用紫外线照射蛋白质核酸复合物，在核酸核蛋白紧密接触的地方能引起共价键形成，从而选择性地标记了与DNA识别位点特异性结合的DNA结合蛋白。由于标记物从核酸到蛋白质的传递，因此可对粗制混合物中的DNA结合蛋白的分子质量进行快速和可靠的测定。来源：《精编分子生物学实验指南》第五版

操作方法

用溴脱氧尿苷（BrdU)取代的探针进行紫外交联

原理

含有胸苷卤代物如溴脱氧尿苷（BrdU)的DNA比非取代的DNA对紫外线诱导的 交联更为敏感。本方案中的紫外交联效率是0.1%〜10%，而且在单一复合物中出现1 次以上交联事件的情况十分罕见。

材料与仪器

含有所研究结合位点的M13单链载体
17 bp 的 M13 通用引物 1×和10×限制性内切核酸酶缓冲液 （分别含500μmol L和500 mmol L NaCl） 3000 Ci mmol [α32P] dCTP 50×dNTP BrdU 溶液 0.lmol L 二硫苏糖醇（DTT)
DEAE 膜(Schleicher &- Schuell NA45) 0.5 mL圆底 螺旋盖的小瓶（Nunc或相当产品） 水浴锅 紫外透射仪

步骤

1）将10μL含有高亲和性蛋白结合位点的目的序列的单链M13载体与等摩尔的17 bp M13通用引物混合。用1×限制性内切核酸酶缓冲液（50 mmol/L NaCl)将终体积调至100μL。90℃加热5min，在室温下冷却过夜。

2) 将下列反应物加入杂交混合物中：

50μL [α³²P] dCTP (3000 Ci/mmol)

3.5μL 50× dNTP/BrdU 溶液

1.75μL 0.1 mol/L 二硫苏糖醇（DTT)

7.5μL 10×限制性内切核酸酶缓冲液（NaCl终浓度50 mmol/L)

7μL H2O

5μL Klenow 酶（25 U)

16℃温育 90 min。

3) 68℃加热 10 min 灭活 Klenow 酶。

4) 在合适条件下，用40U限制性内切核酸酶消化，产生20〜600 bp的DNA片段。

5) 加乙酸铵至0.3 mol/L，用2倍体积的100%乙醇沉淀DNA，重悬于TE缓冲液中。

6) 在含有0.5μg/mL溴化乙锭的琼脂糖凝胶上电泳。用DEAE膜分离所要的DNA片段。

7) 用闪烁计数器检测BrdU取代的DNA片段的特异活性，并用溴化乙锭点迹定量法估计DNA的浓度。

探针的完整性和功能可用迁移率变动DNA结合分析法进行检测。

8) 在1.5 mL圆底小瓶中建立下列结合反应：

10⁵cpm均衡标记的探针、经缓冲的含有结合蛋白的提取液、10~20μg DNA 载体如 poly (dl-dC) • poly (dl-dC)。总体积调至50μL。用塑料薄膜封口，再加封Parafilm膜固定。

9) 将小瓶置于试管架上，用倒置的紫外透射灯（305nm，7000μW/cm²) 在正上方5 cm处照射60 min

10) 在各结合反应管中加入以下反应物：

1μL 0.5 mol/L CaCl₂

4μg DNA 酶 I

1U微球菌核酸酶 37℃消化 30 min。

11) 加入等体积的2×SDS样品缓冲液到反应混合物中，100℃煮沸5min。

12) 在适当浓度的不连续SDS-聚丙烯酰胺凝胶上对样品进行电泳,包括¹⁴C 标记的蛋白质分子质量标记物。

13) 电泳结束后，切去凝胶前沿的染料。

14) 干胶，并且用增感屏放射自显影1〜3天，以观测交联的蛋白质。

常见问题

其他所需试剂：25 U大肠杆菌DNA聚合酶I的Klenow片段，乙酸铵，100%乙醇，TE缓冲液，经缓冲的含有DNA结合蛋白的提取液，大分子载体 DNA，如 poly (dl-dC) • poly (dl-dC)，0.5 mol/L CaCl₂，DNA 酶 I (Worthington)，1 U微球菌核酸酶（Worthington)，2×SDS样品缓冲液，Fluor (Du Pont NEN Enhance 或相当物），¹⁴C标记的蛋白质分子质量标记物

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