计算溶液所需的质量、体积或浓度。
EnzymoPure™,无RNA酶,无动物源,无菌,无载体 级 ,适用于对基线干扰要求严格的色谱和分析工作流程。
-20°C储存,避免反复冻融。超低温运输 。请查阅批次 COA 获取详细规格。
SDS、COA、产品数据表及规格说明书均可下载。可通过批号查询获取批次 COA。
在色谱分析、有机合成和交叉偶联反应领域已被 0 篇同行评审文献引用。
公司生产的超快速 T4 DNA 连接酶,即 Instant T4 DNA Ligase,是 T4 DNA 连接酶的升级版本,可以快速高效催化粘端或平端双链 DNA 或 RNA 的 5'-P 末端和 3'-OH 末端之间以磷酸二酯键结合,该催化反应需 ATP 作为辅助因子。同时 Instant T4 DNA Ligase 可以修补双链 DNA、双链 RNA 或 DNA/RNA 杂合双链中的单链缺刻(single-strand nicks)。
纯度(Purity): 不含 DNA 内切酶、外切酶和磷酸酯酶,不含 RNA 酶,满足常规连接反应要求。
组分和说明
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产品应用
Instant T4 DNA Ligase 常用于 DNA 片段和载体、linker 或 adaptor 等的连接。也可用于缺刻修复及 Ligase 介导的 RNA 检测。
产品优势
修复及 Ligase 介导的 RNA 检测
使用说明
1. PCR 产物或酶切片段和普通载体的连接。
a. 取 1-2µg 载体酶切过夜,或至少酶切 3-5h 以上。尽量确保酶切充分,否则后续会导致产生很多自连的克隆。
注:如果载体进行的是单酶切,请务必进行去磷酸化处理,推荐使用 Antarctic Phosphatase (Thermosensitive) 避免后续产生很多自连的克隆。
b. 载体酶切或去磷酸化处理完毕后,可以使用试剂盒进行纯化,例如磁珠法 PCR/DNA 纯化试剂盒或 PCR 纯化试剂盒/DNA纯化试剂盒。也可以采用常规的酚氯仿抽提乙醇沉淀方法纯化载体。对于酶切产生较大片段(大于 50-60bp)的情况推荐采用切胶回收的方式。
c. 对于 PCR 产物:PCR产物凝胶电泳后,切胶回收预期大小的 DNA 片段。凝胶中 DNA 片段的回收可以使用试剂盒进行操作,例如的磁珠法DNA 凝胶回收试剂盒或 DNA 凝胶回收试剂盒。也可以采用反复冻融等方法回收 DNA 片段。
d. 对于回收的 PCR 产物或其它需酶切的 DNA 片段,用适当内切酶酶切,随后纯化酶切产物。
注:这一步的酶切不必酶切特别充分,通常酶切效率能达到 80-90%以上即可。即本步骤的酶切通常酶切 1-2 小时即可。酶切产物可使用试剂盒进行纯化,例如阿拉丁的磁珠法 PCR/DNA 纯化试剂盒或PCR纯化试剂盒/DNA 纯化试剂盒。也可以采用常规的酚氯仿抽提乙醇沉淀 方法纯化。
e. 取约 25-100ng 经过酶切和纯化的载体,加入 3 倍摩尔数的待插入片段。参考下表设置连接反应体系。
注 1:很多时候由于载体量和待插入片段的量都比较少,在回收后很难定量。此时可以根据回收前电泳条带的亮度进行大致的估计。通常以DNA 分子量标准的某一条带为参考,估计或通过灰度半定量目的条带和该参考条带的亮度的比例关系。然后再按照预计的纯化或凝胶 回收时的得率计算出最终得到的载体量和待插入片段量的比例关系。超纯水推荐使用 Ultrapure Water (DNase/RNase-Free, Sterile)。
注 2:通常每个反应使用 0.2-0.5µl 连接酶已经足够,如果希望进一步提高连接效率,可以把连接酶的用量提高至 1µl。
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f. 用移液器轻轻吹打混匀或轻微 Vortex 混匀,室温离心数秒,使液体积聚于管底。
g. 16ºC 孵育 1-18h,或 20-25ºC 孵育连接 1-2h。
注 1:同时兼容双平端和双粘端 DNA 片段连接。
注 2:通常 16ºC 孵育 1-4h 即可以获得较好的连接效果。 h. 随后即可直接取连接产物用于转化感受态细菌。
2. PCR 产物和 T 载体的连接。
a. PCR 产物凝胶电泳后,切胶回收预期大小的 DNA 片段。凝胶中 DNA 片段的回收可以使用例如磁珠法 DNA 凝胶回收试剂盒或 DNA 凝胶回 收试剂盒等试剂盒,也可以采用反复冻融等方法回收 DNA 片段。
b. 按照 T 载体的说明书取适量 T 载体,加入 3 倍摩尔数的待插入片段。参考下表设置连接反应体系。
注 1:很多时候由于载体量和 PCR 产物的量都比较少,在回收后很难定量。此时可以根据回收前电泳条带的亮度进行大致的估计。通常以 DNA 分子量标准的某一条带为参考,估计或通过灰度半定量目的条带和该参考条带的亮度的比例关系。然后再按照预计的纯化或凝胶回收 时的得率计算出最终得到的载体量和 PCR 产物的量的比例关系。
注 2:通常每个反应使用 0.2-0.5µl 连接酶已经足够,如果希望进一步提高连接效率,可以把连接酶的用量提高至 1µl。
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c. 用移液器轻轻吹打混匀或轻微 Vortex 混匀,室温离心数秒,使液体积聚于管底。
d. 16ºC 孵育 1-18h,或 20-25ºC 孵育连接 1-2h。
注:通常 16ºC 孵育 1-4h 即可以获得较好的连接效果。
e. 随后即可直接取连接产物用于转化感受态细菌。
3. Linker 或 miRNA/RNAi/ sgRNA 等小 RNA 表达用 DNA 片段和载体的连接:
a. 载体的酶切和纯化同步骤 1a 和 1b。
b. Linker 或 miRNA、RNAi、sgRNA 等小 RNA 表达用 DNA 片段的退火可以选择适当的 DNA 退火缓冲液,进行退火反应。
c. 长度大于 8bp 的 Linker 或退火的小 RNA 表达用 DNA 片段,可以按照 5:1 至 10:1 的比例和载体进行连接反应。例如载体为 0.03pmol, 则插入片段可以为 0.15 至 0.3pmol。长度小于 8bp 的 linker,比例需调整为 10:1 以上。
d. 除插入片段的用量外,随后按照步骤 1e-1h 进行。
4. DNA 自身环化的连接:
参考步骤 1e,待插入片段换成适量的水即可。其余步骤按照步骤 1f-1h 进行。
5. 其它类型的 DNA 片段连接参考上述方法进行。
常见问题:
1. 连接反应后转化效率很低或阳性克隆非常少。
a. 可能感受态细菌转化效率太低,用质粒作为阳性对照同时检测感受态的转化效率。
b. 可以尝试提高载体或插入片段的纯度,也可以考虑适当提高载体或插入片段的用量。对于平端连接需注意适当延长连接时间。
c. 可能载体酶切不够充分,用未经连接的载体转化作为阴性对照。
d. 用存放 DNA 的溶液进行转化,作为阴性对照,检测感受态细菌是否存在问题。
保存条件: -20℃保存,≤0℃运输
注意事项:
(1)对于普通的转化大肠杆菌的操作,不必对连接产物进行纯化,连接产物可以直接用于转化。但用电转方法转化大肠杆菌时,通常宜先用 DNA 纯化试剂盒或酚氯仿抽提方法等纯化 DNA,然后再进行电转。
(2)需进行平端连接或快速连接时,推荐使用快速 DNA 连接试剂盒。Instant T4 DNA Ligase 可以进行平端连接,但效率较低。
(3)普通连接反应不必进行凝胶电泳观察。如果需要对于连接产物进行凝胶电泳观察,推荐先在 65℃孵育 10 分钟使Instant T4 DNA Ligase 失活,以避免 Instant T4 DNA Ligase 和 DNA 结合导致的条带位置迁移(band shift)。
(4)本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
(5)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
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| 批号(Lot Number) | 证书类型 | 货号 |
|---|---|---|
| 分析证书 | rp224201 | |
| 分析证书 | rp224201 | |
| 分析证书 | rp224201 |
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