计算溶液所需的质量、体积或浓度。
,适用于对基线干扰要求严格的色谱和分析工作流程。
2-8°C储存。低温运输 。请查阅批次 COA 获取详细规格。
SDS、COA、产品数据表及规格说明书均可下载。可通过批号查询获取批次 COA。
在色谱分析、有机合成和交叉偶联反应领域已被 0 篇同行评审文献引用。
UltraBio™ sf9 表达系统(Plus)可利用Bac-to-Bac 杆状病毒表达系统进行杆状病毒及重组蛋白的大规模表达与生产。
1. 专门针对 细胞设计的无血清培养基,适用于 sf9 细胞的长期、稳定、高密度悬浮培养;
2. 亦可用于High Five 细胞培养及蛋白表达;
3. 本产品含有 L-Glutamine,一般无需额外添加;
4. 本产品适用于基于细胞培养的大规模生物药生产及科学研究,但不可直接用于人体或作为药物使用。
细胞复苏
1. 在37 ℃水浴中快速融化冻存的细胞至仅剩米粒大小的冰晶;
2. 将冻存管中的细胞液全部转移到含有25ml SF Vir-exp CDM(预热至27 ℃) 的125ml摇瓶中;
细胞在复苏时可适当减少培养基体积至 15-20ml,提高细胞增长速度。
3. 放入27 ℃,转速 90-110 rpm(振幅 50mm)的摇床中进行培养;
4. 细胞需经过 次以上传代方可完全复苏至正常状态。正常状态的细胞应当达到 天从0.5-1×10⁶ cells/ml 生长至 4×10⁶ cells/ml 的生长状态。复苏过程的前 2-3代出现细胞活率(Viia)<70%的情况,或细胞增长缓慢(4-6 天代传)均为正常现象。
细胞传代
1. 取细胞密度达到 (3-4) ×10⁶ cells/ml,细胞活率 ≥85%,处于对数生长期的种子液进行传代;
2. 无菌转移所需量的种子液接种至盛有 27 ℃ SF Vir-exp CDM 的摇瓶中;推荐接种密度为 0.5-1×10⁶ cells/ml;
3. 将摇瓶放入27 ℃, 转速 90-110 rpm(振幅 50mm)的摇床中进行培养。
[按上述步骤每2-3天进行传代培养。]
细胞冻存
1. 准备处于对数生长期,活率>90%的细胞;
2. 按照冻存密度、冻存前种子密度及冻存体积,计算确定所需种子液的量,冻存密度建议在 (1.5-2) ×10⁷ cells/ml;
3. 准备细胞冻存液:将CryoStasis™ 组织/细胞冻存液置于2-8℃预冷备用;
若自行配制冻存液,可使用 90.0% SF Vir-exp CDM+10.0%DMSO, 使用前无菌过滤。
4. 无菌移取所需体积的种子液于离心管中,200×g 离心分钟;
5. 加入预冷的冻存液重悬细胞,快速分装细胞至冻存管中,每管1.0-1.5ml;
6. 将冻存管放入程序降温盒(异丙醇降温盒),置于-80℃冰箱中保存。若需长期储存,可在-80℃冰箱存放12-24h后转移到液氮中保存。
病毒包装与蛋白表达
1. 种毒制备: 病毒
1.1 制备细胞培养液:
准备细胞培养专用 孔板,每孔取8×10⁵个处于对数生长期,活率大于95%的sf9细胞,用 2ml SF Vir-exp CDM 混匀后加入板孔中;
将细胞培养专用孔板放入27 ℃培养箱静置 ,促进细胞进入半贴壁状态;
使用其他细胞培养平皿时按皿底面积等比例放大或缩小。
1.2 配置体积为培养体积 5%的病毒包装质粒稀释液:
每 8×10⁵ 个细胞建议转入2-3μg质粒。对于2ml的培养物,可用100μl SF Vir-exp CDM 稀释 2.5μg 质粒,轻轻混匀后加入 5μl EelTrans 增强剂,用移液器轻轻混匀,制成质粒稀释液;
1.3 配置体积为培养体积5%的 EelTrans 转染试剂稀释液:
每μg质粒建议使用1-5μl EelTrans 转染试剂。对于2ml 培养物,可用 100μl SF Vir-exp 稀释 7.5μl EelTrans 转染试剂,涡旋混匀;
1.4 配置质粒转染试剂 复合物:
将以上配置的质粒稀释液加入转染试剂稀释液中,轻轻混匀,室温下孵育10分钟;
1.5 细胞转染:
将 质粒 转染试剂 复合物缓慢加入待转染的细胞培养液中,轻轻混匀,在 或直到发现病毒感染的迹象。病毒包装后,细胞涨大或部分裂活率(Via)一般为20-40%;
1.6 病毒收集:
收集含有病毒的培养物,500×g离心 分钟去除细胞和大碎片。收集上清,用0.22μm滤膜过滤后,将含有病毒的滤液转移到新的离心管中,测定病毒滴度,2-8℃ 避光保存;
2. 病毒扩增:P1 病毒
2.1 制备10-200ml 密度为(1-2)×10⁶ cells/ml,处于对数生长期,活率大于90%的sf9 细胞悬浮培养液;
2.2 以 P0 病毒加入细胞培养液,27℃下孵育48-72小时,细胞活率为20-40%时按 P0 病毒制备方法收集病毒。病毒接种的MOI建议为0.05-0.1;
2.3 按以上方法可进一步扩增病毒,制备 代病毒。蛋白表达时建议使用病毒滴度为 或以上的病毒种液感染细胞。病毒扩增代次限制在 代以内以降低突变几率;
MOI定义为每个细胞感染病毒的活性单位数,用以下公式计算病毒接种量
3. 蛋白表达
3.1 制备密度为 (1.5-2.5)×10⁶ cells/ml,处于对数生长期,活率大于90%的细胞悬浮培养液;
3.2 以 MOI=5-10加入病毒种液感染细胞,置于27 ℃,转速90-110rpm(振幅 50mm)的摇床培养。细胞活率为20-40%时即可收获蛋白。
注意事项
为了保护您的安全与健康,实验中请全程穿戴好实验服和一次性手套,并注意通风橱操作。