计算溶液所需的质量、体积或浓度。
BioReagent 级 ,适用于对基线干扰要求严格的色谱和分析工作流程。
2-8°C储存,禁止冷冻。低温运输,禁止冷冻 。请查阅批次 COA 获取详细规格。
SDS、COA、产品数据表及规格说明书均可下载。可通过批号查询获取批次 COA。
在色谱分析、有机合成和交叉偶联反应领域已被 0 篇同行评审文献引用。
UltraBio™ GST标签蛋白纯化琼脂糖磁珠以一步纯化各种表达系统表达的谷胱甘肽-S-转移酶、谷胱甘肽依赖性蛋白和谷胱甘肽转移酶的重组衍生物。 同时,利用重组技术将诱饵蛋白与GST(Glutathione S transferase)标签融合,重组融合蛋白通过亲和作用与UltraBio™ GST标签蛋白纯化琼脂糖磁珠结合,当目标蛋白与固相载体混合时,就可被诱饵蛋白吸附,在磁力下,目标蛋白就从表达体系中分离出来,使用UltraBio™ GST标签蛋白纯化琼脂糖磁珠进行GST Pull-down实验,操作简单、快捷,是传统方法无法比拟的。
本产品每毫升磁珠悬浊液含约20% v/v琼脂糖磁珠沉淀。
包装规格: 20% v/v悬液
| 参数 | 指标 |
| 基质 | 磁性琼脂糖微球 |
| 配基 | Glutathione(谷胱甘肽) |
| 含量 | Slurry: 20% |
| 粒径 | 30-100 μm |
| 载量 | 5-10 mg GST 融合蛋白/mL (100%, v/v) |
| 保存 | 2-8℃ (含20% 乙醇的1×PBS ) |
使用说明:
一、蛋白纯化操作流程
1、缓冲液准备
平衡/洗杂液:PBS, pH7.4 (140mM NaCl, 2.7mM KCl, 10mM Na₂HPO₄, 1.8mM KH₂PO₄, pH7.4)
洗脱液:50mM Tris-HCl, 10-20 mM 还原型谷胱甘肽, pH8.0
2、样品准备
样品在上样前建议离心或用0.22μm或0.45μm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。
2.1 细菌或酵母表达的蛋白
(1) 挑取单菌落到培养基中,根据载体使用说明,加入相应浓度的诱导剂诱导相应的时间。
(2) 表达结束后,将培养液转移到离心杯中,7000rpm (7500×g),离心15min收集菌体,然后按照菌体:平衡液=1:10(W/V)加入平衡液,加入终浓度为1mM的PMSF。加入溶菌酶(工作浓度为0.2-0.4mg/ml,如果表达的宿主细胞内含pLysS 或pLysE,可以不加溶菌酶),(同时也可加入其他蛋白酶抑制剂,但不能影响目的蛋白与填料的结合)。
(3) 将菌体沉淀悬浮起来,(如果菌液浓度高,也可考虑加入10μg/ml RNaseA和5μg/ml DNaseI),混匀,放置于冰上,然后冰上超声 破碎细胞,至菌液基本保持澄清。
(4) 将澄清的破碎液转移至离心管中,10000rpm (15000×g),4℃离心20-30min。取上清,置于冰上备用或-20℃保存。
2.2 酵母、昆虫和哺乳细胞分泌表达可溶性蛋白
(1) 将细胞培养液转移至离心杯,5000rpm (3800×g),离心10min,收集菌体得上清,即可直接加入柱子使用。
(2) 对于大量体积的上清,需加入硫酸铵沉淀浓缩后,蛋白还需用平衡液透析后才能加入柱子。
3、磁珠准备
3.1 根据产品性能指标准备适量的UltraBio™ GST标签蛋白纯化琼脂糖磁珠(磁珠体积为总体积的20%),将磁珠反复颠倒,充分混匀,使用移液器取适量的磁珠悬浮液,置于离心管中,将离心管置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,用移液器吸弃清液。
3.2 磁珠平衡:将离心管从磁分离器上取下来,加入与悬浮液等体积的平衡液,使用枪头反复吹打5次,将离心管置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,用移液器吸弃清液,重复洗涤2次。
4、标签蛋白纯化
4.1 将GST融合蛋白裂解液加入到处理好的磁珠中,反复颠倒混匀。将离心管置于混合仪上,室温孵育30min以上(具体时间根据结合效果调整)。
4.2 磁珠洗杂:将离心管置于磁分离器,大约1min,待溶液变澄清后,用移液器移出上清液,保留,以备取样检测。向离心管中加入5倍悬浮液体积的洗杂液,使用枪头反复吹打5次,将离心管置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,用移液器吸弃上清液。至少重复上述步骤2次。
4.3 洗脱目标蛋白:在上述离心管中加入3-5倍磁珠体积的洗脱液,用移液器吹打5次, 然后在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管,5-10min后,置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,吸取上清液,收集洗脱组分,即为目标蛋白。重复操作两次,分别收集洗脱组分,留待检测。
4.4 磁珠保存:使用后的磁珠用1ml洗脱液重悬磁珠,然后置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,吸弃上清液。该操作重复两次。再加入1ml平衡液,悬浮磁珠,然后置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,吸弃上清液。再加入4倍磁珠体积的20%乙醇,置 于2-8℃保存。
二、Pull-Down操作流程
1、缓冲液准备
平衡/洗杂液:PBS, pH7.4 (140mM NaCl, 2.7mM KCl, 10mM Na₂HPO₄, 1.8mM KH₂PO₄, pH7.4 )
洗脱液:50mM Tris-HCl, 10mM 还原型谷胱甘肽, pH8.0
2、Pull-Down操作
2.1 磁珠准备
根据产品性能指标准备适量的UltraBio™ GST标签蛋白纯化琼脂糖磁珠(磁珠体积为总体积的20%),将磁珠反复颠倒,充分混匀,使用移液器取适量的磁珠悬浮液,置于离心管中,将离心管置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,用移液器吸弃清液。
2.2 磁珠平衡
再将离心管磁分离器上取下来,加入与悬浮液等体积的平衡液,使用枪头反复吹打5-10次,将离心管置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,用移液器吸弃清液,重复洗涤2次。
2.3 磁珠结合诱导蛋白
将含有GST标签的诱饵蛋白样品加入到处理好的磁珠中,颠倒混匀。将离心管置于混合仪上,室温孵育30min以上(具体时间根据结合效果调整)。
2.4 磁珠洗杂
将离心管置于磁分离器,大约1min,待溶液变澄清后,用移液器移出上清液,保留,以备取样检测。向离心管中加入5倍悬浮液体积的洗杂液,使用枪头反复吹打5-10次,将离心管置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,用移液器吸弃上清液。重复上述步骤2次。 即得到诱饵蛋白-磁珠复合物。
2.5 目标蛋白与诱饵蛋白-磁珠复合物的结合
将含有目标蛋白的样品加入到处理好的靶蛋白-磁珠复合物中,颠倒混匀。将离心管置于混合仪上,室温孵育30min以上(具体时间根据结合效果调整)。
2.6 磁珠洗杂
将离心管置于磁分离器,大约1min,待溶液变澄清后,用移液器移出上清液,保留,以备取样检测。向离心管中加入5倍悬浮液体积的洗杂液,使用枪头反复吹打5-10次,将离心管置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,用移液器吸弃上清液。重复上述步骤2次。 目标蛋白通过与靶蛋白的结合,从混合体系中被捕获。
2.7 目的蛋白的洗脱
在上述离心管中加入3-5倍磁珠体积的洗脱液,用移液器吹打5次,然后在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管,5-10min后, 置于磁分离器上,大约1min,待溶液变澄清后,吸取上清液,收集洗脱组分,即得到靶蛋白和目标蛋白复合物。再重复操作两次,分别收集洗脱组分,留待检测。
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| 批号(Lot Number) | 证书类型 | 货号 |
|---|---|---|
| 分析证书 | M751555 | |
| 分析证书 | M751555 | |
| 分析证书 | M751555 |