药物如何递送?脂质纳米颗粒
药物如何递送?脂质纳米颗粒
mRNA、siRNA等核酸分子易受核酸酶降解、难以跨越细胞膜,并可能在内吞后滞留于内体。脂质纳米颗粒(lipid nanoparticle,LNP)通过核酸包封、颗粒化运输和内体逃逸建立胞质递送通路,其中可电离脂质、辅助磷脂、胆固醇和PEG脂质分别承担不同功能,并共同决定递送效率、稳定性和组织分布。
关键词:脂质纳米颗粒;LNP;mRNA递送;siRNA递送;可电离脂质;内体逃逸;PEG脂质
1 LNP解决的核酸递送问题
1.1 核酸药物的主要递送屏障
(1)胞外降解与清除
裸露DNA和RNA具有较高亲水性和负电荷,容易受到体液中核酸酶降解,也可能与血浆蛋白及先天免疫识别系统发生相互作用。LNP通过脂质-核酸组装减少核酸与胞外环境的直接接触,使原本易降解的核酸转化为能够在生物环境中运输的纳米颗粒载荷。
(2)细胞膜阻隔
核酸分子难以直接跨越疏水性细胞膜。LNP可通过颗粒表面性质、进入体液后形成的蛋白冠以及不同细胞内吞途径促进颗粒摄取,使mRNA、siRNA等大分子获得进入细胞的通道,但这一过程只能解决“进入细胞”的问题,不能代表核酸已经到达胞质。
(3)内体滞留
LNP经内吞进入早期内体后,会随内体成熟进入更酸性的胞内区室。如果载荷不能及时逃逸,颗粒可能继续进入晚期内体和溶酶体,核酸最终发生降解。对主要在胞质发挥作用的mRNA和siRNA而言,内体逃逸是决定功能性递送效率的重要限制步骤。
1.2 脂质体与核酸LNP的技术边界
(1)经典脂质体
经典脂质体通常由一个或多个脂质双层围成水相空间,亲水性分子可包封于内部水相,疏水性分子可进入脂质双层疏水区。其主要设计重点包括药物包封、膜稳定性、循环时间和组织暴露,适用于多种小分子、蛋白质及部分核酸载荷。
(2)核酸LNP
现代核酸LNP通常由可电离脂质、辅助磷脂、胆固醇和PEG脂质共同组装,内部不一定形成典型的中空双层囊泡,而可形成复杂的脂质-核酸复合结构。其设计重点进一步转向核酸结合、颗粒自组装、体内运输、内体逃逸和胞质释放,因此不能简单将核酸LNP等同于经典脂质体。
表1 脂质体与核酸LNP的主要差异
比较维度 | 经典脂质体 | 核酸递送LNP |
主要结构特征 | 脂质双层围成水相空间 | 复杂脂质-核酸纳米结构 |
主要载荷 | 小分子、蛋白质及部分核酸 | mRNA、siRNA等核酸 |
关键材料 | 磷脂、胆固醇、PEG脂质等 | 可电离脂质、辅助磷脂、胆固醇、PEG脂质 |
核心技术问题 | 包封、膜稳定性、药代动力学 | 核酸包封、内吞、内体逃逸、胞质释放 |
代表性应用 | 脂质体小分子药物 | siRNA药物、mRNA疫苗及mRNA治疗 |
2 LNP四类核心脂质的功能分工
2.1 可电离脂质:核酸包封与内体逃逸
(1)pH依赖性电荷转换
DOTAP、DOTMA等永久阳离子脂质在生理条件下持续带正电,能够与带负电的核酸形成复合物,但持续正电荷也会增强与血浆蛋白和细胞膜的非特异性相互作用。可电离脂质利用可质子化胺基实现动态电荷调节,在接近生理pH时整体电荷趋近中性,在酸性环境中重新获得正电荷,从而兼顾核酸结合、生物相容性与胞内膜作用。
(2)酸性条件下的核酸包封
LNP通常在偏酸性条件下完成快速组装,此时可电离脂质被质子化,与核酸磷酸骨架形成静电相互作用并促进mRNA或siRNA进入颗粒内部。颗粒形成并转入接近生理pH的环境后,可电离脂质的净正电荷降低,可减少循环阶段持续阳离子表面带来的非特异性作用。
(3)内体环境中的膜扰动
LNP进入酸化内体后,可电离脂质再次质子化,并与内体膜中的阴离子磷脂发生更强相互作用。形成的脂质离子对可改变局部膜脂几何排列和膜曲率,使稳定双层结构趋于不稳定,为核酸进入胞质提供条件。可电离脂质由此同时参与“装载核酸”和“释放核酸”两个关键阶段。
2.2 辅助磷脂:颗粒骨架与膜相行为
(1)稳定型辅助磷脂
DSPC等饱和磷脂具有较高膜有序性,可参与LNP脂质结构形成并提高颗粒稳定性。脂肪链长度、饱和程度及相变特性会影响疏水区紧密程度,进而改变颗粒刚性、膜流动性和储存稳定性。
(2)融合型辅助磷脂
DOPE等磷脂酰乙醇胺类脂质具有较明显的非双层相倾向,更容易形成高曲率结构,可影响脂质颗粒与内体膜之间的融合和膜重排。辅助磷脂的选择需要在颗粒稳定性和膜动态性之间建立平衡。
2.3 胆固醇:脂质填充与膜流动性
胆固醇可插入其他脂质的疏水链区域,填充分子之间的空间并调节膜流动性、脂质堆积和颗粒致密程度。适宜的胆固醇含量有利于维持LNP结构完整性并降低载荷泄漏;改变甾醇骨架或引入不同官能团,还可进一步调节膜电荷、曲率、内部结构和体内分布。
2.4 PEG脂质:粒径控制与表面界面
(1)控制颗粒生长
PEG脂质由疏水锚定结构和亲水PEG链组成,脂质端嵌入颗粒,PEG链伸向水相形成空间位阻,从而限制颗粒继续融合和生长。PEG脂质比例过低容易增加聚集和粒径分布宽度,而比例过高则可能形成较强表面屏障,降低颗粒与细胞膜之间的有效相互作用。
(2)调节胶体与循环稳定性
PEG层可降低颗粒之间的直接接触和部分蛋白质非特异性吸附,从而改善分散稳定性和循环行为。PEG链长度、脂质锚定结构及其在颗粒表面的保留时间会共同影响这一作用,不同PEG脂质不能简单视为等效材料。
(3)构建功能化表面
DSPE-PEG-MAL、DSPE-PEG-NH2等材料在PEG末端保留可进一步反应的官能团,可用于连接多肽、蛋白质或其他靶向配体。此类材料使PEG层由单纯的空间稳定界面扩展为表面功能化和主动靶向平台。
表2 LNP四类核心脂质的功能分工
组分 | 主要解决的问题 | 核心作用 |
可电离脂质 | 核酸如何装载、如何从内体释放 | 酸性条件结合核酸,内体环境中促进膜扰动 |
辅助磷脂 | 颗粒如何保持适宜膜结构 | 调节膜稳定性、流动性和曲率 |
胆固醇 | 脂质结构如何稳定堆积 | 填充脂质结构并调节膜流动性 |
PEG脂质 | 颗粒如何控制大小和减少聚集 | 限制颗粒融合、调节表面界面并提供功能化位点 |
3 LNP从制备到胞质释放的完整递送链
3.1 酸性快速混合与颗粒组装
(1)颗粒成核
核酸通常置于酸性水相,可电离脂质、辅助磷脂、胆固醇和PEG脂质则溶于适宜有机相。两相快速混合后,质子化可电离脂质首先与核酸结合,疏水脂质同步发生聚集和自组装,形成脂质-核酸纳米结构。
(2)颗粒生长
混合速度、两相流量比、总脂质浓度、核酸浓度及PEG脂质比例共同控制颗粒成核和后续生长。工艺条件变化会直接反映为粒径、PDI、包封率和内部结构差异,因此相同脂质配方并不必然形成相同递送性能。
3.2 体内运输与细胞摄取
(1)蛋白冠形成
LNP进入体液后会迅速吸附血浆蛋白、脂蛋白及其他生物分子,形成动态蛋白冠。实际参与组织分布和细胞识别的界面由原始脂质表面与吸附生物分子共同组成,因此脂质组成不仅改变颗粒本身,也会间接改变其生物界面。
(2)细胞内吞
颗粒到达组织后可通过不同内吞途径进入细胞,摄取效率受粒径、表面性质、脂质组成、蛋白冠和细胞类型共同影响。单纯提高细胞内颗粒量只能说明内吞增加,不能直接说明mRNA表达或siRNA沉默效率同步提高。
3.3 内体逃逸:功能性递送的关键步骤
(1)内体酸化
随着内体成熟,腔内pH逐渐降低,可电离脂质重新发生质子化并增强与阴离子内体膜脂之间的相互作用。该阶段是可电离脂质由相对中性循环状态重新转变为膜活性状态的关键节点。
(2)脂质离子对与膜重排
质子化可电离脂质与阴离子磷脂形成离子对后,可改变局部脂质分子的有效几何形状和膜曲率,使原有稳定双层产生高曲率或非双层排列。局部膜完整性下降后,颗粒载荷获得跨越内体膜进入胞质的机会。
(3)核酸进入胞质
mRNA成功进入胞质后可被核糖体翻译,siRNA则进入RNA干扰相关分子机器。真正决定LNP功能性递送的不是颗粒是否被细胞摄取,而是完整核酸中有多少能够越过内体膜并保持生物活性。
3.4 细胞摄取与有效递送的层级判读
颗粒摄取、内体逃逸、胞质有效载荷和最终功能输出属于不同递送层级。细胞内LNP信号增加只能证明颗粒摄取量提高,不能据此推断内体逃逸效率、胞质完整核酸量或最终mRNA表达和siRNA沉默效应。LNP评价应针对不同递送层级设置相应指标,避免以单一颗粒摄取读数替代功能性递送结果。
4 决定LNP递送效率的关键参数
4.1 可电离脂质结构与pKa
(1)头基电离行为
可电离胺基的化学环境决定脂质的表观pKa。pKa过高可能使脂质在循环环境中保留较多正电荷,增加非特异性相互作用;pKa过低则可能导致内体环境中的质子化不足。适宜的电离窗口需要兼顾酸性组装、生理条件稳定和内体膜活化三个阶段。
(2)疏水尾链
尾链长度、不饱和程度、数量和支化方式决定脂质疏水堆积和分子几何形状。不饱和键或支链可改变膜流动性和曲率倾向,并进一步影响颗粒结构和内体膜扰动能力,但膜活性提高并不意味着颗粒稳定性一定同步提高。
(3)连接结构
头基与疏水尾之间的连接基团影响脂质柔性、稳定性和代谢过程。引入可水解或可代谢结构有利于递送完成后的材料清除,但降解过快又可能影响制剂储存和体内运输,需要在稳定性与可代谢性之间平衡。
4.2 辅助脂质与胆固醇
(1)辅助脂质相行为
DSPC、DOPE、DOPC等不同辅助脂质具有明显不同的链饱和度、头基结构和相变行为。高有序辅助脂质有利于稳定颗粒,而具有较强非双层相倾向的脂质可提高膜重排能力,配方需要根据核酸类型和内体释放需求选择。
(2)胆固醇比例与结构
胆固醇能够提高脂质堆积完整性并调节膜流动性,但比例变化会同步改变颗粒刚性、载荷泄漏和膜融合行为。胆固醇衍生物还可通过不同极性基团和分子几何结构进一步改变LNP内部组织和生物分布。
4.3 PEG比例的双向影响
PEG脂质增加通常能够限制颗粒生长和聚集,使平均粒径下降并改善PDI,同时增强胶体稳定性;当表面PEG密度过高时,空间屏障又可能限制LNP与细胞膜和内体膜接触,导致颗粒稳定性提高但有效递送下降。PEG含量的优化本质上是在制剂稳定性与生物膜相互作用之间建立平衡。
4.4 粒径、PDI与包封率
粒径和PDI反映颗粒尺寸及其均一性,并影响组织分布、细胞摄取和制剂重复性;高包封率则有利于降低游离核酸暴露。高包封率并不能替代功能性评价,LNP性能还需要结合核酸完整性、颗粒稳定性、细胞摄取、内体逃逸以及最终表达或沉默结果综合判断。
5 LNP在药物递送中的代表性应用
5.1 siRNA递送
siRNA容易受到核酸酶降解,并因带负电荷而难以直接跨越细胞膜。LNP可同时提高siRNA胞外稳定性和胞内递送能力,使其进入胞质后参与RNA干扰;Patisiran的临床应用验证了可电离脂质LNP在系统性siRNA递送中的可行性,也建立了现代核酸LNP的重要技术基础。
5.2 mRNA疫苗与mRNA治疗
mRNA无需进入细胞核,但必须保持完整并进入胞质才能被核糖体翻译。mRNA-LNP需要连续完成载荷保护、颗粒化运输、组织分布、细胞摄取和内体逃逸,COVID-19 mRNA疫苗的大规模应用进一步验证了可电离脂质、辅助磷脂、胆固醇和PEG脂质四组分体系在mRNA递送中的技术成熟度。
5.3 小分子脂质递送
PEG化脂质体阿霉素属于经典脂质体药物而非典型核酸LNP,其主要作用是通过脂质体包封改变阿霉素的药代动力学和组织暴露。该应用体现了脂质纳米载体在小分子递送中的技术基础,也说明经典脂质体与现代核酸LNP在载荷性质、内部结构和胞内释放目标方面存在明显差异。
6 LNP制备、膜调控与示踪相关产品
6.1 可电离、阳离子及PEG功能脂质
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品介绍 | LNP中的作用/研究应用 |
ALC-0315 | Moligand™, ≥98% | 一种含可质子化胺基的可电离脂质,可随环境pH改变电荷状态 | 用于mRNA-LNP组装、核酸包封及内体逃逸相关研究 | |
D-Lin-MC3-DMA,阳离子脂质 | ≥98% | 一种经典核酸递送可电离脂质,在酸性环境中可增强与核酸及膜脂的相互作用 | 用于siRNA等核酸LNP构建及pH响应递送研究 | |
1,2-二油酰基-3-三甲基铵丙烷氯化物 (DOTAP) | Moligand™, ≥99% | 一种永久阳离子脂质,可通过季铵盐正电荷与核酸形成复合物 | 用于DNA/RNA复合、阳离子脂质体及转染体系构建 | |
1,2-双十八烯氧基-3-甲基铵丙烷 氯盐(DOTMA ) | ≥98% | 一种具有双疏水链和季铵盐头基的阳离子醚脂质 | 用于核酸复合、阳离子脂质颗粒及转染研究 | |
三甲基[2,3-(二油烯基氧基)丙基]氯化铵 | ≥90% | 一种双疏水链季铵盐型阳离子脂质 | 用于脂质颗粒表面正电荷及核酸复合能力调节 | |
双十八烷基二甲基溴化铵 | ≥98% | 一种具有两条长链疏水基团的季铵盐阳离子脂质 | 用于阳离子脂质膜组装、表面电荷及核酸复合研究 | |
十八胺 | ≥97%(GC) | 一种含C18疏水链和末端伯胺的长链胺 | 用于脂质膜胺化、表面电荷调节及功能化研究 | |
ALC-0159 | Moligand™, ≥98% | 一种具有疏水锚定部分和亲水PEG链的PEG脂质 | 用于LNP粒径控制、抑制聚集和表面PEG层构建 | |
MPEG2000-DSPE钠盐 | MW 2000 Da | 一种DSPE锚定型PEG2000磷脂,可插入脂质颗粒表面 | 用于PEG化脂质体、LNP表面稳定及循环性质调节 | |
DSPE PEG Maleimide, DSPE-PEG-MAL | MW 2000 Da | 一种末端含马来酰亚胺基团的功能化PEG磷脂 | 用于连接含巯基多肽、蛋白或其他配体并构建功能化表面 | |
二硬脂酰基磷脂酰乙醇胺 PEG 胺, DSPE-PEG-NH2 | MW 2000 Da | 一种末端带氨基的DSPE-PEG功能脂质 | 用于LNP或脂质体表面偶联和靶向修饰 |
6.2 辅助磷脂、胆固醇及膜性质调节材料
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品介绍 | LNP中的作用/研究应用 |
1,2-二硬脂酰基-sn-丙三基-3-磷酸胆碱(DSPC) | Moligand™, ≥99% | 一种具有两条饱和C18脂肪链的磷脂酰胆碱 | 常作为LNP辅助磷脂,用于提高颗粒结构稳定性 | |
1,2-二油酰基-sn-丙三基-3-磷脂酰乙醇胺(DOPE) | ≥99%, 10 mg phospholipid per ml CHCl3,TLC | 一种具有两条不饱和脂肪链的磷脂酰乙醇胺,具有较强非双层相倾向 | 用于膜曲率、膜融合及内体膜扰动研究 | |
1,2-二硬脂酰基-sn-丙三基-3-磷脂酰乙醇胺(DSPE) | ≥97% | 一种具有双C18饱和链的磷脂酰乙醇胺,具有较强膜锚定能力 | 用于脂质体结构及PEG功能脂质骨架研究 | |
1,2-二棕榈酰基-sn-丙三基-3-和磷酸乙氨醇 (DPPE) | Moligand™, ≥99% | 一种具有双C16饱和链的磷脂酰乙醇胺 | 用于膜结构、辅助脂质和表面功能化研究 | |
1,2-二肉豆蔻酰-sn-丙三基-3-磷脂酰乙醇胺 | ≥98% | 一种具有双C14脂肪链的磷脂酰乙醇胺 | 用于比较脂肪链长度对膜流动性和相行为的影响 | |
1,2-二油酰基-sn-甘油-3-磷酸胆碱 | Moligand™, ≥99% | 一种含不饱和脂肪链、膜流动性较高的磷脂酰胆碱 | 用于流动型脂质膜、脂质体和配方比较研究 | |
1-棕榈酰基-2-油酰基-sn-甘油-3-磷酸胆碱(POPC) | ≥99% | 一种同时含饱和和不饱和脂肪链的磷脂酰胆碱 | 用于模拟生物膜并调节脂质膜流动性 | |
二肉豆蔻酰磷脂酰胆碱(DMPC) | ≥99% | 一种具有C14饱和脂肪链的磷脂酰胆碱 | 用于膜相变、流动性和脂质颗粒结构研究 | |
二棕榈酰磷脂酰胆碱 | Moligand™, 10 mM in Ethanol | 一种具有C16饱和脂肪链的磷脂酰胆碱 | 用于脂质体、模型膜及磷脂相变研究 | |
L-α-磷脂酰胆碱 (鸡蛋) | 天然, ≥95% | 一种天然来源磷脂酰胆碱混合物 | 用于传统脂质体和天然磷脂膜体系构建 | |
氢化磷脂酰胆碱(HSPC) 来自非转基因大豆 | 天然, ≥90% | 一种经氢化处理的大豆来源磷脂酰胆碱,脂肪链饱和程度较高 | 用于构建稳定性较高的脂质膜和脂质体体系 | |
胆固醇 | 用于细胞培养, ≥99%(GC) | 一种天然甾醇,可嵌入磷脂疏水区并调节脂质排列 | 用于调节LNP膜流动性、致密程度和结构稳定性 | |
胆固醇半琥珀酸酯(CHEMS) | Moligand™, ≥97% | 一种带半琥珀酸结构的胆固醇衍生物 | 用于膜电荷、pH响应和脂质相行为调控研究 | |
1,2-二油酰基-sn-甘油-3-磷酸-L-丝氨酸(钠盐)(DOPS) | Moligand™, ≥99% | 一种带负电荷的不饱和磷脂酰丝氨酸 | 用于构建阴离子膜环境及研究阳离子脂质-膜相互作用 | |
1,2-二硬脂酰基-sn-甘油-3-磷酸-(1'-rac-甘油)(钠盐) | ≥97% | 一种长链饱和阴离子磷脂酰甘油 | 用于调节脂质颗粒表面负电荷和膜稳定性 | |
1,2-二棕榈酰-sn-甘油-3-磷酸-rac-(1-甘油) 钠盐 | ≥99%(TLC) | 一种具有双C16饱和链的阴离子磷脂酰甘油 | 用于脂质体表面电荷和膜相行为研究 | |
1,2-二油酰基-sn-甘油-3-磷酰-rac-(1-甘油) 钠盐 | ≥99% | 一种具有不饱和脂肪链的阴离子磷脂 | 用于流动型阴离子膜、膜融合及电荷效应研究 | |
1,2-二油酰基-sn-甘油-3-磷酸酯(钠盐) (18:1 PA) | ≥99% | 一种具有较小极性头基和不饱和脂肪链的磷脂酸 | 用于膜曲率、阴离子膜脂和脂质重排研究 |
6.3 LNP示踪、膜定位与释放评价产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品介绍 | LNP中的作用/研究应用 |
1,1'-双十八烷基-3,3,3',3'-四甲基吲哚菁高氯酸盐(DiI) | 适用于荧光分析, ≥98% | 一种具有长疏水链的亲脂性碳菁荧光染料,可插入脂质膜 | 用于LNP膜标记、细胞摄取和颗粒示踪 | |
3,3'-二十八烷基氧杂碳菁高氯酸盐 | ≥98% | 一种亲脂性氧杂碳菁荧光探针,可分布于脂质膜疏水区域 | 用于脂质膜标记、颗粒摄取和膜定位研究 | |
DiA(细胞膜绿色荧光探针) |
| 一种绿色亲脂性细胞膜荧光探针,可嵌入脂质膜 | 用于LNP膜标记、细胞摄取和脂质颗粒定位 | |
DiD(细胞膜红色荧光探针) |
| 一种红色至远红区亲脂性膜荧光探针 | 用于LNP示踪、细胞定位及多色荧光分析 | |
DiD 高氯酸盐 | ≥98% | 一种远红光亲脂性碳菁染料,可插入脂质膜疏水区域 | 用于脂质颗粒膜标记、细胞摄取和组织分布评价 | |
DiR' [DiIC18(7)],用于膜染色 | ≥95% | 一种近红外亲脂性碳菁染料,可稳定分布于脂质膜 | 用于LNP体内成像、组织富集和生物分布研究 | |
钙黄绿素指标 | 金属指示剂 | 一种水溶性荧光分子,可作为脂质囊泡内部水相载荷 | 用于包封、膜泄漏和膜通透性评价 | |
6-羧基荧光素 | ≥95% | 一种水溶性荧光素衍生物,可用于建立包封和释放信号体系 | 用于脂质载体泄漏、包封和载荷释放研究 |
LNP递送效率的核心不在于颗粒是否进入细胞,而在于完整核酸能否经历稳定运输、细胞内吞和内体逃逸后真正到达胞质。可电离脂质决定核酸包封与膜扰 动能力,辅助磷脂、胆固醇和PEG脂质共同调节颗粒结构、稳定性和生物界面。
参考文献
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[2] 科研场景下药物制剂与递送:核心定义、可控框架与实践指南
[3] PEG化技术在药物修饰与递送中的应用:蛋白、多肽、小分子及脂质体
[4] 纳米颗粒在疫苗递送中的应用
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