SBFI AM 钠离子荧光指示探针在细胞内Na⁺成像中的应用及实验操作方案
SBFI AM 钠离子荧光指示探针在细胞内Na⁺成像中的应用及实验操作方案
SBFI AM 钠离子荧光指示探针简介与应用概述
SBFI,全名Sodium-binding Benzofuran Isophthalate,是一种Na⁺选择性荧光指示剂,可用于评估纯化线粒体Na⁺ 梯度、检测胞内Na⁺水平、测定细胞Na⁺外流,以及与其他荧光指示剂联合使用,分析Na⁺与Ca²⁺、Mg²⁺浓度、胞内pH和膜电位变化之间的相关性。
虽然SBFI对Na⁺的亲和力(Kd)低于典型Ca²⁺指示剂(如Fura-2对Ca²⁺的亲和力),但在存在其他单价阳离子的体系中,SBFI仍足以检测Na⁺的生理浓度。Na⁺结合后,SBFI的激发光谱发生变化,可通过340/380 nm激发比率测定进行判定,并可与使用相同滤光片和仪器检测的探针Fura-2联合使用。
在含有生理浓度K⁺/Na⁺(约 135 mM)的体系中,SBFI对Na⁺的解离常数(Kd)约为11.3 mM;在无K⁺的体系中,对Na⁺的 Kd约为3.8 mM。SBFI对Na⁺的选择性约为对K⁺的18倍。
在实际应用中,常用的为SBFI的AM酯形式(SBFI AM)而不是游离型SBFI。游离型SBFI带有电荷,不能自由穿透细胞膜,如需用于细胞内Na⁺检测,必须通过显微注射、电穿孔或其他转运手段导入,操作复杂且重复性较差;而SBFI AM通过引入乙酰氧基甲基(AM)基团,暂时屏蔽了电荷,呈中性、脂溶性,可被动穿透细胞膜进入胞内。进入细胞后,细胞内酯酶会逐步水解AM基团(即下述“酯酶水解孵育”步骤),重新生成带电荷的游离型SBFI,使其滞留在胞内并恢复对Na⁺的荧光响应能力。因此,实验中先使用易透膜的SBFI AM形式进行加载,再通过酯酶水解释放出游离型SBFI,是实现细胞内稳定、可重复Na⁺成像的关键步骤。
产品理化性质及储存条件
本品为乙酰氧基甲基酯(Acetoxymethyl ester, AM ester)形式的SBFI,CAS号:129423-53-6,具有细胞膜渗透性,只需简单孵育即可进入细胞。常用加载浓度范围为5–10 µM,加载时间40 min–4 h,可根据具体的实验要求和细胞类型进行调整。
1. 理化性质
1)化学名:4,4’-[1,4,10-trioxa-7,13-diazacyclopentadecane-7,13-diylbis(5-methoxy-6,2-benzofurandiyl)]bis-1,3-benzenedicarboxylic acid 1,1’,3,3’-tetrakis[(acetyloxy)methyl] ester
2)同义名:Sodium-binding Benzofuran Isophthalate Acetoxymethyl ester
3)CAS 号:129423-53-6
4)分子式:C₅₆H₅₈N₂O₂₃
5)分子量:1127.07
6)Ex/Em:340, 380 / 500 nm
7)外观:浅黄至暗黄至暗橙色固体或油状物
8)溶解性:溶于DMSO(10 mM)
2. 保存与运输
(a) 保存:-20 ℃ 避光、干燥条件下冻存,稳定期两年。
(b) 运输:冰袋运输。
SBFI AM工作液配制及细胞内Na⁺成像实验流程
以下步骤仅作参考,具体条件请根据实际情况或相关文献进行优化和调整。
1)SBFI AM 储备液的配制
配置1–10 mM SBFI AM储备液。例如:实验前取一管50 µg SBFI AM,于室温回温至少20 min,低速离心收集粉末后,加入8.8723 µL 无水DMSO使其充分溶解,即可制备5 mM储备液。若单次用不完,应分装后冻存保存。
2)25%(w/v)Pluronic F-127的配制
取100 mg Pluronic F-127 粉末,加入400 µL DMSO,配制成25%(w/v)Pluronic F-127 DMSO 母液。溶解过程可在40–50 ℃ 加热20–30 min。溶液可室温保存,无需冷藏。如有结晶析出,可再次加热溶解,不影响使用。(亦可配制其他浓度的 Pluronic F-127,只需保证最终工作体系内 Pluronic F-127 < 0.1%(w/v)。)
3)SBFI AM与Pluronic F-127的预混
在正式实验前,将SBFI AM 储备液与等体积 25%(w/v)Pluronic F-127 充分混匀。
注意:SBFI AM 水溶性差,必须借助Pluronic F-127促进其分散并进入水相加载缓冲液。两者应在实验前现配现用,不宜预先混合后长期保存。
4)工作液及细胞加载
将上述混合液加入适量细胞加载缓冲液(如生理缓冲液PBS、无血清细胞培养基等),配制成所需工作浓度,然后加入细胞进行探针标记。孵育温度可为室温或37 ℃,孵育浓度通常为5–10 µM,时间40 min–4 h。具体孵育浓度和时间请参考相关文献并结合不同细胞类型进行优化。
5)酯酶水解孵育
孵育结束后,更换为不含探针的细胞加载缓冲液,额外孵育20–60 min,以保证细胞内酯酶能充分水解SBFI AM的 AM基团,生成游离型SBFI。
6)洗涤
使用生理缓冲液或无血清培养基清洗细胞至少一次,以降低胞外背景荧光。
7)荧光检测
使用合适的荧光检测仪器采集信号,分别在激发波长 340 nm 和 380 nm、发射波长 500 nm(可在 450–550 nm 范围内根据实际情况选择)条件下收集荧光信号。通过340/380 nm激发比值变化来推算Na⁺浓度。
【补充注意事项】
1)若细胞加载缓冲液以碳酸氢钠为缓冲体系,加载过程需在含5% CO₂的环境中进行,以防CO₂损失引起缓冲液碱化。
2)若细胞加载缓冲液中含血清,需适当提高AM探针工作浓度,以补偿因AM探针与血清蛋白结合造成的有效浓度下降。
3)对于分子量接近或超过1000的AM探针,通常需要在不含探针的细胞加载缓冲液中进一步孵育20–60 min,以保证细胞内酯酶能充分降解AM基团。
4)探针的加载时间和浓度会因细胞类型不同而存在差异,请在使用前参考相应文献并进行条件摸索。
5)探针在细胞内的有效Kd与溶液中的Kd存在差异,SBFI的胞内Kd可借助通道形成抗生素(如 gramicidin)进行校准(calibration),根据具体实验需求决定是否进行该步骤。
阿拉丁产品推荐
阿拉丁货号 | 产品品名 | CAS/规格 | 在实验中的作用/角色 |
- | SBFI AM(Sodium-binding Benzofuran Isophthalate, AM ester) | 129423-53-6 | 主角探针;细胞膜通透的 Na⁺ 荧光指示剂,通过 AM 酯形式进入细胞,酯酶水解后生成游离 SBFI,用于细胞内 Na⁺ 比率成像(340/380 nm)。 |
SBFI(Sodium-binding Benzofuran Isophthalate,游离型) | 124549-08-2 | 不可透膜的 Na⁺ 指示剂染料;一般用于体外溶液或通过显微注射/电穿孔等方式导入细胞。 | |
Pluronic F-127(泊洛沙姆 F-127) | 9003-11-6 BioReagent 用于细胞培养 Granular waxy | 非离子型表面活性剂;与SBFI AM 等体积预混,增强 AM 探针在水相中的分散和溶解,提高细胞加载效率,终浓度需 < 0.1%(w/v)。 | |
二甲基亚砜(Dimethyl sulfoxide,DMSO,无水) | 67-68-5 无水级 | 有机溶剂;用于溶解 SBFI AM 配制 1–10 mM 储备液,也用于溶解 Pluronic F-127 配制 25%(w/v)母液。要求无水、避光、低温保存。 | |
PBS(Phosphate-buffered saline,磷酸盐缓冲盐水) | liquid,Modified,without calcium chloride and magnesium chloride,sterile-filtered,1×,pH 7.1 - 7.5 | 作为“细胞加载缓冲液”之一,用于配制 SBFI AM 工作液和孵育/洗涤细胞,提供近似生理离子强度和 pH。 | |
无血清细胞培养基(RPMI无血清配方) | RPMI 1640 培养基; 无菌过滤 BioReagent 通过内毒素测试 用于细胞培养 | 作为无血清“细胞加载缓冲液”,用于孵育细胞并加载 SBFI AM 探针;在含血清条件下需适当提高 AM 探针浓度。 | |
碳酸氢钠(Sodium bicarbonate,NaHCO₃) | 无动物源 低内毒素 用于细胞培养 ≥99.5% | 以碳酸氢钠为缓冲体系的培养基/缓冲液成分之一;提示:使用此类缓冲体系时需在5% CO₂环境下加载,避免CO₂丢失导致碱化。 | |
血清(如胎牛血清 NCS) | BioReagent 无菌 | 作为培养基组分; | |
Fura-2 AM(Ca²⁺ 荧光比率探针,Fura-2 acetoxymethyl ester) | 108964-32-5 ≥95%(HPLC) | 比率型 Ca²⁺ 指示剂;可与SBFI共用340/380 nm双激发成像系统,用于同时监测 Na⁺ 与 Ca²⁺。 | |
Gramicidin / 短杆菌肽(channel-forming ionophore) | 1405-97-6≥95% | 通道形成抗生素/离子载体;用于建立细胞内外Na⁺平衡,进行SBFI比值信号的原位校准(calibration),以获得胞内有效 Kd 和标准曲线。 |
参考文献:
a) Negulescu PA et al. Intracellular ion activities and membrane transport in parietal cells measured with fluorescent dyes. Methods Enzymol. 1990;192:38-81.
b) Harootunian et al. Ratio imaging using a newly developed fluorescent sodium indicator in rat fibroblasts. FASEB J 2:A728 (1988).
c) Harootunian et al. Fluorescent ratio imaging of cytosolic free Na⁺ in fibroblasts and lymphocytes. J Biol Chem. 1989.
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