幽门螺杆菌May-Grünwald-Giemsa(MGG)染色操作规程
幽门螺杆菌May-Grünwald-Giemsa(MGG)染色操作规程
1 概述
1.1 目的与适用范围
本规程用于建立幽门螺杆菌 May-Grünwald-Giemsa(MGG)染色的常规操作流程,适用于胃黏膜石蜡组织切片中幽门螺杆菌的形态学显示,可用于胃黏膜活检样本中幽门螺杆菌的辅助观察与初步判读。
1.2 方法原理
(1)MGG 法属于 Romanowsky 类染色体系,通过 May-Grünwald 工作液与 Giemsa 工作液的顺序染色,使组织成分与细菌结构形成较稳定的综合色差异。
(2)幽门螺杆菌在该体系中多呈蓝色,便于在胃黏液层、胃小凹及上皮表面区域进行定位观察。
(3)细胞核、胃黏膜上皮、胶原纤维及红细胞在染色后呈现不同色调,有助于背景组织与目标菌体的区分。
1.3 染色质量要求
(1)幽门螺杆菌着色清楚,轮廓可辨。
(2)胃黏膜背景组织分色自然,细胞核显示完整。
(3)切片背景较干净,无明显染液沉积和大片脱色。
2 材料与试剂
2.1 样本类型
(1)胃黏膜石蜡组织切片。
(2)胃镜活检组织石蜡切片。
2.2 主要试剂
(1)10% 福尔马林固定液。
(2)May-Grünwald 工作液。
(3)Giemsa 工作液。
(4)蒸馏水。
(5)无水乙醇。
(6)二甲苯或脱蜡透明液。
(7)中性树胶。
2.3 耗材与器材
(1)载玻片与盖玻片。
(2)染色缸或滴染操作平台。
(3)石蜡切片机。
(4)镊子、吸水纸。
(5)显微镜。
3 染液与样本准备
3.1 固定要求
(1)组织固定于 10% 福尔马林。
(2)固定后按常规流程完成脱水、包埋。
(3)同批样本宜保持固定条件一致,以减少染色差异。
3.2 切片要求
(1)石蜡切片厚度为 4 μm。
(2)切片应附着牢固,避免滴染过程中脱片。
(3)切片厚薄应尽量一致,以提高结果可比性。
3.3 染液要求
(1)May-Grünwald 工作液须于临用前配制,不宜久置。
(2)Giemsa 工作液须于临用前配制,不宜保存。
(3)试剂开封后应尽快使用,以免影响后续染色效果。
4 实验流程
4.1 固定、包埋与脱蜡
(1)组织固定于 10% 福尔马林后,常规脱水、包埋。
(2)石蜡切片厚 4 μm。
(3)常规二甲苯或脱蜡透明液脱蜡至水。
(4)再用蒸馏水洗 1 次。
4.2 May-Grünwald 染色
(1)将切片周围多余水分轻轻吸干,但不使组织表面完全失水。
(2)向切片上滴加适量 May-Grünwald 工作液,确保覆盖组织区域。
(3)染色 10 min。
(4)染色结束后倾去染液,不必长时间冲洗。
4.3 Giemsa 染色
(1)于同一切片上滴加 Giemsa 工作液,覆盖全部组织区域。
(2)染色 20 min。
(3)染色结束后倾去染液。
4.4 脱水、透明与封片
(1)用无水乙醇快速洗去余液。
(2)乙醇处理后稍烤干或自然短时干燥。
(3)转入二甲苯或脱蜡透明液中透明。
(4)滴加中性树胶并覆盖盖玻片,完成封固。
5 染色结果
5.1 目标菌体
(1)胃幽门螺杆菌呈蓝色。
5.2 背景组织
(1)胶原纤维呈红色。
(2)红细胞呈绿色。
(3)胃黏膜上皮呈淡蓝色。
(4)细胞核呈深蓝色。
6 结果判读要点
6.1 菌体定位
(1)幽门螺杆菌多位于胃黏液层、胃小凹表面或上皮邻近区域。
(2)观察时应重点关注胃表面黏液层与腺窝开口附近区域。
6.2 菌体形态
(1)染色良好时,菌体可见细小弯曲、短杆状或轻度螺旋状轮廓。
(2)菌量较少时,应在低倍定位后转高倍细查黏液层边缘。
6.3 背景判读
(1)胃黏膜上皮与核染色应较清楚,以便与细菌沉积物区分。
(2)若背景过深或杂色明显,可影响菌体识别,应结合染色均一性综合判断。
7 常见问题与原因分析
7.1 菌体显示不清或着色偏浅
(1)Giemsa 工作液染色时间不足。
(2)染液临用前配制不充分或已放置过久。
(3)组织中菌量较少,需扩大观察范围。
7.2 切片整体脱色
(1)无水乙醇洗涤时间过长。
(2)透明前处理过强,导致目标菌体颜色流失。
(3)MGG 法最后无水乙醇步骤应速洗,不宜延长。
7.3 背景染色过重
(1)May-Grünwald 或 Giemsa 染色时间过长。
(2)切片周围水分未处理好,导致局部染液浓度不均。
(3)染液老化或配制状态不稳定。
7.4 染色不均或局部沉积
(1)切片脱蜡不充分。
(2)切片表面残留水分不均。
(3)染液覆盖不完全或切片表面有污染。
8 应用范围
8.1 胃黏膜活检样本观察
(1)用于胃黏膜组织中幽门螺杆菌的辅助显示。
(2)适用于胃炎、胃黏膜损伤及相关活检标本的病理观察辅助。
8.2 常规组织学筛查
(1)适用于石蜡切片中疑似幽门螺杆菌感染的初步筛查。
(2)可作为 HE 染色后进一步专项观察的补充方法。
9 安全与操作规范
9.1 个人防护
(1)实验过程中应穿实验服并戴一次性手套操作。
(2)处理染液、乙醇和二甲苯时应在通风条件良好的环境下进行。
9.2 操作注意事项
(1)May-Grünwald 工作液和 Giemsa 工作液须于临用前配制,不宜保存。
(2)最后的无水乙醇需快速洗去余液,否则容易脱色。
(3)幽门螺杆菌在部分情况下仅用 Giemsa 工作液也可显示,但 MGG 法通常更利于组织背景与菌体的综合色分辨。
9.3 废液处理
(1)染色废液、乙醇及二甲苯废液应分类收集。
(2)所有污染耗材应按实验室化学品及病理样本处理规范处置。
10 相关试剂与材料选型
表1 幽门螺杆菌May-Grünwald-Giemsa(MGG)染色相关试剂选型
货号 | 名称 | 级别和纯度/规格 | 对应步骤 | 用途 |
幽门螺旋杆菌染色液 (MGG法) | BioReagent, 生物染色剂, 适用于微生物学, 用于显微镜 | 核心染色步骤 | 与本规程主题直接对应,可用于 May-Grünwald 与 Giemsa 体系染色 | |
中性福尔马林缓冲液 | 10% | 固定 | 对应“组织固定于10%福尔马林”步骤 | |
95%乙醇 | PureSpectra™, 光谱纯 | 常规脱水包埋 | 适用于组织学脱水流程中的 95%乙醇处理 | |
乙醇(95%) | AR, ≥95% | 常规脱水包埋 | 可作为 95%乙醇处理步骤的常规选择 | |
酒精试剂 | Moligand™, ≥95%, Used for histology tissue preparation | 常规脱水包埋 | 更贴合组织学制样流程中的 95%酒精处理 | |
乙醇 | Moligand™, 无水级, ≥99.5%, H2O≤0.005% | 无水乙醇速洗 | 直接对应染后“无水乙醇快速洗去余液”步骤 | |
酒精试剂 | Moligand™, 无水级, ≤0.003% water | 无水乙醇速洗 | 可作为无水乙醇替代体系,用于染后快速脱液 | |
去离子水 | 去离子的 | 蒸馏水洗/配液 | 可用于“蒸馏水洗1次”及基础配液步骤 | |
水 | 超纯级 | 蒸馏水洗/配液 | 适合对背景洁净度要求更高的染色体系 | |
二甲苯 | 优级试剂, ≥99%, xylene isomer and ethyl benzene | 脱蜡/透明 | 对应石蜡切片脱蜡及染后透明步骤 | |
二甲苯 | ACS, ≥98.5%, isomers plus ethylbenzene | 脱蜡/透明 | 适合标准化脱蜡和透明处理 | |
二甲苯 | 无水级, ≥98%, mixture of isomers | 脱蜡/透明 | 可用于常规二甲苯透明体系 | |
环保浸蜡脱蜡透明液 | BioReagent, 适用于免疫组织化学(for IHC), 用于显微镜 | 脱蜡/透明 | 可替代二甲苯用于脱蜡和透明步骤 | |
中性树胶 | FMP | 封片 | 对应中性树胶封固步骤 |
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