计算溶液所需的质量、体积或浓度。
BioReagent,for DNA and RNA applications,分子生物学级,无DNA酶和RNA酶 级 ,适用于对基线干扰要求严格的色谱和分析工作流程。
2-8°C储存,禁止冷冻。低温运输,禁止冷冻 。请查阅批次 COA 获取详细规格。
SDS、COA、产品数据表及规格说明书均可下载。可通过批号查询获取批次 COA。
在色谱分析、有机合成和交叉偶联反应领域已被 0 篇同行评审文献引用。
UltraBio™ 小片段DNA纯化磁珠适用DNA片段的纯化,可简单、快速回收低至50bp的DNA片段,并且可以有效去除引物二聚体、dNTP、无机盐及蛋白质等杂质。经该磁珠纯化得到的产物可直接用于测序、PCR 模板、酶切等下游分子实验。
使用说明:
一、自备试剂和器材
1、80%乙醇
2、洗脱液:10mM Tris-HCl(pH8.0)或无菌水
3、设备:移液器、涡旋振荡器、磁力架、离心管
二、离心管手动操作步骤
1、将样本加入1.5mL离心管中,参照下表1加入特定体积的磁珠悬液,涡旋混匀后室温静置5min。将离心管置于磁力架上至溶液完全澄清,弃去上清。
注:磁珠悬液加入量=结合比率*样本体积。
2、保持离心管固定于磁力架上,加入200μL 80%乙醇,确保磁珠浸没于80%乙醇中,静置1min,无需重悬磁珠,弃去上清(保持离心管固定于磁力架上)。
3、重复步骤2一次。
4、保持离心管置于磁力架上,静置通风2-5min除醇。
注:除醇过程中请勿过分干燥磁珠,否则会降低纯化效率。
5、将离心管从磁力架上取下,加入30-100μL洗脱液洗脱,涡旋混匀后室温静置5min。
6、将离心管置于磁力架上,静置2-5min,待磁珠完全吸附后将洗脱液转移至新样品管中备用。
| DNA片段大小 | ≥50bp | ≥200bp | ≥500bp |
| 结合比率 | 2.2× | 1.0× | 0.5× |
表1 回收DNA片段大小与磁珠悬液加入量比率
三、机提-16/32通道核酸提取仪操作步骤
1、上样准备:在96孔板中分别参照下表用量加入每个相应孔位,可同步完成16/32个样品的处理。
| 样品孔位 | 1、7 | 2、8 | 3、9 | 6、12 |
| 试剂 | 待纯化样本+特定体积磁珠悬液 | 80%乙醇(200μL) | 80%乙醇(200μL) | 洗脱液(30-100μL) |
注:磁珠用量体积参照表1确定。
2、上机提取
将准备好的96孔样品板放入核酸提取仪中,并插入磁棒套; 打开仪器的操作程序,调出对应程序,点击运行,开始提取。
3、洗脱转移
仪器运行结束后,将第6列和第12列孔位的洗脱液转移至干净的无核酸酶的离心管中。
四、机提-96通道核酸提取仪操作步骤
1、上样准备:在96孔板中分别参照下表用量加入每个相应孔位,可同步完成96个样品的处理。
| 工位 | 1 | 2 | 3 | 6 |
| 试剂 | 待纯化样本+特定体积磁珠悬液 | 80%乙醇(200μL) | 80%乙醇(200μL) | 洗脱液(40-100μL) |
注:磁珠用量体积参照表1确定。
2、上机提取
将准备好的96孔样品板放入核酸提取仪中,并插入磁棒套; 打开仪器的操作程序,调出对应程序,点击运行,开始提取。
3、洗脱转移
仪器运行结束后,将洗脱产物封口保存或移至干净的无核酸酶的PCR板中-20℃保存备用。
注意事项:
1、本试剂为磁珠悬液,严禁冷冻、离心,第一次使用前需充分涡旋混匀;
2、建议样本体积至少为100μL,从而降低加样误差;若样本体积不足100μL可用水补足;
3、磁珠使用前须提前半小时取出,平衡至室温;
4、磁珠请勿过分干燥,否则会降低洗脱效率。
UltraBio™ Small DNA Clean Beads designed for efficient purification of DNA fragments ≥50 bp. Enables rapid removal of primer dimers, dNTPs, salts, and proteins. Purified DNA is directly suitable for sequencing, PCR templates, enzymatic digestion, and other downstream applications.
User-Supplied Reagents & Equipment
1.Reagents
80% Ethanol
Elution Buffer: 10 mM Tris-HCl (pH 8.0) or Nuclease-Free Water
2.Equipment
Pipettes
Vortex mixer
Magnetic rack
1.5 mL microcentrifuge tubes
Manual Protocol (Centrifuge Tubes)
Table 1: Bead-to-Sample Ratios
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1.Binding
Add bead suspension (volume per Table 1) to sample in 1.5 mL tube.
Vortex-mix → Incubate 5 min at RT.
Place tube on magnetic rack → Discard supernatant when clear.
2.Wash 1
Keep tube on rack. Add 200 μL 80% ethanol (submerge beads).
Incubate 1 min → Discard supernatant (do not resuspend).
3.Wash 2
Repeat Step 2.
4.Ethanol Removal
Air-dry beads 2–5 min (critical: avoid over-drying).
5.Elution
Add 30–100 μL Elution Buffer.
Vortex-mix → Incubate 5 min at RT.
6.DNA Recovery
Place tube on magnetic rack 2–5 min.
Transfer supernatant to new tube.
Automated Protocol: 16/32-Channel System
96-Well Plate Setup
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Procedure
1.Load plate into instrument → Insert magnetic tips.
2.Execute predefined program.
3.Transfer eluate from columns 6 & 12 to nuclease-free tubes.
Automated Protocol: 96-Channel System
96-Well Plate Setup
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Procedure
1.Load plate → Insert magnetic tips.
2.Run instrument program.
3.Seal elution plate or transfer to nuclease-free PCR plate.
Storage: -20°C
Precautions
1.Bead Handling
DO NOT freeze or centrifuge the suspension.
Vortex thoroughly before first use.
2.Sample Volume
Minimum 100 μL (adjust to 100 μL with water if needed).
3.Pre-Use Protocol
Equilibrate beads to RT for ≥30 min.
4.Critical Step
Avoid over-drying beads during ethanol removal.
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| 批号(Lot Number) | 证书类型 | 货号 |
|---|---|---|
| 分析证书 | S1456145 | |
| 分析证书 | S1456145 |
我们的级别选择指南涵盖了目录中所有的变体的纯度、稳定剂状态和应用适用性。
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