腔肠素(Coelenterazine, CTZ)的区别与应用综述
腔肠素(Coelenterazine, CTZ)的区别与应用综述
腔肠素(Coelenterazine,CTZ,CAS 55779-48-1)是典型海洋荧光素,广泛作为多种海洋荧光素酶与水母发光蛋白(Aequorin)的底物与发光基团。不同腔肠素衍生物通过调控光谱位置、发光强度、反应动力学、稳定性与细胞通透性,适配报告基因检测、BRET能量转移分析、Ca2+高灵敏检测以及ROS/RNS相关化学发光检测等应用。
关键词:腔肠素;Coelenterazine;Aequorin;荧光素酶;BRET;钙离子;生物发光;ROS
一、基本信息与理化特性
1.1 名称与基础参数
腔肠素英文名Coelenterazine,常用缩写CTZ,CAS号55779-48-1;分子式C26H21N3O3,分子量423.46。常见外观为黄色固体;对光与湿度敏感,建议避光密封并在-20°C条件下保存。
1.2 理化性质与结构信息汇总
下表汇总腔肠素的标识信息、理化参数、光谱性质与结构表征信息,便于在方法学设计与试剂管理中快速引用。
项目 | 内容 | 项目 | 内容 |
CAS号 | 55779-48-1 | 英文名 | Coelenterazine |
英文别名 | Coelenteramine;CLZ-N;CLZN-N;CS-2297;Nanofuel;enterazine;Preluciferin;Coelenterazin;COELENTERAZINE;COELENTERAZINN | 中文名 | 腔肠素 |
中文别名 | 腔肠素;天然腔肠素;香菇碱杂质;腔肠素,94%;天然腔肠素,钙离子荧光探针腔肠素;8-苄基-2-(4-羟基苄基)-6-(4-羟基苯基)咪唑并[1,2-A]吡嗪-3(7H)-酮;8-苄基-2-(4-羟基苯基)-6-(4-羟基苯基)-咪唑并[1,2-A]吡嗪-3-(7H)-酮;2-[(4-羟基苯基)甲基]-6-(4-羟基苯基)-8-苄基-咪唑并[1,2-a]吡嗪-3-(7H)-酮;Injectable native Coelenterazine/注射用天然腔肠素 | CBNumber | CB9162998 |
分子式 | C26H21N3O3 | 分子量 | 423.46 |
MOLFile | 55779-48-1.mol | 熔点 | 176–181℃(decompose) |
沸点 | 641.4±65.0°C(Predicted) | 密度 | 1.32±0.1 g/cm³(Predicted) |
储存条件 | -20°C | 溶解度 | methanol and ethanol:soluble |
酸度系数(pKa) | 9.91±0.15(Predicted) | 形态 | solid |
颜色 | yellow | 敏感性 | Moisture & Light Sensitive |
最大波长(λmax) | 429 nm | 生物领域应用 | Calcium indicator;detecting luciferase、protease、gene expression、nucleic acids、proteins、stem cells、quantum dot conjugates、superoxide;tracing protein dynamics;as a substrate for luciferase |
InChI | InChI=1S/C26H21N3O3/c30-20-10-6-18(7-11-20)15-23-26(32)29-16-24(19-8-12-21(31)13-9-19)27-22(25(29)28-23)14-17-4-2-1-3-5-17/h1-13,16,27,30-31H,14-15H2 | InChIKey | YHIPILPTUVMWQT-UHFFFAOYSA-N |
SMILES | C12N=C(CC3=CC=C(O)C=C3)C(=O)N1C=C(C1=CC=C(O)C=C1)NC=2CC1=CC=CC=C1 |
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1.3 稳定性与实验管理要点
腔肠素在光照与含氧环境下易发生自发氧化并产生背景发光,且对湿度敏感。实验中建议采用避光操作、小体积分装、减少反复冻融与缩短室温暴露时间的策略;底物加入至开始采集的时间延迟应标准化记录,以降低动力学差异导致的数据不可比。
二、发光化学机理与反应决定因素
2.1 荧光素酶催化发光的核心路径
腔肠素在荧光素酶催化下与O2发生氧化反应,形成过氧化中间体并进一步生成高能四元环中间体;四元环断裂释放CO2并产生激发态发光产物,激发态回到基态时释放光子形成可检测生物发光信号。该过程通常无需额外辅因子参与,是腔肠素体系通用性强的重要原因。

2.2 影响信号质量的关键变量
(1)底物自发氧化与背景控制:需通过避光、低温、分装与减少暴露时间降低背景;在读板或成像前应确认空白孔/阴性样本的背景水平稳定。
(2)溶剂与体系兼容性:储备液溶剂需与细胞或酶体系兼容,稀释策略应避免局部高浓度导致蛋白失活或细胞毒性;同一批实验建议使用一致的溶剂体系与加入顺序。
(3)动力学匹配与采集参数:不同衍生物的反应速度与峰形差异显著,应匹配积分时间、采样频率与探测器增益,避免饱和与表观信号压缩,并优先保证处于仪器线性响应区间。
三、天然腔肠素与衍生物的差异:指标与选型逻辑
3.1 差异化的核心指标
(1)光谱特性:发射峰位置决定通道串扰与滤光片配置,尤其影响BRET与多通道读出。
(2)发光强度与信噪比:决定低表达、弱信号与短时窗检测的可行性,同时影响饱和风险。
(3)反应动力学与Ca2+敏感性:对Aequorin体系的瞬态响应与微小变化检出能力至关重要。
(4)稳定性与细胞通透性:决定胞内装载效率、体外/体内体系可重复性与背景水平。
3.2 代表性衍生物的区别特征
(1)天然腔肠素(CTZ,CAS 55779-48-1):通用性与兼容性强,适合作为标准底物用于Aequorin复合物再生、报告基因检测与BRET基础方案,并可用于部分ROS/RNS相关化学发光读出。
(2)腔肠素400a(CAS 70217-82-2):发射峰约400 nm,常用于以GFP为受体的BRET体系以降低受体通道串扰;对不同荧光素酶构建的兼容性需通过预实验验证。
(3)腔肠素H(CAS 50909-86-9):天然腔肠素的脱羟基衍生物,常用于获得更高光强与更高Ca2+敏感性,适合检测Ca2+微小波动与提高弱信号检出率。
(4)腔肠素hcp(CAS 123437-32-1):在Aequorin相关体系中可获得极高发光强度且Ca2+响应速度快,适用于低表达或短积分时间采集,但需严格控制浓度与采集参数以避免饱和。
(5)腔肠素cp:在部分体系中可用于提高发光输出并保持较快上升动力学,适合需要较高通量读出且对时间分辨率有要求的实验设计。
(6)腔肠素f(CAS 123437-16-1):兼具较强发光与较好细胞通透性,适用于胞内装载场景并维持较高Ca2+灵敏度,常用于活细胞读出与快速动力学采集。
(7)腔肠素n(衍生物类别):整体发光强度偏弱且Ca2+反应时间较慢,可用于降低灵敏度以扩大线性范围、避免强信号饱和或用于动力学对照设计。
(8)腔肠素e(CAS 114496-02-5):体外Aequorin再生速度快且可呈现双发射峰(例如约405 nm与465 nm),便于采用比值法提高Ca2+定量鲁棒性;细胞通透性较差且溶液稳定性相对有限,更适合体外体系或特定定量策略。
3.3 不同腔肠素底物的光谱与动力学对比数据
下表给出多种腔肠素底物在发射峰位置(Em)、RLC1、相对发光强度与半上升时间等指标上的对比,可用于BRET通道设计、快速瞬态捕捉与弱信号放大等任务的初步选型与参数预估。
(1)Em(nm)的方法学意义
① 用于供体发光与受体吸收的谱匹配评估,是BRET体系选择受体荧光蛋白、滤光片/分光器与检测通道的首要参数。
② 用于判断谱分离难度与串扰风险;当Em与受体通道重叠较多时,需通过更窄带宽滤光片、改用不同受体或更换底物降低串扰。
(2)RLC1与Relative Intensity的比较意义
① RLC1可用于对比不同底物在同一测试框架下的相对输出水平或有效发光效率,适合与Relative Intensity联合使用以进行“强度—线性—背景”权衡。
② Relative Intensity反映相同条件下的相对发光强度,直接决定弱信号体系的检出能力;当强度显著升高时,可通过降低底物浓度或缩短积分时间来降低自发氧化背景与饱和风险。
(3)Half-rise time(ms)的动力学意义
① 反映上升沿速度与时间分辨能力,对快速Ca2+瞬变、受体快速激活/失活以及高频采样动力学实验尤为关键。
② 在需要拟合上升相动力学参数(例如上升速率常数、峰值到达时间)时,Half-rise time较短通常可提高拟合稳定性,但也要求更高采样频率与更严格的加样同步。
(4)场景化选型建议
① BRET与多通道检测:优先以Em满足谱匹配并最小化串扰,再在可接受背景的前提下提高Relative Intensity以提升信噪比。
② Aequorin-Ca2+检测:优先匹配Half-rise time与目标Ca2+动力学,再通过Relative Intensity确定积分时间与采样频率,并结合通透性与稳定性降低漂移。
③ 高通量筛选:在保证线性区间与批间一致性的前提下选择中高强度底物,并通过标准化加样与固定读取窗口降低变异。
产品名称 | Em(nm) | RLC1 | Relative Intensity | Half-rise time(ms) |
天然腔肠素 | 466 | 1 | 1 | 6–30 |
腔肠素h | 466 | 0.75 | 16 | 6–30 |
腔肠素400a | 400 |
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腔肠素hcp | 445 | 0.65 | 500 | 2–5 |
腔肠素cp | 442 | 0.63 | 28 | 2–5 |
腔肠素f | 472 | 0.8 | 20 | 6–30 |
腔肠素n | 468 | 0.25 | 0.15 | 6–30 |
腔肠素e | 405 & 465 | 0.5 | 4 | 0.15–0.3 |
四、应用体系:差异化需求与方法学要点
4.1 Ca2+检测:Aequorin复合物体系
Aequorin通过结合Ca2+触发发光事件,腔肠素作为其发光基团决定复合物的光强、Ca2+敏感性与动力学响应。衍生物选择应以目标Ca2+范围、峰值持续时间、采样频率与是否采用比值定量为依据。
(1)微小波动与快速瞬态:优先考虑高敏与快速响应的衍生物,并同步优化采集频率与积分时间。
(2)定量鲁棒性提升:体外体系可考虑具双峰特征的衍生物,通过比值法降低体系波动影响。
4.2 报告基因与蛋白功能检测:海洋荧光素酶底物
腔肠素体系常用于基因表达、启动子活性、蛋白互作、蛋白酶切割等检测。方法学关键在于底物背景控制与酶-底物动力学匹配。
(1)信号与背景分离:需设置底物空白、阴性与阳性对照,必要时建立标准曲线与线性区间。
(2)基质效应评估:分泌型体系或复杂样本基质可能改变底物稳定性与背景,应进行基质匹配与稀释策略评估。
4.3 BRET:无外源激发条件下的能量转移检测
BRET依赖供体发光与受体吸收的光谱匹配,并高度受串扰与滤光片配置影响。底物选择应围绕供体发射峰位置、受体通道干扰、信号衰减速度与检测窗口进行优化。
(1)降低通道串扰:在GFP受体BRET中,可优先考虑发射更靠近400 nm的底物类别以降低干扰。
(2)时间窗匹配:不同底物的衰减与峰形差异要求固定采集时间点与积分参数以保证可比性。
4.4 ROS/RNS相关检测:氧化应激读出
腔肠素可用于细胞或组织内氧化应激相关物种的化学发光检测,但对特异性验证要求更高,应以严格对照与抑制剂验证为前提。
(1)特异性确认:建议加入清除剂/抑制剂对照以判定信号来源,并评估金属离子与光照对背景的贡献。
(2)批间一致性:底物分装、冻融次数与暴露时间需标准化,以降低背景漂移与批次效应。
4.5 活体成像与药效评估
活体应用除底物化学性质外,还受给药方式、体内分布与组织光学特性影响。需在给药剂量、采集时间点与信号归一化策略上建立标准流程,避免个体差异导致的不可比。
五、使用要点与质量控制建议
5.1 样品处理与保存规范
(1)避光分装:建议小体积分装,减少反复冻融与室温暴露时间。
(2)低温与干燥:-20°C避光密封保存,取用过程尽量减少吸湿与光照。
5.2 配液与对照体系
(1)储备液策略:优先在甲醇/乙醇等溶剂中配制高浓度储备液,实验前快速稀释并缩短水相停留时间。
(2)对照设计:至少包含底物空白、阴性与阳性对照;ROS/RNS应用建议加入抑制剂/清除剂验证。
5.3 仪器参数与数据可比性
(1)避免饱和:对高强度衍生物应降低底物浓度、缩短积分时间或降低增益,确保落在仪器线性区间。
(2)统一采集窗口:同一实验内保持采集时间点与积分参数一致,并记录底物加入到采集的时间延迟以降低动力学差异造成的偏差。
六、阿拉丁相关产品
6.1 腔肠素(Coelenterazine, CTZ)相关产品一览
货号 | 名称 | CAS号 | 级别和纯度 |
腔肠素 | 55779-48-1 | ≥94% | |
腔肠素 | 55779-48-1 | 10mM in DMSO | |
腔肠素 hcp | 123437-32-1 | BioReagent, 超纯级, ≥95%, solid | |
腔肠素400 a | 70217-82-2 | ≥95% | |
Coelenterazine | 55779-48-1 | 分子生物学级, ≥95%(TLC) | |
Coelenterazine e | 114496-02-5 | 0 | |
Coelenterazine fcp | 123437-33-2 | solid | |
Coelenterazine 400a | 70217-82-2 | 分子生物学级, ≥95%(TLC) | |
Coelenterazine h hydrochloride | — | ≥98% | |
腔肠素h | 50909-86-9 | BioReagent, ≥98%(HPLC) |
6.2 腔肠素(CTZ)发光体系的关键决定因素与特异性验证对照试剂
类别 | 名称 | CAS号 | 适用实验 | 与腔肠素信号的关系 | 使用要点 |
Aequorin-Ca²⁺触发 | 氯化钙 | Aequorin-Ca²⁺校准曲线;动态范围标定 | Ca²⁺直接触发Aequorin-CTZ复合物发光,决定峰值与动力学 | 现配;避免与磷酸盐沉淀;固定离子强度 | |
Aequorin-Ca²⁺触发 | 乙二醇四乙酸(EGTA) | 低Ca背景;自由Ca²⁺缓冲体系 | 螯合Ca²⁺降低CTZ发光触发概率,用于压低背景与构建缓冲窗 | 与CaCl2成对配比计算自由Ca²⁺;固定pH | |
Aequorin装载/通透 | 洋地黄皂苷(Digitonin) | 细胞半透化装载Aequorin/控制胞内离子 | 通过可控通透影响Aequorin-CTZ装载与胞内离子环境,从而改变CTZ发光幅度 | 窗口窄;需先小试确定阈值 | |
Aequorin装载/通透 | 皂苷(Saponin) | 半透化对照(替代digitonin) | 同样通过通透影响Aequorin-CTZ装载效率与Ca²⁺可达性 | 细胞类型差异大;注意批次效应 | |
Ca²⁺动力学正对照 | 离子霉素(Ionomycin) | 诱导强Ca²⁺上升;验证CTZ发光可达上限 | 通过快速提高胞内Ca²⁺触发Aequorin-CTZ强发光,用作阳性对照 | 控制剂量避免不可逆损伤;固定加样到采集延迟 | |
Ca²⁺库释放对照 | 毒胡萝卜素(Thapsigargin) | ER Ca²⁺库释放模型 | 改变胞内Ca²⁺时间程,从而改变CTZ发光峰形与衰减 | 应激强;需做时间窗与活性对照 | |
底物自氧化放大 | 硫酸铜 | 金属催化背景敏感性测试 | Cu²⁺可催化CTZ氧化,放大“非特异背景发光”用于压力测试 | 低浓度即可显著影响;必须设空白孔 | |
底物自氧化放大 | 硫酸亚铁 | Fenton相关背景敏感性测试 | Fe²⁺可促进氧化链反应,导致CTZ背景上升与漂移 | Fe²⁺易氧化;现配并控氧 | |
ROS触发/验证 | 过氧化氢 | ROS相关CTZ化学发光验证 | 提供氧化压力,测试CTZ在ROS背景下的化学发光/背景上升 | 现配;分解会导致剂量漂移 | |
ROS来源验证 | 甲萘醌(Menadione) | 细胞内超氧阴离子生成模型 | 通过红氧循环提高O2•−,观察CTZ信号是否随O2•−增强而升高 | 细胞毒性强;需并行活性/毒性 | |
O2•−发生体系 | 黄嘌呤(Xanthine) | 体外XO体系生成O2•− | 生成O2•−用于检验CTZ信号是否对超氧敏感 | 需配套XO并控制反应时间窗 | |
O2•−发生体系 | 黄嘌呤氧化酶(Xanthine oxidase) | 体外O2•−发生 | 与黄嘌呤配套形成可重复O2•−源,用于CTZ信号来源验证 | 记录单位活性;避免批次差异 | |
O2•−特异性对照 | 超氧化物歧化酶 | (XO体系或细胞)O2•−清除对照 | 清除O2•−,若CTZ信号随之下降则支持“超氧驱动”的贡献 | 与发生体系成对设计(±SOD) | |
H2O2特异性对照 | 过氧化氢酶 | H2O2清除对照 | 分解H2O2,验证CTZ信号中H2O2贡献 | 与H2O2成对设计(±Catalase) | |
RNS/NO来源对照 | 硝普钠 | NO供体对照;RNS敏感性验证 | 提供NO相关刺激,检验CTZ信号是否受RNS影响 | 光敏;固定加样到采集延迟 | |
底物/器壁损失控制 | 牛血清白蛋白 | 体外反应/读板孔吸附控制 | 降低CTZ疏水底物对器壁吸附导致的有效浓度波动与批间漂移 | 不同级别差异大;设空白 | |
光路/串扰排查 | 荧光素 | BRET通道串扰与滤光片泄漏排查(辅助) | 不参与CTZ发光反应,但用于验证检测通道是否存在“假信号泄漏” | 仅做光学验证,与CTZ反应分开测 |
腔肠素体系以无需外源激发、背景较低与灵敏度高为突出优势,但其数据质量对底物稳定性管理与方法学规范化高度敏感。天然腔肠素适合作为通用稳健方案用于建立基线流程;当实验对光谱串扰、瞬态动力学、胞内装载或定量鲁棒性提出更高要求时,应围绕光谱、强度、动力学、稳定性与通透性等指标选择相应衍生物,并通过小规模预实验确定底物浓度、加入顺序与采集参数。通过对底物处理、对照体系与仪器设置的系统优化,腔肠素可在Ca2+检测、报告基因分析、BRET研究及氧化应激评估等应用中获得具有可重复性与可解释性的实验结果。
危险品化学品经营许可证(带存储)