棕榈酰五肽-4如何作用于皮肤:从KTTKS序列、皮肤递送到胶原基质响应
棕榈酰五肽-4如何作用于皮肤:从KTTKS序列、皮肤递送到胶原基质响应
引言
棕榈酰五肽-4是一种由棕榈酰脂肪链与五肽KTTKS连接形成的合成脂肽,国际化妆品原料名称为Palmitoyl Pentapeptide-4,研究中常写作Pal-KTTKS或C16-KTTKS。
KTTKS对应于Ⅰ型前胶原α1链羧基端前肽中的特定序列,合成KTTKS在体外可影响成纤维细胞的细胞外基质合成。连接棕榈酰基后,分子的脂质亲和力、皮肤沉积和稳定性得到改善,使这一亲水性短肽具有用于外用制剂的可能性。
从研究和应用历史看,棕榈酰五肽-4可归为经典的抗老信号肽之一。它的主要作用并不是直接补充胶原蛋白,而是通过前胶原来源的KTTKS序列调节细胞外基质合成。其实际功效还受到皮肤递送、分子稳定性、配方释放和持续使用时间等因素影响。
1 棕榈酰五肽-4的结构由什么组成
1.1 KTTKS代表五个氨基酸
KTTKS是五个氨基酸的一字母序列:
字母 | 氨基酸 | 主要结构特征 |
K | 赖氨酸 | 侧链含碱性氨基,在常见生理条件下可带正电 |
T | 苏氨酸 | 侧链含羟基,可参与氢键作用 |
T | 苏氨酸 | 增加肽链的极性和亲水性 |
K | 赖氨酸 | 提供第二个碱性侧链 |
S | 丝氨酸 | 侧链含羟基,具有较强亲水性 |
未修饰KTTKS可表示为:
Lys—Thr—Thr—Lys—Ser
棕榈酰五肽-4则可表示为:
棕榈酰基—Lys—Thr—Thr—Lys—Ser
棕榈酰基是一条含16个碳原子的饱和脂肪酰链,连接在肽链N端。由此形成的分子同时具有疏水脂肪链和亲水肽链,属于两亲性脂肽。
1.2 两个结构部分承担不同功能
棕榈酰五肽-4的结构—功能关系可概括为:
结构部分 | 主要功能 |
KTTKS五肽序列 | 保留与前胶原加工和细胞外基质调节相关的序列信息 |
C16棕榈酰链 | 提高脂质亲和力,改变皮肤分配、分子聚集和局部稳定性 |
酰胺连接键 | 将脂肪链与肽链稳定连接,并封闭肽链N端 |
KTTKS是生物活性序列的主要来源,棕榈酰链主要解决外用递送和分子分配问题。棕榈酰链本身不能替代KTTKS的序列作用,KTTKS单独使用时又面临较强的角质层屏障和酶降解限制。
2 KTTKS为什么能够作为基质调节信号
2.1 KTTKS对应于Ⅰ型前胶原羧基端前肽中的特定序列
成纤维细胞合成的Ⅰ型胶原最初以Ⅰ型前胶原形式存在。前胶原分子的两端分别带有N端前肽和C端前肽。这些前肽有助于维持前胶原的可溶状态,减少胶原分子在细胞内提前聚集。
前胶原分泌到细胞外后,特异性蛋白酶切除两端前肽。去除前肽后的胶原分子进一步排列、组装和交联,逐渐形成胶原原纤维和胶原纤维。
1993年的研究从Ⅰ型前胶原α1链C端前肽片段中定位出KTTKS序列。该五肽对应前肽区域的第212—216位残基,可促进培养成纤维细胞产生Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原和纤连蛋白[1]。
因此,KTTKS不是成熟胶原三股螺旋中的典型Gly-X-Y重复单元,也不是用于直接组装胶原纤维的结构片段。它对应于Ⅰ型前胶原C端前肽中的特定序列,合成KTTKS在体外实验中显示出调节细胞外基质合成的活性。
2.2 KTTKS模拟前胶原加工相关信息
细胞外基质(extracellular matrix,ECM)由胶原、弹性蛋白、纤连蛋白、蛋白聚糖和其他成分组成。它不仅决定组织的结构和力学性质,也可以通过基质片段、细胞表面受体和机械作用调节细胞行为。
某些来源于细胞外基质或其前体的活性肽段可称为基质来源调节肽 matrikine。这些肽段可能影响细胞迁移、增殖、分化和基质合成。
KTTKS模拟的是Ⅰ型前胶原C端前肽中的特定序列。成纤维细胞接触这一序列后,Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原和纤连蛋白相关合成可发生变化[1]。
这一作用与完整伤口愈合过程并不相同。伤口愈合还包括凝血、炎症细胞募集、角质形成细胞迁移、血管生成、成纤维细胞活化和组织收缩等多个过程。Pal-KTTKS主要涉及基质合成与重塑相关调节,不会单独重现整套损伤修复反应。
一项人真皮成纤维细胞和三维胶原凝胶研究显示,0.1 μmol/L Pal-KTTKS可降低α-平滑肌肌动蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)阳性应力纤维、成纤维细胞向肌成纤维细胞的转分化以及胶原凝胶收缩;在0.5 μmol/L条件下,部分抑制作用不再明显[5]。这一结果表明,Pal-KTTKS并不是单向增强全部伤口收缩反应,其作用受到浓度和细胞状态影响。
3 棕榈酰化如何改善皮肤递送
3.1 未修饰KTTKS为什么难以通过角质层
KTTKS含有两个赖氨酸、两个苏氨酸和一个丝氨酸,具有多个羟基、氨基和可离子化基团,整体亲水性较强。
角质层细胞间区域则富含神经酰胺、胆固醇和游离脂肪酸。亲水、带电或氢键作用较强的分子通常难以从配方水相进入这一脂质区域。
KTTKS还可能受到皮肤表面及皮肤组织中肽酶和蛋白酶的降解。皮肤稳定性实验显示,KTTKS和Pal-KTTKS在皮肤提取物及皮肤匀浆中均会发生较快降解;加入蛋白酶抑制剂后,两者的稳定性明显提高[3]。
未修饰KTTKS外用时主要面临两项限制:
1. 从水相进入角质层脂质的分配能力较低;
2. 到达活性皮肤层之前可能被肽酶降解。
3.2 棕榈酰链提高脂质亲和力
C16棕榈酰链增加了KTTKS的疏水性,使Pal-KTTKS能够在水相、油水界面、乳化剂聚集体和角质层脂质之间重新分配。
这一变化有助于分子进入角质层,但并不代表它可以不受限制地穿过整个皮肤。
外用Pal-KTTKS需要连续经历多个分配过程:
配方水相或载体 → 配方油水界面 → 角质层细胞间脂质 → 活表皮水相环境 → 真皮细胞外环境
分子疏水性不足时,进入角质层的比例较低;脂质亲和力过强时,分子也可能滞留在油相、胶束或角质层脂质中。棕榈酰化改善的是这些环境之间的分配关系。
3.3 皮肤实验显示以沉积为主
2014年的离体研究比较了KTTKS和Pal-KTTKS在全层无毛小鼠皮肤中的分布。实验结束后,两种肽均未在受体液中检出,说明在该实验条件下,它们没有穿过完整的全层皮肤。
未修饰KTTKS未在角质层、表皮和真皮中检出。Pal-KTTKS则分布在三个皮肤层中:
皮肤部位 | Pal-KTTKS沉积量 |
角质层 | 4.2 ± 0.7 μg/cm² |
表皮 | 2.8 ± 0.5 μg/cm² |
真皮 | 0.3 ± 0.1 μg/cm² |
受体液 | 未检出 |
这组结果说明,棕榈酰化提高了KTTKS在皮肤中的沉积,其中大部分位于角质层和表皮,真皮中的检测量相对较低[3]。

棕榈酰五肽-4的皮肤递送过程可表示为:
配方释放
→ 进入角质层脂质
→ 角质层和表皮沉积
→ 少量分子进入真皮
→ 可能接近成纤维细胞及其周围基质
上述实验采用无毛小鼠离体皮肤和特定载体,不能直接代表人体面部皮肤中的实际分布。分子在某一皮肤层中被检出,也不等同于全部分子仍保持完整结构或具有相同生物活性。
4 Pal-KTTKS到达活性皮肤层后发生什么
4.1 主要涉及Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原和纤连蛋白
早期KTTKS研究显示,该序列可促进培养成纤维细胞产生Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原和纤连蛋白[1]。
Ⅰ型胶原是真皮中含量较高的纤维型胶原,主要参与组织抗拉和结构支撑。
Ⅲ型胶原常与Ⅰ型胶原共同分布,参与形成较细的网状纤维,并与组织更新和早期修复相关。
纤连蛋白不是胶原蛋白,而是一种细胞外基质黏附糖蛋白。它可以与细胞表面受体、胶原和蛋白聚糖相互作用,参与细胞黏附、迁移及新生基质组织。
2013年的研究进一步观察了C16-KTTKS对人真皮成纤维细胞和人角膜成纤维细胞胶原产生的影响。结果显示,胶原响应与C16-KTTKS浓度及其自组装状态相关[2]。
4.2 TGF-β相关调节可能参与Ⅰ型胶原表达
转化生长因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)是调节成纤维细胞功能和细胞外基质合成的重要细胞因子。
一项大鼠跟腱细胞研究显示,未棕榈酰化KTTKS可提高Ⅰ型胶原蛋白表达,增加α1(Ⅰ)型前胶原和TGF-β的信使核糖核酸表达,并减缓已有α1(Ⅰ)型前胶原信使核糖核酸的降解。培养液中的TGF-β浓度也随KTTKS处理剂量增加[4]。
这一结果支持以下调节关系:
KTTKS处理
→ α1(Ⅰ)型前胶原信使核糖核酸表达及稳定性提高
→ Ⅰ型胶原蛋白表达增加
同时观察到:
TGF-β信使核糖核酸表达及培养液中TGF-β浓度升高
该研究使用大鼠跟腱细胞和未棕榈酰化KTTKS,说明TGF-β相关调节可能参与KTTKS作用,但尚不能据此确认TGF-β升高是前胶原信使核糖核酸稳定性提高的直接原因,也不能直接等同于人体皮肤中Pal-KTTKS已经确定的完整信号通路。
4.3 直接受体与胞内信号通路的研究现状
成纤维细胞可以通过整合素识别胶原、纤连蛋白和其他细胞外基质成分。整合素被激活后,还可调节黏附斑激酶、细胞骨架及丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)等信号网络。
现有Pal-KTTKS核心研究已经观察到胶原产生、胶原表达、细胞收缩和自组装状态等变化,但尚未确认Pal-KTTKS直接结合某一种整合素。公开研究中还缺少以下证据:
①Pal-KTTKS与纯化整合素的直接结合实验;
②明确的受体亚型和结合常数;
③整合素阻断或基因敲低后Pal-KTTKS作用消失;
④Pal-KTTKS与特定受体形成复合物的结构证据。
MAPK广泛参与成纤维细胞增殖、应激反应、胶原表达和基质降解,现有研究也未建立一条已经确认的“Pal-KTTKS—整合素—黏附斑激酶—MAPK”连续通路[1-5]。
5 胶原表达增加如何转化为皮肤外观变化
5.1 新合成前胶原还要经过成熟过程
成纤维细胞提高胶原相关基因或蛋白表达后,新合成的前胶原还需经历多个步骤:
1. 前胶原α链合成;
2. 脯氨酸和赖氨酸残基羟化;
3. 三股螺旋形成;
4. 前胶原分泌到细胞外;
5. N端和C端前肽切除;
6. 胶原分子排列和原纤维组装;
7. 胶原纤维交联;
8. 与基质降解过程重新达到动态平衡。
因此,细胞实验中的胶原表达增加属于基质重塑过程的前段,不代表成熟胶原纤维立即增加。
5.2 皮肤状态取决于合成与降解的净变化
真皮胶原持续处于合成、组装和降解过程中。紫外线、慢性炎症和氧化应激可促进基质金属蛋白酶表达,加快胶原降解。
现有Pal-KTTKS研究主要集中于基质合成相关指标和成纤维细胞表型调节。最终能否产生可测量的结构变化,还取决于:
①新合成前胶原能否完成成熟;
②胶原纤维能否正常组装和交联;
③胶原降解速度是否同时升高;
④皮肤是否持续受到紫外线和炎症刺激;
⑤使用时间是否足以形成基质更新。
6 配方工艺为什么影响实际功效
6.1 原料添加量与活性肽浓度不同
商业多肽原料常以水、甘油、二醇和防腐体系组成的预配液形式供应。配方中加入一定比例的原料液,不代表成品中含有相同比例的Pal-KTTKS。
评价成品中的实际剂量需要区分:
浓度概念 | 含义 |
原料添加量 | 生产时加入配方的多肽原料液比例 |
原料活性肽含量 | 原料液中Pal-KTTKS的实际质量比例 |
成品理论浓度 | 根据原料含量和添加量计算的Pal-KTTKS浓度 |
成品实测浓度 | 生产和储存后检测到的完整Pal-KTTKS浓度 |
皮肤有效浓度 | 从配方释放并到达作用区域的完整可利用分子浓度 |
6.2 自组装改变游离肽比例
Pal-KTTKS含有疏水棕榈酰链和亲水肽链,可形成纳米带、胶束或其他聚集结构。2013年的研究显示,C16-KTTKS的胶原刺激作用与其浓度及自组装行为相关[2]。
在成品中,Pal-KTTKS可能以不同状态存在:游离单分子;小型肽聚集体;纳米带或胶束样结构;吸附在乳化剂聚集体表面;分配在油滴或磷脂双层中;与带电聚合物发生相互作用。
聚集状态可能改变游离肽比例、扩散和释放行为。因此,成品总含量相同,并不表示皮肤可利用度相同,仍需结合具体配方进行验证。
6.3 载体需要兼顾保护和释放
磷脂囊泡、脂质体及其他胶体载体可用于改善Pal-KTTKS的分散和稳定状态。
2024年的研究将N-棕榈酰KTTKS整合进磷脂酰胆碱脂质体膜,并在小鼠成纤维细胞模型中观察到脂质体递送的Pal-KTTKS具有较明显的胶原产生响应[7]。该研究表明,脂质体中的呈递状态可以改变Pal-KTTKS在体外成纤维细胞模型中的胶原产生响应,但尚未直接证明其提高了人体皮肤递送或细胞摄取。
6.4 生产和储存条件需要成品验证
Pal-KTTKS在实际配方中的状态可能受到温度、pH、乳化剂、电解质、增稠聚合物和防腐体系影响。
生产时需要结合原料资料和成品试验确定加料阶段,减少不必要的高温暴露。储存期间则应检测:
①Pal-KTTKS完整分子的剩余含量;
②配方外观和粒径变化;
③沉淀或不可逆聚集;
④与包装材料的相容性;
⑤不同温度和光照条件下的稳定性。
配方外观稳定不能代替活性肽含量、释放能力和皮肤沉积评价。
7 人体研究与实际产品功效
7.1 现有人体研究支持细纹改善潜力
一项随机、双盲、载体对照、左右脸分区研究纳入93名35—55岁女性。受试者连续使用产品12周,一侧面部使用基础保湿配方,另一侧使用含3 ppm Pal-KTTKS的相同基础配方。
3 ppm相当于0.0003%的活性Pal-KTTKS。研究通过定量图像分析、专家评价和受试者自评观察皮肤变化。定量图像分析和专家评价显示,含Pal-KTTKS的配方在部分时间点的细纹和皱纹相关指标上优于基础配方,并表现出良好耐受性[6]。
这项研究说明,在特定配方、剂量和使用周期下,Pal-KTTKS具有改善光老化面部细纹外观的潜力。
同时,这项研究评价的是完整成品,而不是单独的Pal-KTTKS分子。皱纹外观还会受到角质层含水量、表面平整度、皮肤光学性质和真皮结构等多种因素影响。外观改善不能直接换算为人体真皮中某一种胶原增加了多少。
7.2 如何判断一款产品中的Pal-KTTKS
评价含棕榈酰五肽-4的产品时,可以关注以下信息:
①确认具体成分名称。
Palmitoyl Pentapeptide-4与棕榈酰三肽-1、棕榈酰四肽-7、棕榈酰三肽-38属于不同肽序列,不能相互替代。
②区分原料液比例和纯肽浓度。
“添加1%多肽原料”不等于含有1% Pal-KTTKS。
③关注成品研究。
单一原料的细胞实验不能直接代表成品。相同基础配方对照、明确使用周期和仪器测量结果具有较高参考价值。
④结合使用时间判断。
胶原生成、分泌和纤维重塑需要时间。短期保湿带来的皮肤平滑感与长期基质调节应分别评价。
⑤结合防晒和屏障护理。
紫外线可持续促进胶原降解。减少光损伤、维持角质层稳定和调节基质合成共同影响长期皮肤状态。
8 棕榈酰五肽-4结构构建、皮肤递送、胶原基质响应与信号通路研究相关代表化学品分类及科研应用
表1 KTTKS序列构建、棕榈酰化与固相多肽合成相关产品
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
肽链裂解与侧链脱保护试剂 | 76-05-1 | 三氟乙酸(TFA) | 用于蛋白测序, ≥99% | 用于固相多肽合成中的肽链树脂裂解、酸敏感侧链保护基脱除及棕榈酰五肽-4粗肽制备。 | |
KTTKS丝氨酸单体 | 56-45-1 | L-丝氨酸 | 无动物源, USP, Moligand™, 欧洲药典(Ph.Eur), ≥98.5% | 用于KTTKS序列组成、氨基酸对照、肽链水解产物分析及丝氨酸残基相关研究。 | |
N端棕榈酰化原料 | 57-10-3 | 棕榈酸 | 适用于合成, Moligand™ | 用于KTTKS肽链N端C16脂肪酰化、脂质亲和力调控、棕榈酰化反应条件筛选及产物结构确认。 | |
Fmoc脱保护试剂 | 110-89-4 | 哌啶(易制毒) | 生物技术级, ≥99.5% | 用于芴甲氧羰基固相多肽合成中的逐步脱保护及KTTKS肽链延伸。 | |
肽键缩合有机碱 | 7087-68-5 | N,N-二异丙基乙胺 | 精馏级, ≥99.5% | 用于肽键缩合和N端棕榈酰化反应中的碱性调节、酸捕获及反应条件优化。 | |
KTTKS苏氨酸单体 | 72-19-5 | L-苏氨酸 | UltraBio™, 超纯级, ≥99.5%(NT) | 用于KTTKS序列组成、氨基酸对照、肽链水解分析及苏氨酸残基结构研究。 | |
KTTKS赖氨酸单体 | 56-87-1 | L-赖氨酸 | Moligand™, ≥98%, Metal<500ppm | 用于KTTKS序列组成、赖氨酸侧链反应、肽链水解分析及电荷性质研究。 | |
肽键缩合试剂 | 148893-10-1 | O-(7-氮杂苯并三唑-1-基)-N,N,N′,N′-四甲基脲六氟磷酸酯(HATU) | ≥99% | 用于保护氨基酸羧基活化、KTTKS固相肽链缩合及棕榈酸与肽链N端偶联。 | |
丝氨酸保护型砌块 | 71989-33-8 | FMOC-O-叔丁基-L-丝氨酸 | ≥98% | 用于KTTKS固相合成中的C端或内部丝氨酸引入,并保护丝氨酸侧链羟基。 | |
苏氨酸保护型砌块 | 71989-35-0 | Fmoc-O-叔丁基-L-苏氨酸 | ≥98% | 用于KTTKS固相合成中的连续苏氨酸残基构建,并减少侧链羟基参与副反应。 | |
赖氨酸保护型砌块 | 71989-26-9 | Nα-芴甲氧羰基-Nε-叔丁氧羰基-L-赖氨酸 | ≥98% | 用于赖氨酸残基选择性保护、肽链定向延伸及KTTKS序列构建条件研究。 |
表2 胶原、纤连蛋白及细胞外基质成熟与降解研究相关产品
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
Ⅲ型胶原基质模型 | 9007-34-5 | 重组人源化III型胶原蛋白 | 无动物源, 无载体, 重组, ≥90%(SDS-PAGE), expressed in Nicotiana benthamiana | 用于Ⅲ型胶原检测与结构对照、细胞外基质模型构建、成纤维细胞培养及胶原相关分析方法建立。 | |
纤连蛋白基质模型 | 86088-83-7 | Recombinant Human Fibronectin Fragment Protein | 无动物源, 无载体, 生物活性, ActiBioPure™, 高性能, 无菌, His标签, PBS Only, ≥98%(SDS-PAGE) | 用于成纤维细胞黏附、纤连蛋白相关基质响应及细胞包被研究。 | |
胶原变性结构对照 | 9000-70-8 | 明胶 | 适用于微生物学, gel strength ~250 g Bloom | 用于天然胶原与变性胶原结构比较、凝胶形成、基质降解及胶原蛋白物理性质研究。 | |
胶原降解模型酶 | 9001-12-1 | 胶原酶 来源于溶组织梭菌 | 无菌过滤, Type IA-S, 0.5-5.0 FALGPA units/mg solid,≥125 CDU/mg solid | 用于胶原降解、细胞外基质重塑、胶原稳定性评价及多肽处理前后基质耐降解性研究。 | |
胶原氨基酸结构对照 | 147-85-3 | L-脯氨酸 | UltraBio™, ≥99.5% | 用于胶原氨基酸组成、脯氨酸羟化、胶原序列特征及细胞培养营养条件研究。 | |
胶原羟化产物标准 | 51-35-4 | L-羟基脯氨酸 | Moligand™, ≥99% | 用于胶原含量测定、羟脯氨酸标准曲线、胶原降解产物分析及组织基质定量。 | |
胶原羟化辅助因子 | 50-81-7 | L -抗坏血酸 | 无水级, Moligand™, ACS, ≥99% | 用于维持胶原羟化酶活性中心铁离子的还原状态、支持前胶原成熟及成纤维细胞胶原生成研究。 | |
胶原羟化共底物 | 328-50-7 | α-酮戊二酸 | Moligand™, ≥98% | 用于脯氨酰羟化酶和赖氨酰羟化酶反应、前胶原羟化及双加氧酶活性研究。 | |
胶原羟化亚铁离子来源 | 7782-63-0 | 七水硫酸铁(II) | 欧洲药典(Ph.Eur), 适用于分析, ACS, 优级品 | 用于亚铁依赖性胶原羟化酶反应、金属离子条件筛选及前胶原成熟相关酶学研究。 | |
胶原交联铜离子来源 | 7758-99-8 | 五水硫酸铜(II) | 欧洲药典(Ph.Eur), 适用于分析, ACS, 优级品 | 用于赖氨酰氧化酶铜依赖性、胶原和弹性蛋白交联及金属离子条件比较研究。 |
表3 胶原沉积、染色与羟脯氨酸定量分析相关产品
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
羟脯氨酸显色试剂 | 100-10-7 | 对二甲氨基苯甲醛 | ≥98% | 用于羟脯氨酸比色显色、胶原含量测定、细胞培养基质生成及组织胶原定量分析。 | |
胶原染色与定量试剂 | 2610-10-8 | 直接红80 | Dye content 25 % | 用于胶原纤维染色、细胞外基质沉积观察、总胶原半定量及胶原网络形态评价。 | |
羟脯氨酸氧化试剂 | 7080-50-4 | 氯胺T 三水合物 | AR, ≥98%(T) | 用于羟脯氨酸氧化、胶原水解物比色测定及组织或细胞基质胶原含量分析。 |
表4 脂质递送与候选信号通路验证相关产品
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
磷脂载体材料 | 8002-43-5 | 磷脂 来自向日葵(非转基因) | 天然, with ≥60% phosphatidylcholine | 用于棕榈酰五肽-4脂质体、磷脂囊泡和皮肤递送模型构建,以及包载、释放与稳定性研究。 | |
脂质体膜稳定组分 | 57-88-5 | 胆固醇,来自羊毛脂 | PharmPure™, JP, BP, 欧洲药典(Ph.Eur), NF, 超纯级 | 用于调节磷脂膜流动性、脂质体稳定性、棕榈酰五肽-4包载状态及载体释放行为。 | |
转化生长因子-β受体通路验证 | 301836-41-9 | SB-431542 | Moligand™, ≥99% | 用于ALK4、ALK5和ALK7相关信号阻断、胶原表达变化及KTTKS候选作用通路验证。 | |
p38丝裂原活化蛋白激酶通路验证 | 152121-47-6 | SB-203580,p38 MAPK抑制剂 | Moligand™, ≥98%(HPLC) | 用于p38丝裂原活化蛋白激酶相关信号抑制、成纤维细胞应激响应及胶原表达机制研究。 | |
MEK1/2—ERK通路验证 | 109511-58-2 | U0126,MKK抑制剂 | Moligand™, ≥98% | 用于MEK1/2活性抑制、ERK1/2信号阻断、细胞增殖及胶原基质响应候选通路研究。 | |
黏附斑激酶通路验证 | 869288-64-2 | PF-573228,FAK抑制剂 | ≥98% | 用于黏附斑激酶相关信号抑制、成纤维细胞黏附、机械感知及候选基质响应通路验证。 | |
RGD结合型整合素黏附竞争对照肽 | 91037-65-9 | 精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-丝氨酸 | ≥95%(HPLC) | 用于RGD结合型整合素介导的细胞黏附竞争、纤连蛋白识别及评价相关整合素是否参与Pal-KTTKS细胞响应。 |
注:以上为阿拉丁代表性科研及配方研究相关产品,更多产品规格、级别、COA信息可用“品名/CAS/货号”在阿拉丁官网检索。
参考文献
[1] Katayama K, Armendariz-Borunda J, Raghow R, Kang AH, Seyer JM. A pentapeptide from type I procollagen promotes extracellular matrix production. Journal of Biological Chemistry. 1993;268(14):9941–9944. DOI: 10.1016/S0021-9258(18)82153-6.
[2] Jones RR, Castelletto V, Connon CJ, Hamley IW. Collagen stimulating effect of peptide amphiphile C16-KTTKS on human fibroblasts. Molecular Pharmaceutics. 2013;10(3):1063–1069. DOI: 10.1021/mp300549d.
[3] Choi YL, Park EJ, Kim E, Na DH, Shin YH. Dermal stability and in vitro skin permeation of collagen pentapeptides (KTTKS and palmitoyl-KTTKS). Biomolecules & Therapeutics. 2014;22(4):321–327. DOI: 10.4062/biomolther.2014.053.
[4] Tsai WC, Hsu CC, Chung CY, Lin MS, Li SL, Pang JHS. The pentapeptide KTTKS promoting the expressions of type I collagen and transforming growth factor-β of tendon cells. Journal of Orthopaedic Research. 2007;25(12):1629–1634. DOI: 10.1002/jor.20455.
[5] Park H, An E, Cho Lee AR. Effect of Palmitoyl-Pentapeptide (Pal-KTTKS) on Wound Contractile Process in Relation with Connective Tissue Growth Factor and α-Smooth Muscle Actin Expression. Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 2017;14(1):73–80. DOI: 10.1007/s13770-016-0017-y.
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[7] Vitali A, Paolicelli P, Bigi B, Trilli J, Di Muzio L, Carriero VC, Casadei MA, Petralito S. Liposome Encapsulation of the Palmitoyl–KTTKS Peptide: Structural and Functional Characterization. Pharmaceutics. 2024;16(2):219. DOI: 10.3390/pharmaceutics16020219.
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