UltraBio™ 293F 表达系统(Plus)

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,适用于对基线干扰要求严格的色谱和分析工作流程。

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SDS、COA、产品数据表及规格说明书均可下载。可通过批号查询获取批次 COA。

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文献证明

在色谱分析、有机合成和交叉偶联反应领域已被 0 篇同行评审文献引用。

概述

UltraBio™ 293F 表达系统(Plus)可实现 HEK293 细胞株及其他293 细胞的高效率瞬时转染和蛋白表达。 

使用方法 
1. 推荐细胞培养条件
温度 36-38℃,湿度 80%,5-8%CO2 
摇床设置:转速 115-125rpm(振幅 50mm) 
2. 细胞复苏
2.1 在 37℃水浴中快速(<2min)融化冷冻的细胞; 
2.2 将冷冻管中的细胞液全部转移到含有 30ml 预温过的 293F Hi-exp 培养基 的 125ml 摇瓶中; 
2.3 放入 37℃,5-8% CO2,转速 115-125rpm(振幅 50mm),湿度 80%的摇床中培养。 

3. 细胞传代

3.1 将 293F Hi-exp 培养基 放入 37℃条件下预热 20-30min。 
3.2 取细胞密度≥3×106 - 4×106cells/ml、细胞活性≥95%、处于对数生长期中期的细胞进行传代;

【注意:不同类型的 HEK293 细胞可能具有不同的对数生长期范围。】

3.3 接种密度推荐:0.3×106 - 0.6×106cells/ml。 
3.4 无菌转移所需量的种子液至合适体积的摇瓶中,并添加所需体积的已预热的 293F Hi-exp 培养基。 
3.5 将摇瓶放入温度 37℃,湿度 80%,转速 115-125rpm(振幅50mm),5%-8%CO2的细胞培养摇床中进行培养。  

【每 2-3 天用新鲜的培养基按上述步骤进行传代培养。】

4. 细胞驯化
4.1 直接接种法

① 对于可以直接驯化的细胞,可以从无血清培养基中直接接种到 293F Hi-exp 培养基中,接种密度参考传代步骤。
② 继续传代细胞,直到细胞稳定生长。
③ 传代几代之后,细胞密度在接种的 3-4 天内达到 3× 106cells/ml、细胞活性≥90%。此时,可以认为细胞已被驯化成功。

4.2 梯度驯化法

① 如果直接驯化效果不佳,请尝试按照以下梯度驯化表格进行操作。
② 选择低代次的细胞,并确保细胞处于对数期。
③ 使用原始培养基培养细胞,并继续使用原始培养基传代 2-3 代,以实现稳定的细胞生长。
④ 在完全使用 293F Hi-exp 培养基 接种 3-4 天之后,VCD应该稳定达到 3×106cells/ml,细胞活性≥90%。此时,细胞已经驯化到 293F Hi-exp 培养基 中。

293F Hi-exp 培养基:原始培养基(%)
接种细胞密度(×10⁶cells/ml) )
细胞生长评估
进行下一步前的验收标准
0:100as usual
VCD &Viability
VCD≥3×10⁶/ml,  Viability≥95% over 2 passages
30:700.6 VCD &Viability
VCD≥2×10⁶/ml,  Viability≥90% over 2 passages
70:300.5 VCD &Viability
CD≥2×10⁶/ml,  Viability≥90% over 2 passages
100:00.4 VCD &Viability
VCD≥3×10⁶/ml,  Viability≥90% over 2 passages

5. 细胞冻存
5.1 选择处于对数生长期、活率>90%的细胞进行冻存。 
5.2 测定活细胞密度,并计算所需的冻存液体积,确保最终的细 
胞冻存密度为(1-5)×106 cells/ml。 
5.3 准备细胞冻存液:推荐使用 OPM CryoStasisTM 组织/细胞冻存液,直接置于4℃环境预冷备用。 
若自行配制冻存液:按 90%的 293F Hi-exp 培养基+10% DMSO,配好后置于 4℃环境预冷备用。

5.4 离心收集细胞沉淀(800 rpm,5min),弃去上清。

5.5 加入预冷的冻存液重悬细胞,快速分装细胞至冻存管,每管1.0-1.5 ml;

5.6 将冻存管放入程序降温盒中,2-8℃ 孵育 10-15 分钟,随后于-80℃冰箱放置过夜后转移到液氮罐进行保存。

6. 转染和瞬时表达
6.1 转染细胞制备

接种细胞并培养至适当密度,转染密度建议在 1.5-3.0× 106cells/ml。转染细胞活性建议≥95%。 

6.2 制备转染复合物

① 质粒稀释液制备:将适量质粒加入 293F Hi-exp 培养基中,轻轻混匀,质粒稀释液体积建议为总体积的 2.5%-5%。
② CarpTrans 转染试剂稀释液制备:将适量转染试剂加入293F Hi-exp 培养基 中,轻轻混匀,转染试剂稀释液的体积建议为总体积的 2.5%-5%。
③ 质粒-转染试剂复合物制备:将转染试剂稀释液加入质粒稀释液中,轻轻混匀后在室温下孵育 10-15 min,充分反应形成质粒-转染试剂的复合物。

【对于 293 悬浮细胞,每 mL 待转染细胞体系推荐可转染质粒总数量为 1.0 μg,常用核酸(μg)-转染试剂(μl)比例为(1:3-1:4),基础数据可参考本产品说明书附表。】 

6.3 转染细胞

① 将孵育好的质粒-转染试剂复合物缓慢加入培养好的待转染细胞中,边加边轻轻摇动摇瓶。
② 置于推荐培养环境下继续培养。

温度36-38℃,湿度80%,5-8%CO₂
摇床设置:转速115-125rpm(振幅50mm)

6.4 推荐的培养基补料添加方案

293F Hi-exp 补料,作为一款高性能补料,不含任何动物来源的成分,含有植物来源水解物。与 293F Hi-exp 培养基在瞬时转染 HEK293 细胞过程中联用,可实现更高水平的蛋白瞬转表达量。 

① 转染16-22小时后,向摇瓶中添加5%(v/v)293F Hi-exp补料,在添加过程中轻轻晃动摇瓶。将摇瓶放回37℃培养箱继续培养。 

② 在瞬时表达过程(一般转染后的2-7天)中,维持葡萄糖浓度在4g/L以上。当细胞活性低于60%时收获细胞。

【若无葡萄糖测定仪时,可以按照下列盲补策略:转染后 D1 同补料一起补充2g/L 葡萄糖,D3 补充 3g/L 葡萄糖。】

6.5 推荐的细胞收获时间

当细胞活性低于 60%时收获细胞。不同转染体系的蛋白收样时间有所差异,建议在首次实验时进行最优用量探索。对于Expi293 细胞,推荐收样时间在 5-7 天。 

【注意:本培养基含有 EDTA,如需使用镍柱纯化含有 His 标签蛋白质时,请先在样品中加入终浓度为 1mM 的硫酸镍溶液,再上样过柱。】 

注意事项 

1. 为保障转染效率,请使用高纯度、无内毒素的质粒。 
2. 待转染细胞的状态会对转染效率产生极大影响,建议使用新鲜传代并生长到对数期、无菌、无支原体污染的细胞。 
3. 为了保护您的安全与健康,实验中请全程穿戴好实验服和一次性手套,并注意通风橱操作

附表:Expi293 悬浮细胞推荐转染体积 

注意:

[1] 质粒用量:需根据待转染细胞亚型和体积确定,建议在首次实验时进行最优用量探索。对于 Expi293 细胞,推荐每 ml培养体积转染 1μg 左右质粒。
[2] 转染试剂用量:需根据实际转染质粒的量和细胞密度来优化,推荐每μg 质粒使用 3-4μl 转染试剂,建议在首次实验时进行比例优化。
[3] 转染效果观测时间:不同转染体系的蛋白收样时间有所差异,一般转染后 24-72h 内可检测到转染效率逐渐提高。


规格

英文名称
UltraBio™ 293F Expression System (Plus)
储存条件
2-8°C储存
运输条件
低温运输
产品线
生物产品
名称和识别符
分子类型
小分子

技术文档

📋 安全数据表 (SDS)

全面的危险、操作、储存及法规合规文件。

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✅ 分析证书 (COA)

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📊 产品数据表

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🔬 规格说明书

该级别的完整质量属性和验收标准。

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高级数据

质检证书(CoA,COO,BSE/TSE 和分析图谱)
C of A & Other Certificates(BSE/TSE, COO):
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