消耗 | |
Exendin-4 | GLP-1R激动剂 | 研究GLP-1R激活、受体内化和持续信号 | |
Semaglutide | 长效GLP-1R激动剂 | 研究食欲抑制、血糖控制和糖脂代谢 | |
Liraglutide | 长效GLP-1R激动剂 | 研究GLP-1R介导的降糖、减重和胰岛功能改善 | |
Dulaglutide | 长效GLP-1R激动剂 | 研究持续GLP-1R信号和长期降糖作用 | |
Tirzepatide | GLP-1R/GIPR双重激动剂 | 研究两类肠促胰素受体协同降糖和减重 | |
Exendin(9-39) | GLP-1R拮抗剂 | 阻断GLP-1R,验证候选药物作用的受体依赖性 | |
Forskolin | 腺苷酸环化酶激活剂 | 直接提高细胞内cAMP,作为受体下游信号阳性对照 | |
IBMX | 磷酸二酯酶抑制剂 | 抑制cAMP降解,增强并延长受体激活后的cAMP信号 | |
H-89 | PKA信号抑制剂 | 抑制蛋白激酶A,验证cAMP—PKA通路参与的代谢效应 |
GLP-1R、GIPR与GCGR分别调节胰岛素分泌、摄食行为、营养物质处理和肝脏能量代谢。多受体激动剂的治疗优势来自不同机制的互补,但其降糖、减重和安全性取决于受体效力配比、信号偏向、组织暴露和剂量递增策略。
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