本试剂盒适用于从多种不同植物组织或植物培养细胞中快速简单地提取基因组 DNA，提取的 基因组 DNA 片段大，纯度高，稳定性好，可直接用于 PCR、酶切和杂交等实验。提取过程无需酚、 氯仿抽提，新鲜或冻存植物组织细胞磨碎后经裂解液裂解和离心，蛋白质、多糖、细胞残片被沉淀 去除，在优化的结合条件下 DNA 可与吸附柱 WMF 特异性的结合，快速充分地洗涤去除残留蛋白 质和盐分等杂质，最后 DNA 洗脱溶解在 Buffer EB 中。
产品组分表：
| D1121524 | Component | 50 T | Storage | | D1121524A | Buffer DL1plus | 25 ml | RT | | D1121524B | Buffer DL2 | 10 ml | RT | | D1121524C | Buffer DL4 | 21 ml | RT | | D1121524D | Buffer DW2 | 12 ml | RT | | D1121524E | Buffer EB | 15 ml | RT | | D1121524F | RNase A (10 mg/ml) | 550 μl | RT | | D1121524G | 吸附柱 WMF | 50 个 | RT | | D1121524H | 2 ml Collection Tubes | 50 个 | RT |
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储存条件
该试剂盒在室温干燥条件下可保存 15 个月。若溶液产生沉淀，使用前可在 37℃水浴溶解，摇 匀后使用。
注意事项
1. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段较小且提取量也下降。
2. Buffer DL1plus 可能会发黄，不影响提取效果。
3. 若 Buffer DL1plus 或 DL2 有沉淀析出，可在 37℃水浴溶解，摇匀后使用。
4. 所有离心步骤均为使用台式离心机，室温下离心。
操作步骤
使用前，向21mL Buffer DL4中加入27mL无水乙醇，向12mL Buffer DW2中加入48mL无水乙醇。
1. 样本处理： 取新鲜植物组织或干燥植物组织，加入液氮充分研磨成粉末。
注意：1. 进行 DNA 提取时，每管样本用量：新鲜植物组织≤100 mg；干燥植物组织≤20 mg。 请根据下游所需 DNA 用量，选择合适的植物组织量进行液氮研磨。2. 液氮研磨后的样本如不 立即使用，请置于-70℃保存，避免反复冻融。
2. 转移研磨好的 100 mg 新鲜植物组织或 20 mg 干燥植物组织至 1.5 ml 离心管（自备），然后立 即加入 400 μl Buffer DL1plus 和 10 μl RNase A(10 mg/ml)，涡旋振荡 2 min，至样本与溶液充 分混匀，室温放置 10-15 min。
注意：1. 样本与溶液一定要充分混匀，防止样本在溶液中结块而影响最终的基因组 DNA 提取 得率。2. 样品处理量不要超过试剂盒兼容量，否则导致样品裂解不充分；对于水分含量多的 样本，如草莓、西瓜等可适量增加样本量。
3. 加入 130 μl Buffer DL2，旋涡振荡 1 min，充分混匀。12,000 rpm (～13400×g) 离心 5 min，小心吸取适量的上清液至新的离心管中。
4. 加入 1.5 倍上清液体积的 Buffer DL4 (使用前请加入无水乙醇)，例如：400 μl 的上清液加 600 μl Buffer DL4，立即充分振荡混匀 30 sec，此时可能会出现絮状沉淀。
5. 将得到的溶液和沉淀一起转入吸附柱 WMF (吸附柱放在收集管中)，12,000 rpm (～13400×g) 离心 30 sec，弃去滤液，将吸附柱放回收集管中。（吸附柱容积为 700 µl 左右，可分次加入后 离心。）
6. 加入 500 µl Buffer DW2 (使用前请加入无水乙醇) 至吸附柱，12,000 rpm (～13400×g) 离心 30 sec，弃废液，将吸附柱放回收集管中。
7. 重复操作步骤 6。
8. 12,000 rpm (～13400×g) 离心 3 min，倒掉收集管中的废液。
9. 将吸附柱转入一个新的 1.5 ml 离心管（自备）中，打开吸附柱盖子，向吸附膜中间部位悬空滴 加 50-200 μl Buffer EB，12,000 rpm (～13400×g) 离心 1 min，得到 DNA 溶液。
注意：为增加基因组DNA的得率，可将离心得到的溶液再加入吸附柱WMF中,室温放置2 min， 12,000 rpm 离心 1 min。Buffer EB 体积应不少于 50 μl。
物理外观：Liquid
是否无菌：否
ZJ25F0724828
危险品化学品经营许可证（带存储）