磷酸葡萄糖异构酶(PGI)酶活测定操作规程
磷酸葡萄糖异构酶(PGI)酶活测定操作规程
1 概述
1.1 目的与适用范围
本规程用于测定细胞或微生物提取液中磷酸葡萄糖异构酶(phosphoglucose isomerase,PGI)活性,适用于发酵液菌体、细胞裂解上清及其他可溶性蛋白样品的酶活检测。
1.2 方法原理
PGI催化6-磷酸果糖(F6P)与6-磷酸葡萄糖(G6P)之间的可逆异构化反应。在偶联体系中,PGI先将F6P转化为G6P;随后在葡萄糖-6-磷酸脱氢酶(G6PDH)作用下,G6P与NADP⁺反应生成NADPH。NADPH在340nm处具有特征吸收峰,因此可通过340nm吸光度随时间的增加速率计算PGI酶活。
2 材料与试剂
2.1 样本
(1)发酵液离心得到的菌体沉淀。
(2)细胞裂解上清。
(3)其他可溶性酶提取液。
2.2 主要试剂
(1)100mM磷酸缓冲液(pH 7.0)。
(2)100mM Tris-HCl缓冲液(pH 7.8)。
(3)NADP⁺。
(4)MgCl₂。
(5)6-磷酸果糖(F6P)。
(6)葡萄糖-6-磷酸脱氢酶(G6PDH)。
(7)石英砂,可选,用于机械辅助破壁。
(8)去离子水或超纯水。
2.3 仪器
(1)离心机。
(2)超声波破碎仪。
(3)紫外-可见分光光度计或具有340nm动力学检测功能的酶标仪。
(4)恒温水浴或恒温模块。
(5)1cm光程石英比色皿。
3 样本制备
3.1 细胞收集
(1)取25mL发酵液或细胞悬液。
(2)于适当转速离心,弃上清,收集细胞沉淀。
3.2 细胞洗涤
(1)加入100mM、pH 7.0的磷酸缓冲液重悬沉淀。
(2)离心后弃上清。
(3)重复洗涤2次。
(4)最后将细胞沉淀重悬于5mL磷酸缓冲液中。
3.3 细胞破壁
(1)将细胞悬液置于冰浴条件下。
(2)采用超声波破碎10min,参考条件为40kHz、10s工作、5s间歇。
(3)若样品较难破碎,可加入适量石英砂辅助破壁。
(4)破碎结束后离心,收集上清,作为粗酶液备用。
4 酶活测定
4.1 反应体系配制
1mL总反应体系如下:
(1)100mM Tris-HCl(pH 7.8)。
(2)10mM MgCl₂。
(3)0.5mM NADP⁺。
(4)2mM F6P。
(5)1U G6PDH。
(6)适量去离子水补足体积。
(7)最后加入100μL样品启动反应。
4.2 空白对照
建议至少设置以下对照:
(1)样品空白:以缓冲液代替F6P,用于校正样品本底吸收变化。
(2)试剂空白:以缓冲液代替样品,用于排除试剂体系自发反应。
(3)必要时可设置失活样品对照。
4.3 反应条件
(1)检测温度可固定为25℃;若采用37℃检测,应全文保持一致并统一计算条件。
(2)将除样品外的反应液预平衡3~5min。
(3)加入样品后迅速混匀并立即开始检测。
5 吸光度检测
5.1 检测条件
(1)检测波长:340nm。
(2)光程:1cm。
(3)记录时间:建议连续监测3~5min。
(4)采样间隔:每30s记录1次吸光度,或采用仪器连续动力学采集模式。
5.2 结果读取
(1)选取反应初始线性阶段数据。
(2)计算ΔA340/min。
(3)扣除空白后用于酶活计算。
6 酶活计算
6.1 计算参数
NADPH在340 nm处的摩尔吸光系数可按以下形式用于计算:
ε340 = 6.22 mM⁻¹·cm⁻¹
6.2 计算公式
酶活(U/mL) = (ΔA340/min × Vt)/(6.22 × l × Vs)
其中:
Vt为反应总体积(mL)
ε:NADPH在340nm处的摩尔吸光系数
l为光程长度(cm)
Vs为加入样品体积(mL)
6.3 酶活定义
一个酶活单位(U)定义为在规定条件下,每分钟催化生成1 μmol NADPH所对应的酶量。
7 结果判读要点
7.1 线性区判断
(1)吸光度应在反应初始阶段呈线性上升。
(2)若曲线前段波动明显,应检查混匀、温控及样品澄清度。
(3)若整体上升过快并超出线性范围,应适当稀释样品后重测。
7.2 空白控制
(1)空白对照不应出现明显持续升高。
(2)若空白吸光度明显增加,提示试剂污染、底物降解或体系中存在其他干扰酶。
8 关键控制点
8.1 样品处理
(1)细胞破碎过程应尽量在低温条件下进行。
(2)粗酶液制备后应尽快检测,避免反复冻融。
(3)样品若含大量颗粒,应充分离心,避免影响340nm读数。
8.2 反应体系
(1)NADP⁺与G6PDH应配套使用。
(2)F6P浓度不宜过低,以免限制反应速率。
(3)MgCl₂有助于偶联酶体系稳定,建议保留。
8.3 检测条件一致性
(1)温度、光程、总体积和样品加入体积应保持一致。
(2)若改用酶标仪,应注意有效光程修正。
9 常见问题与原因分析
9.1 吸光度不上升
(1)样品中PGI活性过低。
(2)G6PDH失活。
(3)NADP⁺或F6P漏加。
(4)样品破壁不充分。
9.2 空白值偏高
(1)试剂体系污染。
(2)样品中存在其他可引起NADPH生成的酶。
(3)底物或辅酶配制不新鲜。
9.3 重复性差
(1)超声破碎条件不稳定。
(2)样品混匀不足。
(3)加样时间差过大。
(4)温度控制不一致。
10 安全与操作规范
10.1 个人防护
(1)实验过程中应穿实验服并佩戴一次性手套。
(2)超声破碎时应注意防护并避免样品过热。
10.2 废液处理
(1)含酶、辅酶及底物的反应废液应分类收集。
(2)样品废液及污染耗材应按实验室生物化学废弃物规范处理。
11 相关试剂与材料选型
表1 PGI酶活测定相关试剂与材料选型
货号 | 名称 | 级别和规格 | 对应步骤 | 用途 |
Tris-HCl | 注射级 | 反应缓冲液配制 | 用于配制100 mM Tris-HCl反应缓冲液(pH 7.8) | |
β-烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADP)水合物 | Moligand™, ≥95% | 辅酶 | 用于偶联反应体系中的氧化型辅酶Ⅱ | |
β-烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸钠盐(NADP) | ≥97% | 辅酶 | 可作为NADP⁺高纯度备选 | |
β-烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸钠盐(NADP) | ≥93% | 辅酶 | 可作为常规NADP⁺备选 | |
氧化型辅酶II二钠(β-NADP-Na₂) | ≥97% | 辅酶 | 与方法中的NADP⁺直接对应 | |
氧化型辅酶II二钠(β-NADP-Na2) | 10mM in Water | 辅酶 | 适合直接配制或条件摸索时使用 | |
氯化镁溶液 | UltraBio™, 分子生物学级, 超纯级, ~1 M in H2O | 反应体系配制 | 适合直接加入反应体系配制MgCl₂终浓度 | |
氯化镁溶液 | 分子生物学级, 1.00 M±0.01 M | 反应体系配制 | 可作为MgCl₂工作液备选 | |
氯化镁,六水 | 分子生物学级, ≥99%(T) | 反应体系配制 | 适合自行配制MgCl₂储备液 | |
氯化镁六水合物 | BioReagent, 用于细胞培养, 用于昆虫细胞培养 | 反应体系配制 | 可作为常规MgCl₂原料备选 | |
D-果糖-6-磷酸二钠,水合物 | ≥95% | 底物 | 与方法中的6-磷酸果糖(F6P)直接对应 | |
D-果糖-6-磷酸二钾盐 | ≥97% | 底物 | 可作为F6P高纯度备选 | |
葡萄糖-6-磷酸脱氢酶(G6PD) | ActiBioPure™, 生物活性, 高性能, EnzymoPure™, ≥95%(SDS-PAGE), ≥600 U/mg protein | 偶联酶 | 与PGI偶联检测体系直接对应 | |
葡萄糖-6-磷酸脱氢酶来源于肠系膜明串珠菌 | EnzymoPure™, ≥200 NADP units/mg protein | 偶联酶 | 适用于NADP体系偶联检测 | |
葡萄糖-6-磷酸脱氢酶来源于肠系膜明串珠菌(悬浮液) | EnzymoPure™, ≥200 NADP units/mg protein | 偶联酶 | 适合液体酶体系使用 | |
石英砂 | 8-16目或1-2mm | 细胞破壁 | 可用于机械辅助破壁 | |
普通石英砂 | SiO₂ ≥90%,0.105mm-0.71mm | 细胞破壁 | 可作为石英砂备选 | |
水 | 超纯级 | 配液 | 适用于缓冲液和反应液配制 | |
去离子水 | 去离子的 | 配液 | 可用于常规配液和清洗步骤 |
危险品化学品经营许可证(带存储)