本试剂盒基于磁珠分离纯化方式，适合于从口腔拭子样本中纯化高质量核酸，提取过程中无需使用有毒的酚氯仿抽提，也无需进行耗时的醇类沉淀，整个提取过程最快只需30分钟。该试剂盒可整合磁棒法或移液法自动核酸提取仪进行高通量提取实验，也可使用磁力分离架进行手工操作。
Magnetic纯化系统以超顺磁性的纳米磁性粒子为基质，这种磁性粒子在高浓度离液剂的条件下可通过氢键和静电特异的吸附核酸，而蛋白质或其它非特异吸附的少量杂质经洗涤被去除，最后用低盐缓冲液或RNase-Free ddH2O洗脱核酸。纯化的核酸可适用于各种常规操作，包括 PCR、荧光定量PCR和病毒检测等各种下游实验。
产品组分表
| M1372312 | Component | 50 T | Storage |
| M1372312A | 唾液/拭子样本DNA保存液 | 28 ml | RT |
| M1372312B | Buffer IP | 25 ml | RT |
| M1372312C | Buffer DW | 55 ml | RT |
| M1372312D | Buffer MWP | 40 ml | RT |
| M1372312E | Buffer EB | 15 ml | RT |
| M1372312F | 磁珠XT | 1.7 ml | RT |
| M1372312G | Proteinase K | 1.2 ml | RT |
储存条件
试剂盒中所有组分可在室温干燥条件下保存15个月。
样本要求
1. 适用样本类型：各种唾液或口腔拭子样本，尽量选取新鲜的样本。
2. 样本采集：用无菌容器采集样本，也可保存在专用保存液中。
3. 样本保存和运送：保存于唾液/拭子DNA保存液的唾液或拭子样品可在室温贮存超过1年，方便运输和存储。
手工操作步骤
一. 样本前处理
1. 干拭子：
取1根干拭子放置于1.5 ml离心管中，加入20 μl Proteinase K和500 μl唾液/拭子DNA保存液，振荡混匀10 sec后，75℃ 1500 rpm振荡混匀30 min，结束后室温放置5 min。
2. 湿拭子：
取放置于保存液中的湿拭子，按比例加入Proteinase K (一般按500 μl唾液/拭子DNA保存液加入20 μl Proteinase K)，振荡混匀10 sec后，放置于金属浴中，75℃ 1500 rpm振荡混匀30 min，结束后室温放置5 min。
注意：如若需要节省时间，所有样本 (干拭子和湿拭子) 在振荡混匀10 sec后，可以省略
在金属浴中孵育步骤 (DNA得率可能会降低)。
二. 手工操作步骤
拭子样本前处理完成后，按以下操作步骤进行：
1. 预先根据样本数量按照 30 μl 磁珠 XT 和 400 µl Lysis Buffer 的比例混合，混合后加入 1.5 ml 离心管中，每管加入量为 430 µl。
注意：为了确保磁珠彻底重悬，请在使用前振荡混匀。
2. 加入前处理后的 400 μl 拭子样本，涡旋混匀 10 sec 重悬磁珠，75℃ 1000 rpm 振荡混匀30 min，结束后瞬时离心，保证管盖上无液体。
3. 将离心管转移至磁力架上吸附 1 min (直至溶液澄清)，小心吸弃溶液，期间避免接触磁珠。
4. 将离心管从磁力架上取下，加入 500 μl Buffer DW，涡旋混匀 10 sec 重悬磁珠，室温1000 rpm 振荡混匀 1 min，结束后瞬时离心，保证管盖上无液体。将离心管转移至磁力架上吸附 30 sec (直至溶液澄清)，小心吸弃溶液，期间避免接触磁珠。
5. 重复步骤 4 一次。
6. 将离心管从磁力架上取下，加入 500 μl Buffer MWP，涡旋混匀 10 sec 重悬磁珠，室温1000 rpm 振荡混匀 1 min，结束后瞬时离心，保证管盖上无液体。将离心管转移至磁力架上吸附 30 sec (直至溶液澄清)，小心吸弃溶液，期间避免接触磁珠。
7. 将除尽上清后的离心管室温干燥约 3-5 min，至磁珠表面呈哑黑色，表面无光泽状态。
8. 将离心管从磁力架上取下，加入 60-80 μl Buffer EB，涡旋混匀 20 sec 重悬磁珠，55℃1000rpm 孵育 10 min。结束后瞬时离心，保证管盖上无液体。
9. 将离心管转移至磁力架上吸附 2 min，待磁珠完全吸附后，小心将核酸溶液转移至一个新离心管 (自备) 中，并于适当条件保存。
ZJ25F0825615
危险品化学品经营许可证（带存储）