量子点探针:结构特征、成像优势及其在肿瘤血管生成中的应用
量子点探针:结构特征、成像优势及其在肿瘤血管生成中的应用
量子点是具有量子限域效应的半导体纳米晶,可通过调节组成、粒径和表面结构获得不同波长的荧光。其发射光谱窄、抗光漂白能力较强,并易于连接抗体、肽或核酸配体,适用于肿瘤血管形态成像、血流示踪、血管生成靶点检测和多重分子标记。
关键词:量子点;荧光探针;核壳结构;NIR-II;肿瘤血管生成;VEGFR2;整合素αvβ3
1 量子点是什么
1.1 基本定义
量子点(quantum dots,QDs)通常是直径约2~10 nm的半导体纳米晶。其尺寸接近或小于材料的激子玻尔半径时,电子和空穴的运动受到三维限制,连续能带转变为尺寸依赖的离散能级,这一现象称为量子限域效应。
1.2 量子点如何产生荧光
量子点吸收能量高于带隙的光子后,价带电子跃迁至导带,并在价带留下空穴。电子与空穴形成激子,随后通过辐射复合释放光子;部分激发能也可能通过表面缺陷、晶格振动或非辐射复合损失。
激发过程可表示为:
光子吸收 → 电子—空穴对形成 → 激子弛豫 → 辐射复合 → 荧光发射
1.3 粒径为什么能够调节发射波长
同一种半导体材料中,粒径减小会增强量子限域效应并扩大有效带隙,发射光向短波方向移动;粒径增大时有效带隙减小,发射光向长波方向移动。量子点的发射波长还受到元素组成、掺杂、晶体缺陷和壳层结构影响,不能仅根据粒径进行判断。
1.4 主要材料类型
材料类型 | 代表材料 | 主要特征 | 应用边界 |
Ⅱ-Ⅵ族量子点 | CdS、CdSe、CdSe/ZnS | 发光效率较高,发射波长易调节 | 含镉材料需重点评价离子泄漏和长期毒性 |
Ⅰ-Ⅲ-Ⅵ族量子点 | CuInS₂、CuInS₂/ZnS | 发射范围较宽,可减少镉元素使用 | 发射峰通常较宽,批次一致性需要控制 |
银硫族量子点 | Ag₂S、Ag₂Se、AgAuSe | 可覆盖近红外及NIR-II波段 | 需评价银离子释放、表面稳定性和体内清除 |
铅硫族量子点 | PbS | 发射范围可延伸至NIR-II | 含铅材料更适合光学和材料研究,生物应用需严格评估 |
碳基量子点 | 碳量子点、石墨烯量子点 | 水分散性和表面可修饰性较好 | 发光机制与传统半导体量子点并不完全相同 |
2 量子点探针的结构组成
结构层级 | 主要组成 | 结构功能 | 设计重点 |
发光核心 | CdSe、CdS、CuInS₂、Ag₂S、Ag₂Se或PbS | 决定基础带隙和发射波段 | 控制元素组成、粒径和晶体缺陷 |
无机壳层 | ZnS等宽带隙材料 | 钝化表面缺陷,隔离发光核心 | 控制壳层厚度、晶格匹配和完整性 |
表面配体 | 硫醇、膦、胺或羧酸类配体 | 稳定纳米晶并提供反应位点 | 防止配体脱落、聚集和荧光猝灭 |
亲水保护层 | PEG、两亲性聚合物或蛋白质 | 提高水分散性,降低非特异性吸附 | 控制水合粒径、表面电荷和蛋白冠形成 |
靶向模块 | 抗体、肽、适配体或小分子配体 | 识别血管内皮靶点 | 控制偶联方向、配体密度和结合活性 |
功能模块 | 药物、光敏剂、磁性组分或放射性基团 | 扩展治疗或多模态成像功能 | 避免增加粒径或干扰量子点发光 |
2.1 发光核心
发光核心决定量子点的基础光谱范围。可见光成像常采用CdS、CdSe或CuInS₂体系,NIR-II成像则可选择Ag₂S、Ag₂Se、AgAuSe和PbS等窄带隙材料。
2.2 无机壳层
量子点核心表面存在未配位原子和缺陷能级,可捕获电子或空穴并增强非辐射复合。包覆ZnS等宽带隙壳层能够减少表面缺陷,提高量子产率、光稳定性及核心材料的化学稳定性。
2.3 亲水层与表面官能团
油相合成量子点通常由疏水配体稳定,不能直接用于细胞或动物实验。配体交换、两亲性聚合物包覆和PEG化可将其转移至水相,并在表面引入—COOH、—NH₂、—SH、叠氮基或炔基等反应位点。
2.4 靶向识别模块
量子点表面连接抗VEGFR2抗体、RGD肽或其他血管靶向配体后,可由血池型示踪材料转化为分子探针。配体数量过少会降低结合能力,密度过高则可能增加水合粒径、遮蔽识别位点或加重网状内皮系统摄取。
3 量子点探针的成像优势
3.1 光谱特性与多重成像
(1)宽吸收与窄发射
量子点可吸收高于带隙能量的较宽范围光子,而荧光主要来自带边电子—空穴辐射复合,因此通常表现为较宽的激发范围和相对集中的发射峰。不同发射波长的量子点可在相同或相近激发条件下同时产生荧光,再依据各自发射峰进行光谱分离。
(2)尺寸与组成调控发射波长
量子点的发射波长受核心材料、粒径、合金组成及核壳结构共同控制。同一材料体系中,粒径减小通常增强量子限域并使发射蓝移,而改变半导体组成可进一步拓展可调波段。通过组合不同发射波长的量子点,可在同一组织区域同步标记血管内皮、肿瘤细胞及其他微环境组分。
(3)多色成像的实际优势
量子点用于多重成像的优势并不只是“颜色多”,而在于多个探针能够共享激发光源,同时保持相对分离的发射通道,从而减少多种荧光探针之间的激发配置冲突。其实际分辨能力仍受发射峰半峰宽、颗粒尺寸分布、探测器响应范围及光谱串扰影响。
3.2 荧光亮度与光稳定性
(1)核心—壳层结构提高辐射复合效率
裸量子点表面的未配位原子可形成陷阱能级,使电子或空穴通过非辐射途径损失。采用ZnS等宽带隙材料包覆核心,可钝化表面缺陷并限制载流子向表面迁移,提高辐射复合比例。量子点的实际亮度取决于吸收截面、量子产率、晶体质量和壳层完整性,而不是单纯由材料类型决定。
(2)抗光漂白能力适合动态观察
无机晶体及核壳结构使优化后的量子点通常具有较好的光稳定性,在连续激发条件下不易像部分有机荧光团一样快速发生不可逆光漂白。这一特征适合长时间记录血管灌注、血流变化、内皮细胞迁移以及靶向探针在血管壁上的富集过程。
(3)稳定性并不等于信号恒定
量子点仍可能发生光氧化、荧光闪烁、聚集及表面配体脱落,生物偶联也可能改变其表面电子状态并引起猝灭。动态成像时应关注荧光强度随时间的变化,并对功能化前后的发射峰、量子产率和光稳定性进行比较。
3.3 近红外成像与深部血管观察
(1)NIR-II降低组织散射背景
Ag₂S、Ag₂Se、AgAuSe及PbS等窄带隙量子点可将发射延伸至约1000~1700 nm的NIR-II区域。在这一波段,组织自发荧光较低,光散射通常弱于可见光和较短波近红外区域,有利于保持深部组织中的血管边界。
(2)对肿瘤血管成像的意义
NIR-II的价值不应简单概括为“穿透更深”。对于血管成像,更重要的是减少组织散射引起的轮廓扩散,提高相邻血管、细小分支和血流边界的区分能力,可用于肿瘤血管网络、微循环及动态灌注观察。
(3)发射波段不是唯一决定因素
实际成像质量还受到量子产率、激发波长、组织吸收、探测器量子效率和滤光系统影响。同样属于NIR-II量子点,不同材料和不同发射波长的成像性能可能存在明显差异。
3.4 表面功能化与靶向成像
(1)表面官能团提供偶联基础
量子点经亲水化后可在表面引入羧基、氨基、巯基、叠氮基或其他反应位点,再连接抗体、肽、适配体等识别分子,使其由单纯的荧光示踪材料转化为靶向分子探针。
(2)多价效应增强颗粒整体结合
一个量子点颗粒表面可连接多个靶向配体。当多个配体同时与细胞膜受体发生作用时,可产生多价结合效应,提高颗粒与靶细胞表面的整体结合强度和局部滞留,这也是量子点用于VEGFR2、整合素等血管靶点成像的重要结构基础。
(3)靶向信号受到颗粒行为共同影响
量子点表面修饰同时会改变水合粒径、表面电荷、蛋白冠形成和血液循环行为。体内靶向信号不仅取决于受体表达和配体亲和力,还受到血流灌注、血管通透性、非特异性摄取及肝脾清除等因素影响,因此不能把局部荧光强度直接等同于靶点表达量。
4 量子点靶向探针的构建
4.1 材料与波长选择
细胞共聚焦和组织切片可选择可见光量子点;小动物浅表血管成像可采用650~950 nm探针;深部组织、全身血流和肿瘤血管动态观察更适合NIR-II量子点。多色实验应保证各量子点发射峰能够被滤光片和探测器有效区分。
4.2 水相转移与PEG化
油相量子点需经过配体交换或两亲性聚合物包覆获得水分散性。PEG层可降低蛋白质非特异性吸附并延长循环时间,但PEG链过长或覆盖密度过高可能降低靶向配体与受体的接近效率。
4.3 配体偶联
羧基量子点可通过EDC/NHS或EDC/Sulfo-NHS活化后与抗体、肽或蛋白质的伯胺形成酰胺键;氨基量子点可与NHS酯化配体反应;马来酰亚胺可连接巯基化配体;DBCO与叠氮基之间的无铜点击反应适用于对金属催化剂敏感的生物偶联体系。
4.4 纯化与质量控制
偶联后应通过超滤、尺寸排阻色谱或离心去除游离配体,并检测水合粒径、分散系数、Zeta电位、荧光光谱和配体结合量。含镉或含铅量子点还需评价壳层完整性、金属离子释放和细胞毒性。
5 肿瘤血管生成的生物学基础
5.1 肿瘤血管形成过程
肿瘤组织持续生长可形成低氧区域,诱导HIF-1α稳定并促进VEGF-A等促血管生成因子表达。VEGF-A与内皮细胞表面的VEGFR2结合后,激活内皮细胞增殖、迁移和血管芽生;基底膜降解、尖端细胞选择、柄细胞扩增及管腔形成共同建立新的血管网络。
5.2 肿瘤血管的结构特征
肿瘤血管常表现为走行迂曲、分支异常、管径不均、内皮连接疏松和周细胞覆盖不足。血流速度、灌注均一性及通透性可随肿瘤区域和生长阶段变化,单一时间点的荧光强度不能完整反映血管功能。
5.3 主要成像靶点
靶点或标志物 | 生物学定位 | 适用探针 | 主要判读内容 |
VEGFR2 | 促血管生成信号的主要受体之一,在活化内皮细胞中表达较高 | 抗VEGFR2抗体量子点、VEGF配体量子点 | 血管内皮活化和VEGF信号相关变化 |
整合素αvβ3 | 参与内皮细胞黏附、迁移和细胞外基质识别 | RGD肽修饰量子点 | 新生血管及迁移性内皮细胞定位 |
CD105 | TGF-β受体复合体辅助组分,在增殖性内皮中可升高 | 抗CD105抗体量子点 | 增殖性肿瘤血管检测 |
CD31 | 内皮细胞连接相关分子 | 抗CD31抗体量子点或组织共染 | 血管身份、分布和微血管密度 |
MMP-2/MMP-9 | 参与基底膜和细胞外基质重塑 | 酶响应型量子点探针 | 血管侵袭区域及蛋白酶活性 |
HIF-1α/低氧区域 | 位于血管生成反应上游 | 低氧响应探针与量子点组合 | 低氧区域与血管分布的空间关系 |
6 量子点在肿瘤血管生成研究中的应用
6.1 血管形态与血流成像
PEG化近红外量子点进入循环后可作为血池型荧光示踪剂,用于观察肿瘤血管边界、分支、管径和灌注过程。Ag₂S量子点已被用于NIR-II窗口下的实时血流及微小肿瘤相关血管生成成像。
6.2 VEGFR2靶向成像
抗VEGFR2抗体与量子点偶联后,可识别表达VEGFR2的内皮细胞。细胞实验可检测探针与内皮细胞的结合,动物实验可观察肿瘤血管区域的荧光富集,但需通过游离抗体竞争和非靶向量子点排除被动蓄积。
6.3 整合素αvβ3靶向成像
RGD序列可识别整合素αvβ3,用于标记血管生成活跃区域。RGD修饰量子点还可与磁性组分结合,构建荧光—磁共振多模态探针,同时提供细胞尺度定位和整体解剖信息。
6.4 多重血管微环境成像
不同发射波长的量子点可在同一激发光下分别标记血管内皮、周细胞、低氧区域及肿瘤细胞。光谱拆分后可分析血管密度、周细胞覆盖和低氧分布之间的空间关系,减少连续切片造成的定位偏差。
6.5 抗血管生成治疗评价
治疗前后可比较靶向量子点信号、血管分支、灌注和通透性变化。靶向信号下降可能来自靶点表达降低、血管数量减少、血流灌注不足或探针递送受限,需结合免疫染色和功能指标解释。
7 量子点探针的实验评价与结果判读
评价环节 | 关键指标 | 必要对照 | 结果判读 |
光学性能 | 发射峰、半峰宽、量子产率、荧光寿命、抗光漂白能力 | 功能化前量子点 | 判断包壳、亲水化和偶联是否影响发光 |
胶体稳定性 | 水合粒径、分散系数、Zeta电位、荧光保持率 | PBS、培养基及含血清体系 | 判断是否发生聚集、沉降或荧光衰减 |
细胞靶向性 | 摄取量、膜定位、胞内分布及标志物共定位 | 非靶向探针、配体竞争组、受体阻断或敲低组 | 区分特异性结合与非特异性吸附 |
体内成像性能 | 信背比、靶本比、成像窗口及组织穿透能力 | 非靶向探针和等剂量对照 | 评价血管识别能力和最佳成像时间 |
组织分布 | 肿瘤、肝、脾、肾和肺中的荧光或元素含量 | 给药前对照和非靶向探针 | 判断肿瘤蓄积、器官摄取及体内清除 |
血管生成表型 | 微血管密度、分支数、管径、灌注和通透性 | 未处理组和抗血管生成干预组 | 区分血管数量、结构和功能变化 |
血管标志物 | CD31、CD105、VEGFR2和整合素αvβ3 | 同型对照、阻断或基因干预 | 验证量子点信号与靶点表达的对应关系 |
8 产品
8.1 可见光及近红外核壳量子点
货号 | 名称 | 级别和纯度/规格 | 功能特征与研究定位 |
CdS/ZnS核壳型量子点 | PEG功能化,荧光λₑₘ450nm,在H₂O中为4μM | 蓝光发射,可用于多色成像中的短波通道 | |
CdSe/ZnS 核壳型量子点 | PEG功能化,荧光λₑₘ520nm,在H₂O中为4μM | 绿光发射,适用于细胞和组织荧光标记 | |
CdSe/ZnS 核壳型量子点 | PEG功能化,荧光λₑₘ580nm,在H₂O中为4μM | 橙光发射,可与绿色和红色量子点组合 | |
CdSe/ZnS 核壳型量子点 | PEG功能化,荧光λₑₘ620nm,在H₂O中为4μM | 红光发射,有利于降低短波背景干扰 | |
CdSeS/ZnS合金量子点 | COOH功能化,荧光λₑₘ630nm,直径6nm,在H₂O中为1mg/mL | 羧基表面,可通过EDC/NHS偶联含伯胺配体 | |
CdSeS/ZnS合金量子点 | COOH功能化,荧光λₑₘ665nm,直径6nm,在H₂O中为1mg/mL | 红光发射,适用于抗体或肽偶联探针构建 | |
Qdot 565 氨基 (PEG) 量子点[Qdot 565 Amino (PEG) Quantum Dots] | Ex:300nm, Em:565nm, Concentration: 3 mg/ML | 氨基和PEG功能化,可连接羧基化配体 | |
Qdot 605 氨基 (PEG) 量子点[Qdot 605 Amino (PEG) Quantum Dots] | Em:603nm, Ex:300nm, Concentration: 3 mg/ML | 红橙光探针底物,适用于多重免疫标记 | |
Qdot 705 氨基 (PEG) 量子点[Qdot 705 Amino (PEG) Quantum Dots] | Ex:450nm, Em:702nm, Concentration: 3 mg/ML | 近红外边缘发射,可用于组织成像和深层信号检测 | |
二硫化铜铟/硫化锌量子点 | Peak Emission 550nm ± 10nm, QY > 75% | 可见光发射的低镉替代材料体系 | |
二硫化铜铟/硫化锌量子点 | Peak Emission 590nm ± 10nm, QY > 75% | 橙光发射,可用于多色细胞标记 | |
二硫化铜铟/硫化锌量子点 | Peak Emission 630nm ± 10nm, QY > 75% | 红光发射,可用于组织切片和血管标记 | |
二硫化铜铟/硫化锌量子点 | Peak Emission 800nm ± 10nm, QY > 75% | NIR-I发射,适用于小动物浅表血管成像 | |
二硫化铜铟/硫化锌量子点 | Peak Emission 950nm ± 10nm, QY > 75% | 接近NIR-II边界,可用于近红外成像系统评价 |
8.2 表面功能化量子点
货号 | 名称 | 级别和纯度/规格 | 功能特征与研究定位 |
氨基荧光量子点 | 荧光发射波长:525 nm,0.05 μmol/L | 氨基表面,可与羧基化抗体、肽或连接体偶联 | |
氨基荧光量子点 | 荧光发射波长:565 nm,0.05 μmol/L | 黄绿光发射,适用于双重或多重标记 | |
氨基荧光量子点 | 荧光发射波长:585 nm,0.05 μmol/L | 橙光发射,可用于细胞膜和蛋白标记 | |
氨基荧光量子点 | 荧光发射波长:605 nm,0.05 μmol/L | 红橙光发射,可用于抗体偶联探针开发 | |
羧基荧光量子点 | 荧光发射波长:525 nm,0.05 μmol/L | 可经EDC/NHS活化后连接含伯胺配体 | |
羧基荧光量子点 | 荧光发射波长:565 nm,0.05 μmol/L | 适用于肽、抗体和蛋白质偶联 | |
羧基荧光量子点 | 荧光发射波长:585 nm,0.05 μmol/L | 可用于构建橙光靶向量子点探针 | |
羧基荧光量子点 | 荧光发射波长:605 nm,0.05 μmol/L | 适用于红光通道的分子靶向成像 | |
水溶性氨基CdSe/ZnS量子点 | fluorescence λem 525 nm,8μmol/L in H2O | 水相氨基量子点,可直接开展后续偶联反应 | |
水溶性氨基CdSe/ZnS量子点 | fluorescence λem 600 nm,8μmol/L in H2O | 红橙光水相探针底物 | |
水溶性氨基CdSe/ZnS量子点 | fluorescence λem 645 nm,8μmol/L in H2O | 长波红光发射,适用于组织标记 | |
水溶性羧基CdSe/ZnS量子点 | fluorescence λem 525 nm,8μmol/L in H2O | 羧基水相量子点,可连接抗体和多肽 | |
水溶性羧基CdSe/ZnS量子点 | fluorescence λem 605 nm,8μmol/L in H2O | 可用于构建红光靶向探针 | |
水溶性羧基CdSe/ZnS量子点 | fluorescence λem 625 nm,8μmol/L in H2O | 适用于组织切片及血管靶点标记 | |
羧基荧光量子点纳米微球 | 粒径300nm, 10mg/ml in H2O | 具有较大粒径和较高表面负载空间,适用于体外检测及材料偶联评价 |
8.3 NIR-II量子点
货号 | 名称 | 级别和纯度/规格 | 功能特征与研究定位 |
Ag2S Oil phase (1200 nm) | — | 油相NIR-II量子点,需经水相转移后用于生物成像 | |
Ag2S-COOH (1200 nm) | — | 羧基化NIR-II量子点,可连接抗体或多肽 | |
Ag2S-PEG-NH2 (1200 nm) | — | PEG和氨基功能化,兼具水分散性与偶联位点 | |
Pb:Ag2Se QDs | — | 掺杂银硒化物量子点,可用于NIR-II材料与光谱研究 | |
AgAuSe Oil phase (1000 nm) | — | 位于NIR-II起始区域,适用于相转移和材料开发 | |
AgAuSe Oil phase (1120 nm) | — | 油相NIR-II量子点,可用于深部成像探针构建 | |
AgAuSe QDs | — | AgAuSe材料体系,可用于近红外发光性能研究 | |
AgAuSe-COOH (1000 nm) | — | 羧基表面,可采用EDC/NHS体系偶联 | |
AgAuSe-COOH (1120 nm) | — | 适用于长波近红外靶向探针构建 | |
AgAuSe-PEG-NH2 (1000 nm) | — | PEG化氨基量子点,可用于水相生物偶联 | |
AgAuSe-PEG-NH2 (1120 nm) | — | 适用于NIR-II靶向成像探针开发 | |
油溶性PbS量子点 | fluorescence λem 1120 nm,stabilized with octadecylamine ligands | NIR-II油相量子点,适用于相转移及光谱研究 | |
油溶性PbS量子点 | fluorescence λem 1250 nm,stabilized with octadecylamine ligands | 可用于1250 nm波段探测器和成像系统评价 | |
油溶性PbS量子点 | fluorescence λem 1330 nm,stabilized with octadecylamine ligands | 位于较长波NIR-II区域,组织散射相对较低 | |
油溶性PbS量子点 | fluorescence λem 1420 nm,stabilized with octadecylamine ligands | 适用于长波NIR-II材料与深部成像研究 | |
油溶性PbS量子点 | fluorescence λem 1520 nm,stabilized with octadecylamine ligands | 可用于NIR-IIb光谱及成像平台评价 |
8.4 量子点探针偶联相关产品
货号 | 名称 | 级别和纯度/规格 | 功能特征与研究定位 |
1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺盐酸盐 | ≥98% | 活化量子点表面的羧基,促进其与伯胺形成酰胺键 | |
N-羟基琥珀酰亚胺(NHS) | ≥98% | 与EDC配合形成NHS活性酯,提高羧基—胺偶联效率 | |
N-羟基磺基琥珀酰亚胺钠盐(Sulfo-NHS) | ≥98% | 水溶性活化辅助试剂,适用于缓冲液中的量子点偶联 | |
Maleimide PEG NHS, MAL-PEG-NHS | MW 2000 Da | NHS端连接伯胺,马来酰亚胺端连接巯基化配体 | |
DBCO-PEG4-NHS酯 | ≥95% | NHS端修饰氨基分子,DBCO端与叠氮基进行无铜点击偶联 | |
D-生物素 N-羟基琥珀酰亚胺酯 | ≥98% | 将生物素连接至含伯胺的抗体、蛋白质或量子点表面 |
量子点探针可通过发射波长调控、核壳钝化、表面亲水化和靶向配体偶联,实现肿瘤血管结构、血流灌注及血管生成分子的成像。实际应用中应同时控制光学稳定性、靶向特异性、组织分布和材料安全性,并结合组织学及血管功能指标完成结果判读。
参考文献
[1] Tripathi SK, Kaur G, Khurana RK, Kapoor S, Singh B. Quantum Dots and Their Potential Role in Cancer Theranostics. Crit Rev Ther Drug Carrier Syst. 2015;32(6):461-502.
[2] Medintz IL, Uyeda HT, Goldman ER, Mattoussi H. Quantum dot bioconjugates for imaging, labelling and sensing. Nat Mater. 2005;4(6):435-446.
[3] Hong G, Robinson JT, Zhang Y, Diao S, Antaris AL, Wang Q, Dai H. In vivo fluorescence imaging with Ag₂S quantum dots in the second near-infrared region. Angew Chem Int Ed Engl. 2012;51(39):9818-9821.
[4] Song C, Zhang Y, Li C, Chen G, Kang X, Wang Q. Enhanced Nanodrug Delivery to Solid Tumors Based on a Tumor Vasculature-Targeted Strategy. Adv Funct Mater. 2016;26(23):4192-4200.
更多相关文章,详见下方:
[3] 荧光探针--吸收与荧光
[4] 酶标探针
危险品化学品经营许可证(带存储)