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多孔石墨化碳(PGC)色谱柱:用分子形状和石墨表面 π 电子云建立困难分离的新选择性

1. 多孔石墨化碳(Porous Graphitic Carbon,PGC)要解决什么困难分离

 

            高效液相色谱(High Performance Liquid Chromatography,HPLC)中,十八烷基硅烷键合固定相(Octadecylsilane,C18)是最常用的反相色谱固定相。C18 的主要分离基础是疏水分配:分子疏水性越强,通常越容易被保留。这个规律适用于大量中等极性和非极性小分子,但在以下样品中常出现不足。

 

1)极性小分子保留不足。

 

            氨基酸、有机酸、核苷酸相关分子、糖磷酸和部分极性代谢物在 C18 上常保留不足,出峰时间接近未保留组分的出峰时间,峰容量低,分离窗口小。2024 年一项极性代谢组学研究指出,常规反相液相色谱对辛醇-水分配系数小于零的代谢物保留有限,极性代谢物通常需要亲水相互作用色谱(Hydrophilic Interaction Chromatography,HILIC)或衍生化气相色谱方法。

 

2)结构相似物难以区分。

 

            位置异构体、差向异构体、构型异构体、药物降解产物和糖链异构体可能具有相同分子量、相近极性和相似疏水性。C18 主要依赖疏水性差异时,容易出现共流出。

 

3)液相色谱-质谱联用(Liquid Chromatography-Mass Spectrometry,LC-MS)方法不适合使用强离子对条件。

 

            离子对试剂可改善带电或高极性化合物的反相保留,但这类试剂可能吸附在液相部件、色谱柱和质谱离子源上,引起后续分析的信号抑制、柱效下降或系统残留。

 

            多孔石墨化碳(Porous Graphitic Carbon,PGC)的价值不是简单增强保留,而是提供一套不同于 C18 的分离逻辑。它能够利用石墨表面的 π 电子云、分子形状、极性基团位置和有效表面接触面积,对某些 C18 或 HILIC 难以处理的化合物产生新的保留和选择性。

 

2. PGC 为什么不是“更疏水的 C18”

 

            PGC 的固定相主体是多孔石墨化碳。石墨由六元碳环构成的平面层堆叠而成,单个平面可理解为石墨烯层。每个碳原子在平面内与三个相邻碳原子成键,剩余电子参与形成离域 π 电子云。PGC 由无定形碳模板经高温处理后形成交织的石墨化带状结构,表面既有较平整的石墨平面,也有石墨带之间的边缘区域。

 

            C18 固定相可以理解为一层疏水烷基链。分析物进入这层疏水环境后,主要根据疏水性差异分离。PGC 则更像一个具有 π 电子云的刚性石墨表面。分析物是否被保留,不只取决于疏水性,还取决于它能否靠近石墨表面,是否有可极化基团,是否能形成足够大的表面接触面积。

 

比较项目

C18 固定相

PGC 固定相

固定相本质

硅胶表面键合疏水烷基链

多孔石墨化碳表面

主要分离基础

疏水分配为主

吸附、分散作用、电子相互作用、形状选择性

对极性化合物的表现

极性增强通常导致保留降低

某些极性分子可通过石墨极性保留效应增强保留

对分子形状的敏感性

相对较弱

较强,尤其受平面性和有效接触面积影响

典型用途

通用反相分离

极性小分子、异构体、糖链、结构相似物困难分离

 

3. PGC 的保留来自哪些作用

 

            PGC 同时受分散作用、石墨极性保留效应和有效表面接触面积影响。

 

3.1 分散作用:PGC 具有部分反相特征

 

            PGC 表面由碳原子组成,对疏水分子可以产生分散作用。对于部分烷基苯、硝基烷烃等同系物,PGC 与 C18 的保留趋势存在一定相关性。

 

            这说明 PGC 并非完全脱离反相规律。疏水面积增加仍可能增强保留。但分散作用只能解释 PGC 与 C18 相似的一面,不能解释 PGC 对极性环状分子、共轭分子和异构体的特殊选择性。

 

3.2 石墨极性保留效应:极性基团可能参与电子相互作用

 

            石墨极性保留效应(Polar Retention Effect on Graphite,PREG)是 PGC 区别于 C18 的关键概念。它指的是分析物中的极性或可极化基团与石墨表面 π 电子云之间可能产生的电子相互作用。

 

            这种作用的具体机制尚未完全明确。它可能与电荷诱导、孤对电子供受作用、π-π 重叠以及分析物极性基团相对于石墨平面的位置有关。

 

            在 C18 上保留较弱的极性化合物,在 PGC 上不一定弱保留。在分子能够接近石墨表面、具有足够接触面积且流动相条件合适时,含有杂环、羰基、羟基、羧基、氨基、磷酸基、芳香环或共轭结构的分子,可能通过极性基团和石墨 π 电子云形成额外相互作用。

 

3.3 有效表面接触面积:平面贴合能力影响保留强弱

 

            PGC 对分子形状很敏感。分析物越能以较大面积靠近石墨表面,越可能获得较强保留。平面性好、刚性强、芳香性或共轭程度高的分子,通常更容易与石墨表面形成有效接触。

 

            比如尿嘧啶结构更平面,可以与石墨面形成较大的接触面积;二氢尿嘧啶因环结构饱和后更非平面,接触面积降低,因此保留明显减弱。

 

            从方法开发角度,可作定性理解:PGC 保留强弱 ≈ 分散作用 + 石墨极性保留效应 + 分子与石墨表面的有效接触面积。 

 

4. 哪些样品值得优先尝试 PGC

 

            PGC 适合用于“常规固定相保留不足或选择性不足”的问题。是否值得尝试 PGC,应优先看分析物结构,而不是只看极性大小。

 

分析物特征

是否适合优先尝试 PGC

判断理由

平面芳香分子、杂环分子、共轭分子

适合

易与石墨表面形成较大接触面积,也可能发生 π 相关相互作用

核碱基、核苷、部分极性药物母核

适合

同时具有极性基团、环状结构和一定平面性

有机酸、氨基酸、糖磷酸等极性代谢物

可尝试

C18 常保留不足,PGC 可能提供替代选择性

糖类、寡糖、糖链异构体

适合

PGC 对连接方式、构型和局部空间结构差异较敏感

位置异构体、差向异构体、构型异构体

适合

PGC 的形状选择性有机会放大结构差异

分子很小、极性强、缺少平面结构

谨慎

可能被流动相强烈溶剂化,与石墨表面接触面积不足

高度柔性、构象变化多的分子

谨慎

有效表面接触不稳定,保留预测难度较高

复杂基质中含强吸附杂质的样品

可尝试,但需重点验证

基质可能改变 PGC 表面状态,导致保留漂移或残留

 

            注意:PGC 优先适合“有结构特征的极性化合物”,而不是所有极性化合物。

 

            小型极性分析物即使具有羰基、平面结构或不均匀电荷分布,也可能因为分子太小、与石墨面的接触面积不足,表现出较弱保留;而尿嘧啶、胞嘧啶等极性环状化合物则可以在 PGC 上获得保留。

 

5. PGC 有价值的三个应用场景

 

5.1 极性代谢物分析

 

            极性代谢物涉及能量代谢、氨基酸代谢、核苷酸代谢、糖代谢和磷酸化中间体。它们在 C18 上常保留不足,使用 HILIC 时又可能受到高有机相起始条件和样品溶剂匹配的限制。

 

            PGC 可作为 C18 和 HILIC 之外的补充路线。2024 年极性代谢组学研究显示,PGC-LC-MS 方法可可靠保留 logP 低至约 -9.1 的极性代谢物,覆盖 logP 约 -9.1 至 5.6 的代谢物范围,并通过质量控制体系评估重复性、回收率和定量表现。

 

在极性代谢物分析中,PGC 主要用于解决以下方法开发需求:

 

            1)目标物在 C18 上保留不足,出峰时间接近未保留组分;

            2)HILIC 对样品溶剂、初始流动相或柱平衡条件要求较高;

            3)离子对试剂不适合共用 LC-MS 系统;

            4)希望减少衍生化步骤,直接分析水溶性代谢物;

            5)需要在同一方法中覆盖极性到中等极性代谢物。

 

5.2 糖类、寡糖和糖链异构体分析

 

            糖链分析的难点不只是极性强,更在于异构体多。组成相同的糖链可能因连接位置、分支方式、构型或唾液酸连接方式不同而具有不同生物意义。

 

            PGC 在糖组学中常用于糖链异构体分离。2021 年一项 N-糖链研究指出,PGC 色谱因较高分辨能力而适用于 N-糖链分离,但稳健和可重复实施并不总是容易;该研究使用自填装 PGC 柱,在卵巢癌组织样品中检测到多种结构和组成异构体。

 

在糖类和糖链分析中,PGC 主要用于放大以下结构差异:

 

            1)相同组成的糖链是否包含多个结构异构体;

            2)糖苷键连接位置是否不同;

            3)分支结构是否不同;

            4)唾液酸连接方式是否不同;

            5)不同样品组之间是否存在特定异构体比例变化。 

 

5.3 药物杂质、降解产物和结构相似物分析

 

            药物研发和质量控制中,困难分离常来自结构高度相似的杂质、降解产物、位置异构体和差向异构体。这些化合物可能在 C18 上具有非常接近的保留。

 

            PGC 可作为正交选择性固定相。它关注的不只是疏水性差异,还包括分子平面性、取代基空间方向、极性基团位置和与石墨表面的接触方式。2024 年 PGC 综述也将异构体分离列为 PGC 固定相的重要应用方向之一。

 

在药物杂质和结构相似物分析中,PGC 主要用于补充反相色谱选择性:

 

            1)主成分与极性杂质在 C18 上分离不足;

            2)降解产物与主峰或已知杂质共流出;

            3)位置异构体、差向异构体或构型异构体难以区分;

            4)离子对方法不适合 LC-MS 检测;

            5)更换不同 C18、苯基柱或极性嵌入型反相柱后,选择性仍不足。

 

6. PGC 方法常见问题与排查

 

            PGC 的特殊选择性也带来方法开发难点。常见的问题是保留漂移、残留、强吸附、柱平衡不足和基质影响。

 

现象

可能原因

排查方法

保留时间逐针变化

柱表面状态未稳定,梯度后再平衡不足

延长初始流动相平衡时间,连续进样标准品观察稳定性

峰拖尾严重

分析物与石墨表面相互作用过强

提高洗脱强度,调整酸碱度、缓冲盐或有机溶剂类型

空白中出现残留峰

强吸附物未完全洗脱

增加强洗脱步骤,检查进样针、管路和柱后残留

基质样品后标准品保留改变

基质污染或强吸附基质组分改变柱表面

加强样品前处理,使用保护柱,设置基质空白和清洗程序

PGC 上极性分子仍不保留

分子过小、强溶剂化、带电状态不利或有效接触面积不足

换用 HILIC、离子交换或衍生化策略;不要只依据极性判断

方法批间重复性差

柱平衡、清洗和初始状态控制不足

固定柱维护流程,记录柱龄、进样量和清洗历史

 

            Bapiro 等人的研究提出,PGC 方法中的保留损失和变异性可能与梯度前后未能维持一致的 PGC 表面状态有关;通过调控流动相程序中的准备、洗脱和维持阶段,可以降低保留损失和变异性。

 

PGC 方法开发中应特别注意三点。

 

            ① 不要只优化洗脱梯度。柱平衡、强洗脱、再平衡和清洗程序同样重要。

 

            ② 不要只看标准品。复杂基质可能改变 PGC 表面状态。需要做基质空白、基质加标和连续进样实验。

 

            ③不要沿用 C18 的所有经验规则。尿嘧啶等在 C18 上常用于死时间判断的小分子,在 PGC 上可能被保留,不能直接作为死时间标记物。

 

7. PGC 给科研和实验设计带来的启发

 

            PGC 不只是解决保留不足的备用色谱柱,也可以作为研究分子结构差异的工具。它把分子平面性、电子分布、极性基团位置和空间构型差异转化为色谱保留差异。

 

7.1 用多固定相比较判断分离机制

 

同一组化合物可分别在 C18、HILIC 和 PGC 上测试。三种固定相的保留差异可以帮助判断:

 

            1) 分离主要受疏水性控制,还是受极性和形状控制;

            2) 异构体差异是否来自空间构型;

            3) 极性基团是否可能参与石墨极性保留效应;

            4) 分子是否具有适合 PGC 分离的平面接触区域。

 

            这种比较不是简单“试柱子”,而是通过不同固定相的保留行为推断分子相互作用特征。

 

7.2 用结构特征建立 PGC 方法开发假设

 

PGC 方法开发可以从以下结构特征建立假设:

 

            1) 平面性;

            2) 芳香环数量;

            3) 共轭程度;

            4) 可旋转键数量;

            5) 极性表面积;

            6) 偶极分布;

            7) 可极化性;

            8) 分子投影面积;

            9) 氢键供体和受体数量;

            10) 带电状态。

 

            这些参数不能单独决定保留,但能帮助实验人员判断哪些化合物值得优先用 PGC 筛查。

 

7.3 用 PGC 发现常规方法掩盖的异构体

 

            复杂样品中,一个单峰不一定代表一个单一结构。对于糖链、天然产物、代谢物和药物杂质,PGC 可能把 C18 上的单峰拆分为多个异构体峰。

 

适合开展的研究问题包括:

 

            1) C18 上的单峰在 PGC 上是否被拆分;

            2) 被拆分的峰是否具有相同精确质量;

            3) 二级质谱碎片是否提示连接方式或构型差异;

            4) 不同生物状态下异构体比例是否变化;

            5) 色谱分离差异是否能解释功能、活性或代谢路径差异。

 

            PGC 的科研价值在于,它不只帮助“看见峰”,也可能帮助“看见结构差异”。

 

8. 多孔石墨化碳色谱柱相关产品选表导航:从方法条件、保留机制到糖类与极性小分子分析

 

科研或实验目标

建议先看哪张表

为什么先看这张表

建议联动看哪张表

导航提示

搭建多孔石墨化碳色谱柱的基础方法条件

表1 方法开发基础材料、流动相与挥发性添加剂

表1集中列出乙腈、甲醇、甲酸、甲酸铵、乙酸铵、碳酸氢铵、三氯乙酸等方法开发常用试剂,可先确定有机相、酸性添加剂、缓冲盐和样品前处理条件

表2、表4

先确定检测方式、目标物电离状态和样品基质,再选择流动相体系和缓冲盐条件

比较不同流动相条件对保留、峰形和洗脱强度的影响

表1

多孔石墨化碳固定相对有机相类型、酸度、缓冲盐和柱平衡条件较敏感,表1中的试剂可用于建立方法筛查组合

表2、表3、表4

可用表2中的核碱基或核苷、表3中的糖类、表4中的有机酸作为代表物,观察保留时间、峰形和残留变化

验证分子平面性、极性基团和有效表面接触面积对保留的影响

表2 保留机制评价物、核碱基、核苷与核苷酸

表2包含尿嘧啶、二氢尿嘧啶、胞嘧啶、腺嘌呤和多种核苷,可用于比较平面杂环、非平面结构和极性基团对多孔石墨化碳保留的影响

表1

先用结构明确的标准物建立保留规律,再调整流动相和缓冲盐条件,避免直接用复杂样品判断机制

开展核碱基、核苷和核苷酸相关极性小分子分析

表2

表2覆盖核碱基、核苷和磷酸化核苷酸代表物,可用于建立极性杂环和磷酸化分子的保留筛查体系

表1、表4

核苷类可用于评价平面杂环和羟基结构的影响;腺苷酸可用于考察强极性、带电分子的洗脱和峰形

比较单糖构型差异和二糖连接差异对分离的影响

表3 糖类、二糖异构体与糖链相关单元

表3包含葡萄糖、果糖、半乳糖、甘露糖、乳糖、麦芽糖和纤维二糖,适合用于糖类构型、异构关系和糖苷键差异的分离评价

表1

糖类保留受流动相、缓冲盐和柱平衡影响明显,建议结合表1同步筛查流动相条件

设计糖链、酸性糖和唾液酸化结构相关分析

表3

表3中的 N-乙酰神经氨酸可作为酸性糖和唾液酸化糖链相关结构的代表物,适合引出糖链末端结构和局部酸性基团分析

表1、表2

可先用单糖和二糖建立保留基础,再引入酸性糖代表物,观察酸性基团对保留和峰形的影响

建立极性代谢物分析方法

表4 极性代谢物、高极性离子型分析物与农残代表物

表4集中列出乳酸、丙酮酸、柠檬酸、琥珀酸、富马酸、苹果酸、α-酮戊二酸和氨基酸等代表物,可用于极性代谢物方法筛查

表1

先用有机酸和氨基酸代表物判断保留、峰形和水相样品适配性,再调整挥发性缓冲盐和酸度条件

分析三羧酸循环相关有机酸和多羧酸代谢物

表4

表4包含多种二羧酸、羟基二羧酸和多羧酸代表物,适合评价多电离位点化合物在多孔石墨化碳柱上的保留和洗脱

表1

重点关注酸度、缓冲盐浓度、峰拖尾和保留重现性,避免只用单次保留时间判断方法可行性

筛查氨基酸等强极性两性离子化合物

表4

表4包含甘氨酸、丝氨酸和谷氨酸,可用于观察小分子氨基酸、含羟基氨基酸和酸性氨基酸的保留差异

表1、表2

氨基酸在反相体系中常保留不足,可用多孔石墨化碳柱评估是否能减少衍生化或离子对条件依赖

开展高极性农残或离子型分析物方法筛查

表4

表4包含草甘膦、氨甲基膦酸、草铵膦、甲基紫精和敌草快二溴化物,适合用于高极性膦酸类和阳离子型分析物方法评价

表1

重点评估缓冲盐条件、残留、清洗程序和基质影响,避免强吸附组分改变后续进样保留

对比多孔石墨化碳柱与常规反相柱的选择性差异

表2、表3、表4

表2可代表平面极性杂环,表3可代表糖类异构体,表4可代表极性代谢物和离子型分析物,三类标准物覆盖不同分离难点

表1

建议用同一组标准物在不同固定相上比较保留、峰形和分离度,判断多孔石墨化碳柱是否提供新的选择性

 

表1|PGC 方法开发基础材料、流动相与挥发性添加剂

 

分类

Cas编号

阿拉丁货号

名称

规格或纯度

产品特色与应用

石墨化碳材料基础

7782-42-5

G103922

纳米石墨粉

≥99.95% metals basis, D50<600nm

用于理解石墨化碳表面、π 电子云和碳材料吸附特征的材料参照;不等同于商品化 PGC 色谱柱填料,不能直接替代 PGC 固定相

有机流动相

75-05-8

A433531

乙腈(ACN)

质谱级 (MS), UltraPureChrom™, UHPLC级

PGC液相色谱和液相色谱-质谱联用中常用有机相,可用于调节洗脱强度、峰形和质谱响应

有机流动相

67-56-1

M116126

甲醇

色谱HPLC plus级, ≥99.9%

可与乙腈比较流动相选择性差异,用于考察PGC上极性分子、糖类或芳香杂环的保留变化

酸性流动相添加剂

64-18-6

F433212

甲酸(FA)

医药级, PharmPure™, ≥98%

常用于酸性液相色谱-质谱条件,可改善部分极性化合物峰形并调节电离状态

酸性流动相添加剂

76-05-1

T103293

三氟乙酸(TFA)

用于蛋白测序, ≥99%

可用于强酸性条件下比较峰形和保留变化;用于 LC-MS 时需注意离子化抑制和系统残留,通常不作为首选添加剂。

挥发性缓冲盐

540-69-2

A432863

甲酸铵

无水级, 试剂级, ≥97%

适合液相色谱-质谱兼容缓冲体系,用于调节带电极性化合物在PGC上的保留和峰形

挥发性缓冲盐

631-61-8

A112057

乙酸铵

色谱HPLC级, ≥99%

可用于弱酸性至近中性流动相条件,适合核苷、糖类、有机酸和极性代谢物方法开发

挥发性缓冲盐

1066-33-7

A110536

碳酸氢铵

试剂级

可用于弱碱性或近中性挥发性缓冲体系,适合考察带电极性分析物在PGC上的保留变化

样品前处理试剂

76-03-9

T433650

三氯乙酸(TCA)

用于电泳, ≥99%, suitable for fixing solution (for IEF and PAGE gels)

可用于蛋白沉淀和水相代谢物提取,适合 PGC 极性代谢组学样品前处理方法设计;进入 LC-MS 前需控制残留酸度和基质影响,不作为常规流动相添加剂

 

表2|PGC 保留机制评价物、核碱基、核苷与核苷酸

 

分类

Cas编号

阿拉丁货号

名称

规格或纯度

产品特色与应用

平面性机制评价物

66-22-8

U102087

尿嘧啶

Moligand™, ≥99%

平面极性杂环代表物,可用于说明PGC对分子平面性、极性基团和有效表面接触面积的响应

非平面性对照评价物

504-07-4

D113497

二氢尿嘧啶

≥97%

可与尿嘧啶比较,用于考察环结构饱和后平面性降低对PGC保留的影响

核碱基/极性杂环

71-30-7

C104336

胞嘧啶

Moligand™, ≥98%

含氮极性杂环代表物,可用于PGC对核碱基类分子保留和选择性的评价

核碱基/极性杂环

73-24-5

A108805

腺嘌呤

≥99.5%(HPLC)

嘌呤类平面杂环,可用于考察PGC对含氮芳香杂环和电子相互作用的保留表现

核苷类标准物

58-96-8

U755611

尿核甙

UltraBio™, ≥99%

核苷类极性分子代表物,适合用于PGC与亲水相互作用色谱的保留差异比较

核苷类标准物

58-61-7

A108807

腺嘌呤核苷(腺苷)

Moligand™, 分析标准品

兼具嘌呤环和核糖羟基结构,可用于PGC核苷类方法筛查和保留规律比较

核苷类标准物

65-46-3

C100358

胞嘧啶核苷

Moligand™, ≥99%

可作为嘧啶核苷代表物,用于PGC对极性核苷类化合物的保留与峰形评价

核苷类标准物

118-00-3

G103965

鸟嘌呤核苷

Moligand™, ≥98%

嘌呤核苷代表物,适合与腺苷、胞苷、尿苷联用建立核苷类PGC筛查混合物

核苷酸/磷酸化代谢物

61-19-8

A136967

5'-腺苷酸(5'-AMP)

Moligand™, ≥98%(HPLC)

磷酸化核苷酸代表物,可用于考察PGC对强极性、带电代谢物的保留和质谱兼容条件

 

表3|糖类、二糖异构体与糖链相关单元

 

分类

Cas编号

阿拉丁货号

名称

规格或纯度

产品特色与应用

单糖代表物

50-99-7

D432810

D -(+)-葡萄糖

无水级,PharmPure™,USP,BP,欧洲药典(Ph.Eur),ACS

单糖代表物,可用于PGC糖类分离中保留、峰形和极性响应的基础评价

单糖异构体

57-48-7

F108332

D-果糖

分析标准品, ≥99.5%

与葡萄糖互为单糖异构体,可用于考察PGC对糖类结构差异的分离能力

单糖差向异构体

59-23-4

D274314

D(+)半乳糖

高级纯, ≥99%

葡萄糖差向异构体代表物,可用于评价PGC对羟基空间取向差异的响应

单糖差向异构体

3458-28-4

M103970

D-(+)-甘露糖

Moligand™, 分析标准品

可与葡萄糖、半乳糖联用,考察PGC对单糖构型差异和局部极性分布的选择性

二糖代表物

63-42-3

L103493

乳糖,无水

PharmPure™, USP, JP, 欧洲药典(Ph.Eur), NF

二糖代表物,可用于PGC糖类方法中保留强度、峰形和糖苷键差异的评价

二糖代表物

69-79-4

M120965

麦芽糖浆

BioReagent, 分子生物学级, ~20% in H2O

可用于二糖体系中糖苷键连接方式对PGC保留影响的比较

二糖异构体

528-50-7

C111867

纤维二糖

分析标准品

与麦芽糖均由葡萄糖单元组成但糖苷键构型不同,适合用于PGC二糖异构体分离评价

糖链相关单元

131-48-6

A100555

N-乙酰神经氨酸

≥98%

唾液酸化糖链相关单元,可用于PGC糖链、酸性糖和末端糖基结构分析方法开发

 

表4|极性代谢物、高极性离子型分析物与农残代表物

 

分类

Cas编号

阿拉丁货号

名称

规格或纯度

产品特色与应用

有机酸代谢物

50-21-5

L108839

DL-乳酸

AR, 85-90%

小分子羟基酸代表物,可用于PGC极性有机酸保留和水相样品适配性评价

有机酸代谢物

127-17-3

P104138

丙酮酸

≥98%(T)

α-酮酸代表物,适合用于PGC极性代谢物方法中峰形、稳定性和保留评估

三羧酸循环代谢物

77-92-9

C434175

柠檬酸

无水级,PharmPure™,USP,JP,BP,欧洲药典(Ph.Eur),粉末

多羧酸代谢物代表,可用于评价PGC对高极性有机酸和多电离位点分子的保留能力

三羧酸循环代谢物

110-15-6

S431422

琥珀酸

PharmPure™,ChP,JP,ACS,NF,crystalline

二羧酸代表物,可用于三羧酸循环相关极性代谢物的PGC方法筛查

三羧酸循环代谢物

110-17-8

GMP1491392

反丁烯二酸

PharmPure™,JPE,NF

不饱和二羧酸代表物,可用于比较双键结构对PGC有机酸保留的影响

三羧酸循环代谢物

97-67-6

M105696

L-苹果酸

化学纯(CP)

羟基二羧酸代表物,可用于PGC上极性有机酸同类物的保留和分离评价

三羧酸循环代谢物

328-50-7

K105571

α-酮戊二酸

Moligand™, ≥98%

多官能团二羧酸代谢物,可用于极性代谢物PGC液相色谱-质谱方法开发

氨基酸代谢物

56-40-6

G432934

甘氨酸

UltraBio™, 分子生物学级, 超纯级, ≥99%(NT)

小分子氨基酸代表物,可用于评价PGC对强极性两性离子化合物的保留表现

氨基酸代谢物

56-45-1

S137887

L-丝氨酸

无动物源, USP, Moligand™, 欧洲药典(Ph.Eur), ≥98.5%

含羟基氨基酸代表物,适合用于PGC极性氨基酸分析和峰形评价

氨基酸代谢物

56-86-0

G103979

L-谷氨酸

超纯级, ≥99.5%(NT)

酸性氨基酸代表物,可用于考察PGC对带多重极性基团代谢物的保留和洗脱条件

高极性膦酸类分析物

1071-83-6

P109921

草甘膦标准溶液

分析标准品, 10ug/ml in water

高极性膦酸类代表物,可用于PGC方法中强极性农残的保留、灵敏度和质谱兼容性评价

高极性膦酸类分析物

1066-51-9

A151006

(氨甲基)膦酸

≥97%(T)

草甘膦相关代谢物代表,可用于PGC高极性膦酸类化合物的分离和定量方法开发

高极性农药标准物

77182-82-2

G114499

草铵膦

分析标准品

高极性除草剂代表物,适合用于PGC对离子型农残分析的筛查和方法验证

高极性阳离子分析物

1910-42-5

M106760

甲基紫精

分析标准品, ≥99%

强极性季铵盐类代表物,可用于评价PGC对阳离子型分析物的保留、残留和清洗条件

高极性阳离子分析物

85-00-7

D350633

敌草快二溴化物

Moligand™,≥98%

阳离子型除草剂代表物,可用于PGC离子型农残方法中的保留、峰形和基质影响评价

 

            注:以上为阿拉丁代表产品,更多产品规格可用‘品名/CAS/货号’在阿拉丁官网检索。

 

参考文献

 

[1] Corman C., Ye M., Muraco C. The Carbon Enigma: Material Fundamentals and Retention Properties for Porous Graphitic Carbon Stationary Phases. Merck/Sigma-Aldrich, Analytix Reporter, Issue 13.

 

[2] Russo M., Testa Camillo M. R., La Tella R., Rigano F., Donato P., Mondello L., Dugo P. Principles and applications of porous graphitic carbon stationary phase in liquid chromatography: An update. Journal of Chromatography A, 2024, 1719, 464728. DOI: 10.1016/j.chroma.2024.464728.

 

[3] Pereira L. Porous Graphitic Carbon as a Stationary Phase in HPLC: Theory and Applications. Journal of Liquid Chromatography & Related Technologies, 2008, 31(11–12), 1687–1731. DOI: 10.1080/10826070802126429.

 

[4] Knox J. H., Kaur B., Millward G. R. Structure and performance of porous graphitic carbon in liquid chromatography. Journal of Chromatography, 1986, 352, 3–25. DOI: 10.1016/S0021-9673(01)83368-9.

 

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[6] Bapiro T. E., Richards F. M., Jodrell D. I. Understanding the complexity of porous graphitic carbon chromatography: Modulation of mobile-stationary phase interactions overcomes loss of retention and reduces variability. Analytical Chemistry, 2016, 88(12), 6190–6194. DOI: 10.1021/acs.analchem.6b01167.

 

[7] Day F., O’Sullivan J., Ramzan F., Pook C. Polar metabolomics using trichloroacetic acid extraction and porous graphitic carbon stationary phase. Metabolomics, 2024, 20, 77. DOI: 10.1007/s11306-024-02146-7.

 

[8] Young C. Y. C., Condina M. R., Briggs M. T., Moh E. S. X., Kaur G., Oehler M. K., Hoffmann P. In-House Packed Porous Graphitic Carbon Columns for Liquid Chromatography-Mass Spectrometry Analysis of N-Glycans. Frontiers in Chemistry, 2021, 9, 653959. DOI: 10.3389/fchem.2021.653959.

 

[9] Stavenhagen K., Kolarich D., Wuhrer M. Clinical Glycomics Employing Graphitized Carbon Liquid Chromatography-Mass Spectrometry. Chromatographia, 2015, 78(5–6), 307–320. DOI: 10.1007/s10337-014-2813-7.

 

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引用本文

阿拉丁科学.《多孔石墨化碳(PGC)色谱柱:用分子形状和石墨表面 π 电子云建立困难分离的新选择性》. 阿拉丁知识库,更新于 2026年5月21日。 https://www.aladdin-e.com/zh_cn/faqs/porous-graphitic-carbon-pgc-chromatography-columns.html
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