肺动脉高压（pulmonary hypertension，PH）是心血管领域常见的严重病症。目前，用于肺动脉高压动物模型建模的方法主要有 4 种：慢性低氧、野百合碱（monocrotaline，MCT）注射、单纯左肺切除（pneumonectomy，PE）和腹主动脉-腔静脉分流（abdominal aortocaval fistula shunting，A-VF）。

原理

低压低氧构建肺动脉高压动物模型的基本原理是低氧性肺血管收缩（hypoxic pulmonary vasoconstriction，HPV）和肺血管重建是低氧性肺动脉高压最主要的病理生理特征。慢性低氧使肺血管发生 HPV，而 HPV 反复持续出现时，促进肺血管重建，造成右心室肥厚，而这是一个恶性循环的过程。

慢性低氧或间断性低氧都可使动物肺动脉异常重建，从而引起肺动脉高压甚至肺衰竭。高原肺动脉高压的可能发病机制为起始刺激因子（如低氧低压等）引起肺血管重建，肺动脉中膜增厚，肺血管阻力增高，从而导致肺动脉压升高和右心室衰竭。

操作方法

低压低氧构建肺动脉高压动物模型

原理

低压低氧构建肺动脉高压动物模型的基本原理是低氧性肺血管收缩（hypoxic pulmonary vasoconstriction，HPV）和肺血管重建是低氧性肺动脉高压最主要的病理生理特征。慢性低氧使肺血管发生 HPV，而 HPV 反复持续出现时，促进肺血管重建，造成右心室肥厚，而这是一个恶性循环的过程。慢性低氧或间断性低氧都可使动物肺动脉异常重建，从而引起肺动脉高压甚至肺衰竭。高原肺动脉高压的可能发病机制为起始刺激因子（如低氧低压等）引起肺血管重建，肺动脉中膜增厚，肺血管阻力增高，从而导致肺动脉压升高和右心室衰竭。

材料与仪器

器材：
① 低氧舱；
② RM-6200 四导生理记录仪；
③ 手术工具；
④ Wistar 大鼠等。
试剂：
① 10％ 乌拉坦。

步骤

低压低氧构建肺动脉高压动物模型的基本过程可分为如下几步：
A. 健康 Wistar 大鼠置于低氧舱中，舱内按每只大鼠放钠石灰 5 g，然后抽气减压，速度为 3 kPa/min 减至 51～54 kPa（1 kPa＝7.5 mmHg）为止，此时氧含量为 10％～10.5％，每天如此低氧持续 6 小时，共 2～4 周。
B. 动物在最后一次缺氧实验完成后次日，用 10％ 乌拉坦（1 mL/100 g）腹腔麻醉。
C. 测定右心室压和肺动脉压力：分离大鼠右侧颈外静脉，将塑料导管（外径 0.9 mm，内径 0.6 mm）一端连接压力传感器，一端从颈外静脉插入，用 RM-6200 四导生理记录仪观察压力波形，以辨别导管顶端在右心室及肺动脉位置。测定并记录平均右心室压力和平均肺动脉压力。
D. 测毕结扎右侧颈外静脉，并立即分离左侧颈总动脉，将塑料导管（外径 1 mm，内径 0.6 mm）一端与注射针头连接，针头尾端接三通管开关，后者接注射器，便于用肝素生理盐水冲洗导管以防凝血，另一端从颈总动脉插入。转动三通阀门，使导管与注射器相通，当有回血时，关闭三通阀门。将大鼠置于密闭舱内，舱内气体浓度条件同前。
E. 30 分钟后，抽取导管部分的血液弃掉。用注射器抽取动脉血做血气分析。将大鼠从舱内取出，立即剪开动物胸腔，取出心、肺制备病理标本。

如需了解更多产品详情，请前往阿拉丁官网查询。

https://www.aladdin-e.com