优化体外哺乳动物细胞的电转染
优化体外哺乳动物细胞的电转染
电转染可用于基因功能、启动子活性和基因调控的研究,它还可用于建立转基因或基因敲除胚胎干细胞,以及传递编码R N A 的肿瘤抗原到树突状细胞中,用于肿瘤疫苗的研究。电转染也可将治疗基因传递到免疫细胞中用于肿瘤治疗,或将治疗基因传递到干细胞中用于不同类型疾病的治疗作者:T.弗里德曼等,译者:殷勤伟等,本实验来自「基因转移」
操作方法
电转染哺乳动物细胞 步骤 电转染哺乳动物细胞 材料 试剂 方法 准备待电穿孔的细胞 1 . 在电穿孔前 24〜72 h ,将细胞分离并在合适的含血清的完全培养基中培养。 2•当培养的细胞达到对数生长中期或者末期时(或 者 60%〜90% 覆盖率),收集细胞。 对于黏附细胞,用 IX 胰蛋白酶-EDTA 溶液(预热到 37C ) 消化,然后室温下用 P B S 或者其他清洗缓冲液洗一次。 3.20°C , 250 g 离 心 5m i n 收集细胞。用电穿孔缓冲液重悬细胞至细胞密度为每 i 〇〇ul 5X 105〜5X 106 个细胞。 4 . 将 2〜IOug DNA 和 IOOmI 细胞悬液混合,转移到电穿孔管中。 虽然有些时候推荐在电穿孔前解育细胞和 D NA 的混合物,但并没有必要。这步操作应该在室温下进行。 电穿孔 5•轻敲装有 DNA 和细胞的电穿孔管(细胞在管中放置了一段时间后会沉淀),然后置人电穿孔槽中。 6 . 选择合适的电穿孔仪参数并开始电穿孔。 7•电穿孔后立刻向管中加入 500〜900ul完全培养基,并将电穿孔过的细胞转移到合适的培养器皿中(如 6 孔板)。加入培养基维持细胞继续生长。 8 . 在合适的生长条件下培养细胞过夜。如果发现明显的细胞死亡,更换完全培养基。 基因表达分析 9 . 如果实验的目的是稳定转染,直接跳到步骤 1 〇。对于瞬时表达,在转染 24〜72 h 后收集细胞,选用恰当的方式检测基因表达,如使用流式细胞术、 RNA 杂交、免疫或酶检测。如果转染的基因带有一段荧光标签,可以用荧光显微镜观察。 1 0 . 获得稳定转染的细胞:在完全培养基中生长 48〜72 h 后 ,将细胞转移到合适的培养基。在合适的条件下继续培养细胞。 操作和参数举例 1•细胞和密度: IOOul 细胞培养基中含 IO6 个 S V E C (A T C C ) 细胞。 2•转运材料: 2f x g p E G F P - N l 质粒 D N A (Clontech)。 4•准备: a•用胰蛋白酶-E D T A 消化细胞并用无血清的 D M E M 培养基清洗细胞一次。 b. 室温, 250 g 离 心 5 min 收集细胞。 c. 用 IOOmI D M E M 培养基重悬细胞并与 V g 质粒 D N A 混合。 d. 将混合物转移到一个内径为 4m m 的电穿孔管中。 e•将管置人 BTX ECM830 型电穿孔仪的电穿孔槽中,施 加 150V/c m 的短暂电压50ms 如需了解更多产品详情,请前往阿拉丁官网查询。

这步操作要保证细胞健康并有高增殖能力,这将增强细胞对电穿孔的耐受力并提高电转染的效率。
对于稳定转染,只需从管中转移一部分电转染的细胞(1/10〜1/20 体积)到培养器皿中。
3 . 电穿孔缓冲液: D M E M 细胞培养基。
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