蛋白激酶与磷酸酶介导的磷酸化平衡、 疾病机制与靶向干预
蛋白激酶与磷酸酶介导的磷酸化平衡、 疾病机制与靶向干预
蛋白激酶和磷酸酶共同调控蛋白质磷酸化状态,进而影响细胞信号、代谢、增殖和应激反应。磷酸化或去磷酸化并不直接等同于蛋白激活或失活,其作用取决于具体修饰位点和信号环境。磷酸化平衡失调可导致异常信号持续,并成为多种疾病的重要干预方向。
关键词:蛋白磷酸化;蛋白激酶;蛋白磷酸酶;酪氨酸激酶;丝氨酸/苏氨酸激酶;SHP2;PTEN;信号转导;靶向治疗;磷酸化检测
1 蛋白质磷酸化与去磷酸化的动态平衡
1.1 蛋白激酶介导的磷酸化
多数丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶和蛋白酪氨酸激酶以三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)为磷酸基团供体,将ATP末端的γ-磷酸基团转移至底物蛋白的特定氨基酸残基。真核细胞中的磷酸化主要发生在丝氨酸、苏氨酸和酪氨酸残基;在原核生物双组分系统中,传感器组氨酸激酶通常先利用ATP完成组氨酸自磷酸化,再将磷酸基团转移至应答调节蛋白的天冬氨酸残基。磷酸基团的引入可改变局部电荷分布、蛋白构象、相互作用界面和亚细胞定位,从而调节蛋白功能。
1.2 蛋白磷酸酶介导的去磷酸化
作用于磷酸化丝氨酸、苏氨酸和酪氨酸残基的蛋白磷酸酶通过水解磷酸单酯键,去除底物上的磷酸基团并恢复游离羟基。磷酸化组氨酸和磷酸化天冬氨酸具有不同的化学键类型,其去磷酸化反应不属于游离羟基的恢复过程。去磷酸化并不是磷酸化的被动逆转,而是由特定磷酸酶、调节亚基、支架蛋白和亚细胞定位共同控制的主动过程。磷酸酶既可终止激酶信号,也可通过去除抑制性磷酸基团促进蛋白激活。
1.3 激酶与磷酸酶的共同调控
细胞内蛋白的磷酸化水平取决于激酶写入磷酸化信号的速率与磷酸酶去除磷酸基团的速率。激酶活性增强、磷酸酶活性降低或底物定位发生改变,均可使磷酸化信号积累;激酶受到抑制或磷酸酶过度活化,则可能造成信号减弱。细胞通过激酶—磷酸酶对、负反馈回路和支架复合物控制信号的强度、持续时间及空间范围。
2 磷酸化是否代表蛋白激活及其判断方法
2.1 磷酸化不等同于激活
磷酸化可能促进蛋白激活,也可能抑制蛋白活性或促进其降解。例如,ERK活化环中特定位点的双磷酸化可增强ERK催化活性,而部分细胞周期蛋白依赖性激酶在抑制性位点磷酸化后活性下降。同一蛋白不同位点的磷酸化还可能产生相反作用,因此不能仅根据磷酸化水平升高判断蛋白被激活。
2.2 去磷酸化不等同于失活
去磷酸化既可终止信号,也可解除抑制。细胞分裂周期蛋白25磷酸酶可去除CDK1上的抑制性磷酸基团,促进CDK1活化和细胞进入有丝分裂;双特异性磷酸酶则可去除ERK活化环上的磷酸基团,使MAPK信号终止。因此,去磷酸化的作用需要结合具体底物和修饰位点判断。
2.3 蛋白激活状态的综合判断
判断蛋白是否真正激活,应同时分析位点特异性磷酸化、总蛋白表达、酶催化活性、下游底物、亚细胞定位和功能表型。只有当激活性磷酸化、下游信号和细胞功能变化相互一致时,才能较可靠地判断蛋白或信号通路被激活。
表1 蛋白磷酸化状态与活性的主要评价方法
评价方法 | 主要检测内容 | 结果解释 |
位点特异性抗体 | 特定氨基酸位点的磷酸化水平 | 需明确该位点属于激活性还是抑制性位点 |
总蛋白检测 | 靶蛋白整体表达水平 | 排除蛋白表达变化造成的磷酸化差异 |
激酶活性测定 | ATP消耗或底物磷酸化 | 直接评价激酶催化能力 |
磷酸酶活性测定 | 磷酸底物水解 | 直接评价去磷酸化能力 |
下游底物检测 | 代表性底物的磷酸化变化 | 判断信号是否继续向下游传递 |
亚细胞定位 | 膜募集、核转位或细胞器定位 | 判断蛋白是否到达功能区域 |
功能实验 | 增殖、凋亡、迁移、代谢等表型 | 验证信号变化是否产生生物学效应 |
磷酸化蛋白质组学 | 大规模磷酸化位点变化 | 分析信号网络及未知调控位点 |
3 蛋白激酶的分类、结构与信号写入机制
3.1 蛋白激酶的主要类型
(1)丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶
丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶主要催化底物丝氨酸或苏氨酸残基磷酸化,代表性成员包括蛋白激酶A、蛋白激酶C、钙/钙调素依赖性蛋白激酶、RAF、AKT、mTOR和ROCK等。
(2)蛋白酪氨酸激酶
蛋白酪氨酸激酶主要催化酪氨酸残基磷酸化,可分为受体型和非受体型。EGFR、VEGFR、PDGFR和MET属于受体酪氨酸激酶,SRC、JAK和ABL等属于非受体型酪氨酸激酶。
(3)双特异性蛋白激酶
双特异性激酶可催化两类以上氨基酸残基磷酸化。MEK1和MEK2可同时磷酸化ERK活化环中的苏氨酸和酪氨酸残基,是MAPK级联中的典型双特异性激酶。
3.2 蛋白激酶的催化结构域
典型蛋白激酶催化结构域约由250~300个氨基酸组成,可分为较小的N端叶和较大的C端叶,两者之间形成ATP结合裂隙。N端叶主要参与ATP定位,C端叶参与底物识别和磷酸基团转移,激活环、DFG基序和催化环共同决定激酶能否形成催化活性构象。
3.3 蛋白激酶的活化方式
蛋白激酶可通过配体结合、受体二聚化、激活环磷酸化、第二信使结合或调节亚基解离实现活化。受体酪氨酸激酶通常在配体结合后发生二聚化和交叉磷酸化。PKA受环磷酸腺苷调节。不同亚型PKC的激活条件不同:经典型PKC通常受二酰甘油、Ca²⁺和膜磷脂共同调控,新型PKC依赖二酰甘油但不依赖Ca²⁺,非典型PKC则不依赖二酰甘油和Ca²⁺。CaMK由Ca²⁺—钙调蛋白复合物激活。
4 蛋白磷酸酶的分类、底物选择与信号重置
4.1 丝氨酸/苏氨酸蛋白磷酸酶
(1)PPP家族
磷蛋白磷酸酶家族包括PP1、PP2A、PP2B、PP4、PP5、PP6和PP7等。其催化亚基通常需要与调节亚基或支架蛋白结合,才能识别特定底物并定位至细胞膜、细胞核、细胞骨架或其他细胞结构。
(2)PPM家族
金属依赖性蛋白磷酸酶家族以PP2C类蛋白为代表,催化过程通常依赖Mg²⁺或Mn²⁺。PPM家族成员一般不依赖PPP家族常见的调节亚基,而是通过自身结构、表达位置和应激状态控制底物选择。
4.2 蛋白酪氨酸磷酸酶
蛋白酪氨酸磷酸酶包括受体型、非受体型及双特异性磷酸酶。部分成员直接去除受体或胞内信号蛋白上的酪氨酸磷酸基团,双特异性磷酸酶则可同时作用于磷酸化的丝氨酸、苏氨酸和酪氨酸残基。
4.3 磷酸酶的底物特异性
许多磷酸酶的催化结构域对底物的直接选择性有限,其特异性更多依赖调节亚基、支架蛋白、底物结合序列和亚细胞定位。磷酸酶复合物组成发生改变,即使催化亚基表达量不变,也可能造成特定信号通路异常。
4.4 PTEN与SHP2的功能差异
PTEN是一种具有脂质磷酸酶活性的肿瘤抑制蛋白,可将磷脂酰肌醇-3,4,5-三磷酸转化为磷脂酰肌醇-4,5-二磷酸,从而限制AKT募集和活化。SHP2由PTPN11基因编码,虽然属于蛋白酪氨酸磷酸酶,却能够促进受体酪氨酸激酶向RAS–MAPK通路传递信号。磷酸酶既可能抑制异常信号,也可能成为促增殖信号所必需的正调控因子。
5 激酶与磷酸酶共同调控的典型信号网络
5.1 EGFR–RAS–MAPK信号轴
EGF与EGFR结合后促进受体二聚化和酪氨酸残基磷酸化,进而募集衔接蛋白并激活RAS、RAF、MEK和ERK。SHP2可促进RAS活化,推动信号向下游传递;部分蛋白酪氨酸磷酸酶可降低EGFR磷酸化水平;DUSP家族则可去除ERK活化环上的磷酸基团。该通路的输出由EGFR、RAF和MEK等激酶与SHP2、DUSP及PP2A等磷酸酶共同决定。

图1 EGFR介导的下游信号转导网络
5.2 PI3K–AKT–mTOR信号轴
受体酪氨酸激酶激活后可募集PI3K并促进PIP3生成,PIP3进一步招募PDK1和AKT至细胞膜,使AKT发生磷酸化并激活mTOR相关信号。PTEN通过去除PIP3上的磷酸基团限制AKT膜募集,PP2A等蛋白磷酸酶还可调节AKT及其他下游蛋白的磷酸化状态。PI3K或AKT活性增强以及PTEN功能缺失均可使该通路持续激活。
5.3 RhoA–ROCK–肌球蛋白信号轴
RhoA激活后可促进ROCK活化,ROCK通过磷酸化肌球蛋白轻链及肌球蛋白磷酸酶调节亚基,提高肌球蛋白轻链磷酸化水平并增强肌动蛋白—肌球蛋白收缩。肌球蛋白轻链磷酸酶负责去除相应磷酸基团,使细胞收缩减弱。该平衡参与血管张力、细胞迁移、黏附和组织纤维化调控。
5.4 糖原磷酸化酶调控轴
糖原磷酸化酶参与糖原分解,其Ser14被磷酸化酶激酶磷酸化后,可由低活性的磷酸化酶b转变为高活性的磷酸化酶a;蛋白磷酸酶1可去除Ser14上的磷酸基团,使其恢复低活性状态。该激酶—磷酸酶平衡决定肝脏和肌肉糖原分解速率,并影响血糖和能量供应。
6 磷酸化平衡失调与疾病发生
6.1 激酶持续活化
受体酪氨酸激酶突变、基因扩增或配体过度产生,可使EGFR、HER2、MET和VEGFR等信号持续激活。RAF、AKT、JAK和ROCK等胞内激酶异常也可绕过正常调控,导致细胞增殖、存活、收缩或炎症信号增强。
6.2 抑制性磷酸酶功能缺失
PTEN缺失可导致PIP3积累和AKT–mTOR信号增强,PP2A功能下降则可使多个激酶底物持续处于磷酸化状态。部分蛋白酪氨酸磷酸酶缺失也可延长受体酪氨酸激酶信号。此类异常并非由激酶本身改变引起,而是由去磷酸化能力下降造成。
6.3 促信号磷酸酶异常活化
部分磷酸酶具有促进信号传递的作用。SHP2可促进RAS–MAPK信号,PTPN11激活突变或SHP2异常活化可增强细胞增殖和存活。因此,磷酸酶不能被统一视为信号抑制因子,其功能取决于底物、通路位置和细胞环境。
6.4 信号重编程与药物耐受
长期抑制单一激酶后,细胞可通过上游受体反馈激活、旁路激酶增强、磷酸酶表达改变或支架复合物重组恢复下游信号。例如,抑制EGFR后可出现MET或HER2信号增强,抑制MEK后也可能引起受体酪氨酸激酶反馈激活。耐药研究因此需要同时评价激酶和磷酸酶网络。
7 蛋白激酶的靶向干预策略
7.1 ATP竞争性抑制
ATP竞争性抑制剂通过占据激酶ATP结合口袋,阻止ATP参与磷酸基团转移。由于不同激酶的ATP结合区域具有一定相似性,该类药物需要兼顾抑制活性和靶点选择性。
7.2 共价抑制与变构抑制
共价抑制剂可与激酶结合口袋附近的特定氨基酸残基形成稳定共价键,延长靶点占据时间。变构抑制剂则结合ATP口袋之外的调节区域,稳定非活性构象或阻止构象转换。两类策略均可提高对特定激酶构象或突变形式的选择性。
7.3 双靶点与多靶点抑制
双靶点或多靶点化合物可同时阻断多个相互关联的激酶节点,减少部分旁路补偿,但也可能增加非靶向效应。研究中应同步检测主要靶点、下游信号和细胞功能,避免仅依据单一靶点抑制判断药物作用。
7.4 激酶激活与功能恢复
并非所有疾病研究都以激酶抑制为目标。在能量代谢和应激调控研究中,也可通过激活AMPK等保护性激酶恢复能量稳态。激酶激活剂与激酶抑制剂的选择取决于目标蛋白在具体疾病中的功能方向。
8 蛋白磷酸酶的成药难点与新型干预策略
8.1 活性位点抑制的局限
磷酸酶活性中心需要识别带负电荷的磷酸底物,因此能够直接结合活性中心的化合物通常极性较强,可能存在细胞膜通透性不足和生物利用度较低等问题。同一家族磷酸酶的催化结构还可能高度相似,增加选择性抑制的难度。
8.2 磷酸酶别构抑制
别构抑制剂可结合催化位点之外的调节区域,稳定磷酸酶的非活性构象或阻止构象转换。该策略避免直接竞争高度极性的催化口袋,并可利用不同磷酸酶之间的结构差异提高选择性。
8.3 恢复抑制性磷酸酶功能
对于PTEN、PP2A等具有信号抑制作用的磷酸酶,干预目标通常不是进一步抑制,而是恢复其表达、复合物组装或催化功能。相关策略包括阻断抑制蛋白、稳定调节亚基及促进功能性磷酸酶复合物形成。
8.4 靶向磷酸酶复合物和定位
磷酸酶的底物特异性往往由调节亚基和亚细胞定位决定。通过干预磷酸酶与调节亚基、支架蛋白或底物之间的相互作用,可选择性改变特定信号,而不必完全抑制催化亚基,从而减少广泛改变细胞磷酸化网络造成的非特异性影响。
9 激酶、磷酸酶及磷酸化研究相关产品
9.1 蛋白激酶信号调节产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品类别 | 主要靶点或作用对象 | 主要研究方向 |
A-769662,AMP激活蛋白激酶激活剂 | Moligand™,≥98% | 激酶激活剂 | AMPK | 能量感应、代谢调控及AMPK信号研究 | |
Bryostatin 1,蛋白激酶C激活剂 | ≥98% | 激酶激活剂 | PKC | PKC活化、细胞增殖及信号转导研究 | |
A66,PI3K p110α抑制剂 | ≥98% | 激酶抑制剂 | PI3K p110α | PI3K–AKT信号及PIK3CA相关研究 | |
GSK690693,ATP竞争性泛AKT激酶抑制剂 | Moligand™,≥98% | ATP竞争性激酶抑制剂 | AKT家族 | AKT信号、细胞存活及耐药机制研究 | |
PD153035,EGFR酪氨酸激酶抑制剂 | ≥98% | 受体酪氨酸激酶抑制剂 | EGFR | EGFR自磷酸化及下游信号研究 | |
酪氨酸激酶抑制剂AG 1478 | ≥98% | 受体酪氨酸激酶抑制剂 | EGFR | EGFR活化、下游信号及细胞增殖研究 | |
GW5074,c-Raf1激酶抑制剂 | Moligand™,≥97% | 丝氨酸/苏氨酸激酶抑制剂 | c-Raf1 | RAF–MEK–ERK级联及MAPK信号研究 | |
司美替尼硫酸盐,MEK1/2抑制剂 | ≥99% | 双特异性激酶抑制剂 | MEK1、MEK2 | ERK活化、MAPK通路及反馈调控研究 | |
Thiazovivin,Rho激酶抑制剂 | ≥99% | 激酶抑制剂 | ROCK | 细胞骨架、细胞收缩、迁移及干细胞培养研究 | |
KN-62,CaM激酶Ⅱ抑制剂 | Moligand™,≥98% | 激酶抑制剂 | CaMKⅡ | Ca²⁺依赖性信号及CaMKⅡ功能研究 | |
KN-93,细胞渗透性CaM激酶Ⅱ抑制剂 | Moligand™,≥98% | 细胞渗透性激酶抑制剂 | CaMKⅡ | CaMKⅡ活化、钙信号及底物磷酸化研究 | |
KT5720,蛋白激酶A抑制剂 | Moligand™,≥97%(HPLC) | 激酶抑制剂 | PKA | cAMP–PKA信号及底物磷酸化研究 | |
PP2,Src和RIP2激酶抑制剂 | Moligand™,≥98% | 酪氨酸激酶抑制剂 | Src、RIP2 | Src家族信号、免疫及细胞黏附研究 | |
TPCA-1,IκB激酶抑制剂 | Moligand™,≥98% | 激酶抑制剂 | IKK | NF-κB活化及炎症信号研究 | |
磷酸化酶激酶 | — | 活性酶 | 糖原磷酸化酶调控体系 | 糖原磷酸化酶活化及糖原分解研究 |
9.2 蛋白磷酸酶信号调节产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品类别 | 主要靶点或作用对象 | 主要研究方向 |
BML-267,蛋白酪氨酸磷酸酶1B抑制剂 | Moligand™,≥95% | 磷酸酶抑制剂 | PTP1B | 胰岛素信号、代谢调控及受体去磷酸化研究 | |
BVT 948,酪氨酸磷酸酶抑制剂 | ≥99% | 蛋白酪氨酸磷酸酶抑制剂 | PTP家族 | 酪氨酸磷酸化水平及受体信号研究 | |
CDC25磷酸酶抑制剂Ⅰ,BN82002 | ≥97% | 双特异性磷酸酶抑制剂 | CDC25 | CDK活化、细胞周期及有丝分裂研究 | |
NSC 95397,CDC25双特异性磷酸酶抑制剂 | ≥97%(HPLC) | 双特异性磷酸酶抑制剂 | CDC25 | 抑制性磷酸基团去除及细胞周期研究 | |
GSK 2830371,Wip1磷酸酶变构抑制剂 | Moligand™,≥96% | 磷酸酶变构抑制剂 | Wip1/PPM1D | DNA损伤应答、p53信号及变构调控研究 | |
RK-682,蛋白酪氨酸磷酸酶抑制剂 | ≥95% | 蛋白酪氨酸磷酸酶抑制剂 | PTP家族 | 酪氨酸磷酸化积累及信号调控研究 | |
RWJ-60475(AM)3,CD45酪氨酸磷酸酶抑制剂 | ≥95% | 磷酸酶抑制剂 | CD45 | 淋巴细胞受体信号及免疫细胞活化研究 | |
Sal003,eIF2α磷酸酶抑制剂 | ≥98% | 磷酸酶复合物抑制剂 | eIF2α去磷酸化体系 | 整合应激反应及蛋白质翻译调控研究 | |
INCA-6,钙调神经磷酸酶-NFAT相互作用抑制剂 | ≥97% | 蛋白相互作用抑制剂 | Calcineurin–NFAT复合物 | Ca²⁺依赖性免疫信号及NFAT核转位研究 |
9.3 激酶与磷酸酶活性检测产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品类别 | 主要靶点或检测对象 | 主要研究方向 |
ATP-γ-S,激酶底物 | ≥80% | 硫代磷酸基团供体类似物 | 激酶催化反应 | 激酶底物标记、硫代磷酸化及酶活研究 | |
MAP激酶底物(MBP) | ≥95%(HPLC) | 激酶底物 | MAPK及相关激酶 | MAPK活性及底物磷酸化研究 | |
RR-SRC,蛋白酪氨酸激酶底物 | — | 肽底物 | Src及相关酪氨酸激酶 | 蛋白酪氨酸激酶活性测定 | |
DiFMUP,荧光磷酸酶底物 | ≥98% | 荧光磷酸酶底物 | 多类磷酸酶 | 磷酸酶活性测定及抑制剂筛选 | |
钙调神经磷酸酶底物 | ≥97%(HPLC) | 磷酸酶底物 | Calcineurin | 钙调神经磷酸酶活性测定 | |
人磷酸化TANK结合激酶1(P-TBK1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 磷酸化蛋白检测试剂盒 | p-TBK1 | 先天免疫、干扰素及TBK1信号研究 | |
人磷酸化布鲁顿酪氨酸激酶(P-BTK)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 磷酸化蛋白检测试剂盒 | p-BTK | B细胞受体及BTK信号研究 | |
人磷酸化蛋白激酶C(P-PKC)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 磷酸化蛋白检测试剂盒 | p-PKC | PKC活化及下游信号研究 | |
人磷酸化酪氨酸激酶(P-JAK2)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 磷酸化蛋白检测试剂盒 | p-JAK2 | JAK–STAT通路及细胞因子信号研究 |
9.4 蛋白提取与磷酸化状态保护产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品类别 | 主要靶点或作用对象 | 主要研究方向 |
磷酸酶抑制剂混合物(50×) | BioReagent,通用型,不含EDTA,50× | 磷酸酶抑制剂混合物 | 多类蛋白磷酸酶 | 裂解过程中维持蛋白磷酸化状态 | |
磷酸酶抑制剂混合物(100×) | BioReagent,用于蛋白分析和Western blot,100× | 磷酸酶抑制剂混合物 | 多类蛋白磷酸酶 | Western blot及磷酸化蛋白分析 | |
蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物 | BioReagent,通用型,质谱兼容,50× | 蛋白酶/磷酸酶复合抑制剂 | 蛋白酶及磷酸酶 | 质谱样品制备及磷酸化蛋白质组研究 | |
蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物 | BioReagent,不含EDTA,用于蛋白分析和Western blot,100× | 蛋白酶/磷酸酶复合抑制剂 | 蛋白酶及磷酸酶 | 蛋白提取、免疫印迹及磷酸化保护 | |
蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物 | BioReagent,哺乳动物样品抽提用,50× | 样品专用复合抑制剂 | 哺乳动物蛋白提取体系 | 哺乳动物细胞和组织样品处理 | |
蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物 | BioReagent,植物样品抽提用,50× | 样品专用复合抑制剂 | 植物蛋白提取体系 | 植物磷酸化蛋白研究 | |
蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物 | BioReagent,真菌或酵母抽提用,50× | 样品专用复合抑制剂 | 真菌和酵母蛋白提取体系 | 真菌和酵母磷酸化信号研究 | |
蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物 | BioReagent,细菌抽提用,50× | 样品专用复合抑制剂 | 细菌蛋白提取体系 | 原核生物磷酸化及双组分信号研究 | |
蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物 | BioReagent,通用型,50× | 通用复合抑制剂 | 多类蛋白酶和磷酸酶 | 常规蛋白提取与磷酸化状态保护 |
9.5 激酶化合物筛选产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品类别 | 主要靶点或作用对象 | 主要研究方向 |
激酶抑制剂库 | — | 化合物库 | 多类蛋白激酶、脂质激酶及相关靶点 | 激酶靶点筛选、联合用药及耐药机制研究 | |
酪氨酸激酶抑制剂库 | — | 化合物库 | 受体型及非受体型酪氨酸激酶 | 酪氨酸激酶通路及高通量药物筛选 |
蛋白激酶与磷酸酶共同决定磷酸化信号的强度和持续时间。相关研究应结合具体磷酸化位点、上下游通路及功能表型,综合判断靶点状态和干预效果。
参考文献
[1] Nishi H, Shaytan A, Panchenko AR. Physicochemical mechanisms of protein regulation by phosphorylation. Front Genet. 2014;5:270.
[2] Shi Y. Serine/threonine phosphatases: mechanism through structure. Cell. 2009;139(3):468-484.
[3] Tonks NK. Protein tyrosine phosphatases: from genes, to function, to disease. Nat Rev Mol Cell Biol. 2006;7(11):833-846.
[4] Cohen P. Protein kinases—the major drug targets of the twenty-first century. Nat Rev Drug Discov. 2002;1(4):309-315.
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[1] 蛋白激酶C异构体分析实验
[2] 磷酸化与磺酸化修饰多肽
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