辅酶Q10如何作用于皮肤:线粒体电子传递、膜脂抗氧化与脂质载体递送
辅酶Q10如何作用于皮肤:线粒体电子传递、膜脂抗氧化与脂质载体递送
1 引言
辅酶Q10常用于抗氧化和抗老护肤产品。其作用基础并不是简单地“清除自由基”或“给皮肤补充能量”,而是来源于两项彼此关联的生化功能:
①在线粒体内膜中传递电子,支持质子梯度和三磷酸腺苷形成;
②在还原状态下参与膜脂抗氧化循环,抑制脂质过氧化链式反应。
这两项功能都与辅酶Q10的分子结构有关。能够发生氧化还原反应的醌环负责接受和释放电子,较长的异戊烯基侧链则使分子停留在脂质膜中。长侧链有利于辅酶Q10在线粒体膜和细胞膜内发挥作用,也造成了水溶性低、结晶风险、皮肤释放受限和制剂稳定性要求较高等问题。
辅酶Q10的护肤效果不仅取决于原料添加量,还取决于其氧化还原状态、在配方中的溶解或包载状态、储存稳定性,以及从载体向皮肤的释放和分配。
关键词:辅酶Q10;泛醌;还原型辅酶Q10;线粒体电子传递;氧化磷酸化;脂质过氧化;光老化;脂质体;纳米结构脂质载体;纳米乳液
2 辅酶Q10的结构、性质与来源
2.1 辅酶Q10是一种脂溶性氧化还原分子
辅酶Q10(coenzyme Q10,CoQ10)又称泛醌-10或辅酶Q₁₀,是辅酶Q家族中人体内的主要形式。其分子式为C₅₉H₉₀O₄,相对分子质量约为863.3,由一个取代的1,4-苯醌头基和一条含10个异戊二烯单元的侧链组成。[1]
名称中的“Q”代表醌结构,“10”代表侧链所含的异戊二烯单元数量。人体主要合成辅酶Q10,部分其他物种则以侧链长度不同的辅酶Q形式为主。
辅酶Q10不是蛋白质,也不是线粒体呼吸链复合物的结构亚基。它是存在于生物膜脂质区域中的氧化还原活性分子,可以在膜内移动,并在不同酶复合物之间转运电子和质子。[2]
2.2 两部分结构分别决定反应能力和膜内定位
结构部分 | 生化作用 | 对护肤配方的影响 |
苯醌头基 | 接受和释放电子与质子,在氧化型、半醌型和还原型之间转换 | 决定电子传递和抗氧化循环能力,氧化还原状态会受配方环境影响 |
十异戊烯基侧链 | 使辅酶Q10嵌入线粒体内膜和其他细胞膜 | 造成高度亲脂、水溶性低,并增加结晶和皮肤分配控制难度 |
醌环提供反应位点,长侧链提供膜内定位。辅酶Q10的护肤功能和配方难点由同一分子结构共同决定。
2.3 人体内辅酶Q10的合成来源
人体细胞能够自行合成辅酶Q10。其合成需要分别形成苯醌环前体和十异戊烯基侧链前体,再将两者连接并完成多步修饰。
主要过程包括:
1. 以4-羟基苯甲酸等分子作为芳香环前体;
2. 通过甲羟戊酸途径形成异戊二烯结构单元;
3. 将这些单元组装为十异戊烯基二磷酸;
4. 由COQ2蛋白催化侧链与4-羟基苯甲酸连接;
5. 经过羟化、脱羧和甲基化等反应形成成熟辅酶Q10。
辅酶Q10的生物合成由多个COQ相关蛋白协同完成,不是单一步骤的酶促反应。[3]
护肤和营养原料中的辅酶Q10可通过化学合成、半合成或微生物发酵制备。微生物发酵是目前重要的工业生产方式,常用能够合成辅酶Q10的细菌进行培养和代谢调控。[4]
3 泛醌、还原型辅酶Q10与泛醇的区别
3.1 泛醌是氧化型辅酶Q10
泛醌(ubiquinone,Q)是辅酶Q10的完全氧化形态。其醌环能够接受电子和质子,先形成半醌中间状态,再转化为完全还原形态。
氧化还原转换可概括为:
泛醌(Q)+2 e⁻+2 H⁺ ⇌ 还原型辅酶Q10(QH₂)
在线粒体电子传递链中,泛醌接受电子后转化为还原型辅酶Q10;还原型辅酶Q10将电子交给复合物Ⅲ后,又恢复为泛醌。辅酶Q10由此在氧化型和还原型之间循环。[5]
3.2 还原型辅酶Q10直接参与膜脂抗氧化
还原型辅酶Q10(ubiquinol,QH₂)是辅酶Q10的完全还原形态。与泛醌相比,其醌环上的两个羰基已转化为羟基,因此可以向脂质自由基或脂质过氧自由基提供还原当量。
还原型辅酶Q10参与抑制脂质过氧化的扩展,自身被氧化后,可由细胞内还原酶和其他代谢系统重新转化为还原型。辅酶Q10的抗氧化功能因而依赖一个持续循环,而不只是一次性的自由基反应。[6]
3.3 还原型辅酶Q10与护肤成分泛醇不是同一种物质
护肤原料中的“泛醇”通常指Panthenol,即泛酸的醇类衍生物,也称维生素B5原。其分子结构、代谢途径和主要护肤功能均不同于辅酶Q10。[7]
中文名称 | 英文名称 | 与辅酶Q10的关系 |
泛醌 | Ubiquinone | 氧化型辅酶Q10 |
还原型辅酶Q10 | Ubiquinol | 辅酶Q10的完全还原形态 |
半醌 | Ubisemiquinone | 氧化型与还原型之间的单电子中间状态 |
泛醇 | Panthenol | 维生素B5衍生物,与辅酶Q10不是同一种成分 |
4 ATP生成过程及辅酶Q10的位置
4.1 细胞有氧供能的三个阶段
三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)是细胞直接利用的能量载体。细胞由葡萄糖等营养物质生成ATP的过程,可概括为三个连续阶段。
阶段 | 主要位置 | 主要过程 | 辅酶Q10的参与情况 |
糖酵解 | 细胞质 | 葡萄糖转化为丙酮酸,形成少量ATP和还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸 | 不直接参与 |
丙酮酸氧化与三羧酸循环 | 线粒体基质 | 形成乙酰辅酶A,并生成还原型电子载体 | 不直接参与主要碳代谢反应 |
电子传递与氧化磷酸化 | 线粒体内膜 | 电子沿呼吸链传递,建立质子梯度并驱动ATP合酶 | 作为复合物Ⅰ、复合物Ⅱ等与复合物Ⅲ之间的电子载体 |
还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(reduced nicotinamide adenine dinucleotide,NADH)和还原型黄素腺嘌呤二核苷酸相关体系携带的电子,在第三阶段进入线粒体电子传递链。
4.2 辅酶Q10连接呼吸链上游与复合物Ⅲ
线粒体电子传递中的主要电子流可表示为:
NADH → 复合物Ⅰ → 辅酶Q10
琥珀酸 → 复合物Ⅱ中的黄素腺嘌呤二核苷酸体系 → 辅酶Q10
还原型辅酶Q10 → 复合物Ⅲ → 细胞色素c → 复合物Ⅳ → 氧
复合物Ⅰ接受NADH提供的电子,并将电子传给泛醌。复合物Ⅱ同时属于三羧酸循环中的琥珀酸脱氢酶,其结合的黄素腺嘌呤二核苷酸(flavin adenine dinucleotide,FAD)接受琥珀酸氧化产生的电子,再将电子传给泛醌。
辅酶Q10在此处形成多个代谢途径的电子汇合点。除复合物Ⅰ和复合物Ⅱ外,脂肪酸氧化、甘油磷酸代谢及其他黄素酶体系也可向辅酶Q池提供电子。[2][5]
4.3 辅酶Q10支持ATP形成,但不直接催化ATP合成
泛醌接受两个电子和两个质子后形成还原型辅酶Q10,并移动至复合物Ⅲ。复合物Ⅲ通过Q循环将电子逐步传给细胞色素c,同时促进质子向线粒体膜间隙转移。
复合物Ⅰ、复合物Ⅲ和复合物Ⅳ参与建立跨线粒体内膜的质子电化学梯度,复合物Ⅱ不直接泵出质子。质子随后通过ATP合酶返回线粒体基质,驱动二磷酸腺苷(adenosine diphosphate,ADP)和无机磷酸形成ATP。
辅酶Q10与ATP生成的关系可归纳为:
辅酶Q10负责传递电子并支持质子动力势形成;ATP合酶利用质子动力势催化ATP生成。
5 辅酶Q10作用于皮肤的主要机制
5.1 支持氧化压力下的细胞能量稳态
角质形成细胞的增殖、分化、脂质合成、蛋白质加工和屏障更新均需要ATP。辅酶Q10充足时,线粒体电子能够较顺畅地流向复合物Ⅲ,有利于维持质子梯度和氧化磷酸化。
2025年的角质形成细胞研究使用永生化人角质形成细胞HaCaT模型,实时监测ATP/ADP和ATP/一磷酸腺苷比例。细胞在有机过氧化物引起的强氧化压力下,预先补充辅酶Q10可减缓能量状态下降;通过抑制甲羟戊酸途径降低细胞辅酶Q10后,能量应激出现较早,并伴随较早的细胞死亡。[10]
该研究说明,辅酶Q10可在氧化压力下支持角质形成细胞的能量状态。其意义在于维持受压细胞的电子传递和能量稳态。
5.2 抑制膜脂过氧化的链式扩展
紫外线、环境氧化物和细胞代谢均可形成活性氧(reactive oxygen species,ROS)。活性氧攻击膜脂中的不饱和脂肪酸后,可产生脂质自由基和脂质过氧自由基。
脂质过氧化具有链式反应特点:
1. 膜脂被氧化并形成脂质自由基;
2. 脂质自由基与氧结合形成脂质过氧自由基;
3. 脂质过氧自由基继续攻击邻近脂质;
4. 新的脂质自由基不断形成,氧化损伤继续扩展。
还原型辅酶Q10位于膜脂环境中,可以向脂质过氧自由基提供还原当量,使链式传播受到抑制。被氧化后的辅酶Q10再通过细胞还原系统恢复为还原型,继续参与抗氧化循环。[5][6]
辅酶Q10的抗氧化特点在于其作用位置接近膜脂氧化发生区域。它并不是在全部细胞环境中无选择地消除所有活性氧,而是侧重于维持膜内氧化还原平衡和限制脂质过氧化扩展。
5.3 减轻紫外线诱导的细胞氧化损伤
长波紫外线(ultraviolet A,UVA)能够在皮肤中诱导活性氧形成,并影响细胞膜、线粒体、蛋白质和脱氧核糖核酸。
早期细胞研究发现,辅酶Q10预处理可减轻过氧化物或UVA引起的角质形成细胞氧化应激,并降低UVA诱导的氧化性脱氧核糖核酸损伤。辅酶Q10还可减轻UVA照射后成纤维细胞线粒体膜电位下降。[8]
5.4 减少部分胶原降解相关信号
UVA引起的氧化应激可激活多种细胞信号,增加胶原降解相关酶的表达。1999年的体外研究显示,辅酶Q10预处理可降低UVA诱导的人真皮成纤维细胞胶原酶相关信使核糖核酸表达。[8]
这一结果表明辅酶Q10可能通过减轻氧化应激,降低部分细胞外基质降解信号。辅酶Q10本身不是胶原蛋白原料,也不是具有特定受体靶点的胶原信号肽,其作用重点在于减少氧化压力对细胞和基质稳态的干扰。

6 辅酶Q10外用功效的研究证据
6.1 不同研究层级提供的证据
研究层级 | 代表性研究 | 主要结果 | 证据解释 |
角质形成细胞和成纤维细胞 | Hoppe等,1999年 | 减轻过氧化物和UVA相关氧化损伤,降低UVA诱导的胶原酶相关表达 | 支持细胞抗氧化和基质保护机制,不能直接代表人体抗皱幅度 |
离体猪皮 | Hoppe等,1999年 | 乙醇载体中的辅酶Q10主要进入角质层,部分到达活性表皮,少量进入真皮 | 说明辅酶Q10可以穿过部分皮肤屏障,但分布受载体和模型影响 |
小规模人体研究 | Hoppe等,1999年 | 0.3%辅酶Q10连续使用后,UVA相关氧化指标和眼周皮肤微地形参数得到改善 | 提供人体支持性结果,样本量较小,研究由企业研发团队参与 |
人体皮肤补充研究 | Knott等,2015年 | 含辅酶Q10配方提高皮肤表面及较深表皮中的泛醌水平,并伴随还原型辅酶Q10升高 | 支持外用泛醌进入表皮并发生还原转化 |
HaCaT角质形成细胞 | Abi Nahed等,2025年 | 辅酶Q10预载减缓强氧化压力下的能量状态下降 | 支持细胞能量稳态机制,属于体外应激模型 |
1999年研究中,13名受试者在前臂使用0.3%辅酶Q10或载体7天后,辅酶Q10处理部位在UVA照射后的超弱光子发射降低。另一项20名受试者眼周自身对照研究中,0.3%辅酶Q10连续使用6个月后,皮肤微地形参数相对载体对照有所改善。[8]
2015年的研究进一步显示,外用含辅酶Q10配方可提高皮肤表面及表皮较深区域的泛醌含量,同时观察到还原型辅酶Q10水平增加,提示进入皮肤的泛醌能够参与局部氧化还原代谢。[9]
辅酶Q10是一种兼具线粒体电子传递和膜内抗氧化功能的抗老支持型原料,其外用价值主要体现在维持氧化还原稳态、支持细胞能量代谢以及减轻光氧化压力。
7 辅酶Q10作为护肤原料的配方难点
7.1 水溶性低,难以直接加入水相体系
辅酶Q10的十异戊烯基侧链使其高度亲脂,几乎不溶于水。在水剂、凝胶或水相比例较高的乳液中直接加入辅酶Q10,可能出现分散不均、沉降、聚集或晶体析出。
原料进入配方并不等同于形成可释放状态。只有溶解在适宜油相中,或稳定分布于脂质载体内部,辅酶Q10才较容易从配方向皮肤表面转移。
7.2 高度亲脂会限制后续皮肤分配
角质层含有较丰富的细胞间脂质,亲脂性辅酶Q10可与这些脂质发生分配。但活性表皮的含水量高于角质层,辅酶Q10从高度亲脂环境继续向含水组织释放的驱动力有限。
早期离体猪皮研究中,乙醇载体所递送的辅酶Q10主要分布于角质层,进入活性表皮的比例下降,进入真皮的量进一步减少。[8]
因此,辅酶Q10的皮肤递送需要同时考虑两个过程:
1. 从配方进入角质层;
2. 从角质层或载体中继续释放并分配到活性表皮。
亲脂性有利于辅酶Q10与角质层接触,但亲脂性过高也可能增加角质层滞留。
7.3 冷却和储存过程中可能结晶
辅酶Q10在油相中的溶解度随油脂种类、温度和共存成分变化。加热时形成的澄清溶液在冷却后可能转为过饱和状态,并逐渐发生晶体成核和生长。
固体脂质载体还可能发生脂质多晶型转变。脂质晶格在储存中排列得较规整时,可容纳活性物的空间减少,辅酶Q10可能被排出并形成晶体。[12]
7.4 稳定性受光、温度和氧化还原环境影响
辅酶Q10对光照和较高温度具有一定敏感性,但其稳定性与所处配方环境密切相关。
需要区分两类变化:
①泛醌本身发生光化学或热降解;
②还原型辅酶Q10被氧化为泛醌,造成氧化还原比例变化。
1999年的研究表明,特定外用配方中的泛醌在短时间热氧条件下具有一定稳定性;后续研究则发现,游离辅酶Q10在持续自然光照下可发生明显损失,而纳米结构脂质载体能够提高其光稳定性。[8][13]
由此可见,辅酶Q10不是在所有条件下均迅速失活,也不宜被视为无需保护的普通油溶性成分。其稳定性需要结合氧化还原形态、溶剂、载体、光照、温度、氧气和包装共同评价。
8 脂质载体如何改善辅酶Q10递送

8.1 脂质体
脂质体由磷脂双层构成,内部含有水相空间。亲脂性的辅酶Q10主要分布于磷脂双层的疏水区域,而不是位于脂质体内部水相。
2010年的大鼠皮肤研究表明,延长作用时间和增加脂质体中辅酶Q10含量,可提高皮肤中的辅酶Q10积累量。[11]
脂质体的稳定性受到磷脂氧化、水解、囊泡融合、粒径增长和活性物泄漏等因素影响。辅酶Q10含量较高时,还需考察其是否改变磷脂双层排列。
8.2 固体脂质纳米粒
固体脂质纳米粒(solid lipid nanoparticle,SLN)以室温下呈固态的脂质为基质,由表面活性剂稳定在水相中。
固态脂质基质能够降低活性物分子运动,并具有一定的保护和缓释能力。颗粒在皮肤表面形成较紧密的脂质膜后,还可能增加角质层水合和载体与皮肤的接触。
SLN的主要限制是脂质结晶过程。储存期间脂质可能向较稳定、排列较规整的晶型转变,造成内部空间减少和活性物排出。
8.3 纳米结构脂质载体
纳米结构脂质载体(nanostructured lipid carrier,NLC)通常由固体脂质和液态脂质共同组成。液态脂质干扰固体脂质的规整排列,使脂质基质形成较多结构缺陷。[15]
与高度规整的固体脂质基质相比,这种结构有利于:
①增加亲脂性活性物的容纳空间;
②降低储存过程中活性物被晶格排出的风险;
③提高载药量和包封率;
④调节释放速度;
⑤改善部分光稳定性。
辅酶Q10-NLC研究显示,载体可改善辅酶Q10的水分散性,并在自然光照条件下提高其含量保持率。[13]
NLC的性能仍取决于固体脂质与液态脂质比例、辅酶Q10在脂质中的溶解度、表面活性剂种类、制备温度及储存中的晶型变化。
8.4 纳米乳液
纳米乳液通常由较小油滴分散在连续水相中,辅酶Q10溶解于油滴内部。其作用重点是利用油相保持辅酶Q10的溶解状态,并增加油滴与皮肤的接触面积。
2019年的离体大鼠皮肤研究使用亚麻籽油、月见草油和橄榄油制备辅酶Q10纳米乳霜。不同油相所得配方的皮肤透过量不同,表明油相组成与粒径一样会影响辅酶Q10递送。[14]
纳米乳液通常属于动力学稳定体系,储存中可能发生絮凝、聚并和奥斯特瓦尔德熟化。含不饱和脂肪酸较多的油相还需要同步评价油脂氧化和辅酶Q10稳定性。
8.5 三类载体的作用差异
递送体系 | 基本结构 | 主要解决的问题 | 主要稳定性风险 |
脂质体 | 磷脂双层囊泡 | 水相分散、膜脂接触和释放调节 | 磷脂氧化、水解、融合和泄漏 |
SLN/NLC | 固体脂质或固液混合脂质基质 | 包载保护、缓释和皮肤滞留 | 晶型转变、粒径增长和活性物排出 |
纳米乳液 | 液态油滴分散体系 | 油相增溶、铺展和界面传递 | 聚并、熟化和油相氧化 |
载体选择应根据剂型、目标皮层、辅酶Q10浓度、肤感和稳定性要求确定,不宜脱离具体配方比较哪一种载体具有普遍优势。
8.6 纳米粒径不等于完整颗粒进入真皮
脂质纳米载体在皮肤表面的常见作用包括:
①增加与角质层的接触面积;
②提高皮肤表面和毛囊中的沉积;
③增加角质层水合;
④改变活性物的释放速度;
⑤促进辅酶Q10分子在载体与角质层脂质之间交换。
这些作用不代表完整纳米颗粒一定穿过健康角质层并进入真皮。对于辅酶Q10,更合理的递送过程是载体在皮肤表面或角质层沉积后,逐步释放辅酶Q10分子,再由分子向活性表皮分配。[12]
9 辅酶Q10电子传递、抗氧化循环与脂质载体递送相关代表化学品分类及科研应用
表1 辅酶Q10核心物、同系物与生物合成前体
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
辅酶Q10定量分析标准物 | 303-98-0 | 辅酶Q10 | 分析标准品, ≥98% | 用于辅酶Q10原料与制剂的定性定量、色谱方法建立、回收率测定及储存稳定性研究。 | |
还原型辅酶Q10研究材料 | 992-78-9 | 辅酶Q10 | ≥95% | 用于还原型辅酶Q10的膜脂抗氧化、泛醌与还原型比例、氧化稳定性及再生循环研究。 | |
辅酶Q同系物对照 | 303-97-9 | 辅酶Q9 | ≥98% | 用于辅酶Q同系物分离、侧链长度效应、物种差异及色谱保留行为比较。 | |
短侧链辅酶Q对照 | 727-81-1 | 辅酶 Q₁ | Moligand™, ≥95% | 用于短侧链泛醌的氧化还原反应、电子传递模型、溶解行为及侧链长度效应研究。 | |
无侧链泛醌环对照 | 605-94-7 | 2,3-二甲氧基-5-甲基-1,4-苯醌 | ≥97% | 用于泛醌核心苯醌环的氧化还原性质、结构—活性关系及辅酶Q同系物比较研究。 | |
辅酶Q芳香环前体 | 60-18-4 | L-酪氨酸 | 无动物源, 低内毒素, Moligand™, 用于细胞培养, ≥99% | 用于酪氨酸代谢、辅酶Q芳香环前体来源及细胞内辅酶Q10生物合成研究。 | |
辅酶Q直接芳香环前体 | 99-96-7 | 对羟基苯甲酸 | ≥99% | 用于辅酶Q芳香环前体供给、侧链连接反应及辅酶Q生物合成通路研究。 |
表2 线粒体电子传递、氧化磷酸化与能量状态研究试剂
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
复合物Ⅰ电子供体 | 606-68-8 | 还原型辅酶I 二钠(β-NADH) | ≥98% | 用于纯化复合物Ⅰ和亚线粒体颗粒的电子供体体系、辅酶Q还原及呼吸链酶活性研究。 | |
黄素酶氧化还原辅因子 | 84366-81-4 | 黄素腺嘌呤二核苷酸二钠盐水合物(FAD-Na2) | 用于细胞培养, ≥95% | 用于琥珀酸脱氢酶及其他黄素酶辅因子研究、黄素化过程和氧化还原反应评价。 | |
复合物Ⅱ底物 | 110-15-6 | 丁二酸 | Moligand™, ≥99.5%(T) | 用于复合物Ⅱ底物供给、琥珀酸驱动呼吸、氧耗及辅酶Q池还原研究。 | |
能量状态与氧化磷酸化底物 | 16178-48-6 | 腺苷-5'-二磷酸钠盐 | Moligand™, ≥98%(N) | 用于三磷酸腺苷合酶底物供给、呼吸控制、磷酸化效率及细胞能量状态研究。 | |
三磷酸腺苷定量对照 | 987-65-5 | 腺苷-5′-三磷酸二钠盐(ATP) | 10mM in Water | 用于三磷酸腺苷标准曲线、能量代谢检测、酶促反应及细胞能量状态评价。 | |
线粒体复合物Ⅰ抑制剂 | 83-79-4 | 鱼藤酮 | 分析标准品, Moligand™, ≥96% | 用于抑制复合物Ⅰ,区分复合物Ⅰ依赖电子流及建立线粒体呼吸受损模型。 | |
三磷酸腺苷合酶抑制剂 | 579-13-5 | 寡霉素A 来源于 淀粉酶产色链霉菌 | EnzymoPure™, ≥97% | 用于抑制三磷酸腺苷合酶,评价磷酸化相关耗氧、质子泄漏及三磷酸腺苷生成。 | |
氧化磷酸化解偶联剂 | 370-86-5 | 碳酰氰 4-(三氟甲氧基)苯腙(FCCP) | Moligand™, ≥98%(TLC) | 用于消散线粒体质子梯度、测定最大呼吸能力及区分耦联与非耦联呼吸。 |
表3 氧化应激、脂质过氧化与抗氧化循环评价试剂
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
水相氧化应激诱导剂 | 7722-84-1 | 过氧化氢 溶液 | 适用于微生物学, 3% | 用于建立细胞氧化应激模型,评价辅酶Q10对细胞活力、线粒体功能和氧化损伤的影响。 | |
有机过氧化应激诱导剂 | 75-91-2 | 过氧化氢叔丁醇(TBHP) | 70% in H2O | 用于诱导细胞和膜脂氧化应激,评价辅酶Q10的能量稳态支持及脂质过氧化抑制作用。 | |
醌类氧化还原循环诱导剂 | 58-27-5 | 甲萘醌 | ≥98% | 用于醌类氧化还原循环、活性氧生成及辅酶Q10抗氧化保护机制研究。 | |
脂质过氧化醛类产物 | 75899-68-2 | 4-羟基壬烯醛 (4-HNE) | Moligand™, ≥97% | 用于脂质过氧化产物相关蛋白修饰、细胞应激、线粒体损伤及基质稳态研究。 | |
丙二醛检测前体标准物 | 102-52-3 | 1,1,3,3-四甲氧基丙烷 | ≥98% | 用于水解生成丙二醛、建立硫代巴比妥酸反应标准曲线及评价脂质过氧化程度。 | |
细胞还原体系对照 | 70-18-8 | 谷胱甘肽(还原型) | PharmPure™, 欧洲药典(Ph.Eur) | 用于细胞还原状态、谷胱甘肽抗氧化体系及辅酶Q10协同抗氧化研究。 | |
脂溶性抗氧化协同对照 | 59-02-9 | (+)-α-生育酚 | 来自V型植物油,约1000 IU/g | 用于膜脂抗氧化、维生素E循环及辅酶Q10与脂溶性抗氧化物协同作用研究。 | |
水溶性维生素E类似物对照 | 53188-07-1 | 奎诺二甲基丙烯酸酯 | ≥98%, white | 用于水相抗氧化能力对照、总抗氧化能力测定及辅酶Q10载体体系抗氧化性能比较。 | |
水相抗氧化对照 | 50-81-7 | L -抗坏血酸 | 无水级, Moligand™, ACS, ≥99% | 用于水相氧化还原体系、抗氧化能力对照及辅酶Q10复合抗氧化研究。 | |
油相抗氧化保护剂 | 137-66-6 | L-抗坏血酸棕榈酸酯 | PharmPure™, USP | 用于油相抗氧化保护、脂质载体氧化稳定性及辅酶Q10配方协同稳定研究。 | |
油相氧化稳定性对照 | 128-37-0 | 2,6-二叔丁基对甲酚 (BHT) | purum, ≥99%(GC) | 用于辅酶Q10和载体脂质的热氧稳定性、储存保护及油相抗氧化性能比较。 |
表4 脂质体、脂质纳米载体与纳米乳液构建材料
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
亲水型非离子乳化剂 | 9005-65-6 | 吐温® 80 | 粘性液体,无防腐剂,低过氧化物;低羰 | 用于纳米乳液、脂质纳米载体和脂质体的界面稳定、粒径调控及辅酶Q10水分散研究。 | |
亲油型非离子乳化剂 | 1338-43-8 | 司班80 | 粘度 1000-2000 mPa.s (20 °C) | 用于亲油界面调节、复合乳化体系及辅酶Q10油相分散与乳化条件筛选。 | |
脂质体制备与共溶介质 | 64-17-5 | 乙醇 | Moligand™, 分子生物学级, ≥99.8% | 用于辅酶Q10共溶、磷脂分散、乙醇注入法脂质体制备及皮肤分配实验。 | |
磷脂膜结构调节材料 | 57-88-5 | 胆固醇 | 用于细胞培养, ≥99%(GC) | 用于调节脂质体双层膜流动性、通透性、机械稳定性及辅酶Q10泄漏行为。 | |
纳米粒稳定与热响应凝胶材料 | 9003-11-6 | Pluronic® F-127 | BioReagent, 用于细胞培养, Granular waxy | 用于纳米颗粒表面稳定、热响应凝胶构建及辅酶Q10局部递送与释放研究。 | |
天然磷脂载体材料 | 8002-43-5 | 磷脂 来自向日葵(非转基因) | 天然, with ≥60% phosphatidylcholine | 用于构建天然磷脂脂质体、包载辅酶Q10及研究磷脂膜与角质层脂质相互作用。 | |
固体脂质基质 | 57-11-4 | 硬脂酸 | Moligand™, ≥95%(GC), MP 68-71°C | 用于固体脂质纳米粒和纳米结构脂质载体的基质构建、结晶行为及缓释研究。 | |
液态脂质与皮肤分配调节材料 | 112-80-1 | 油酸 | 欧洲药典(Ph.Eur), ≥65% | 用于纳米乳液液态油相、脂质基质缺陷调节及辅酶Q10皮肤分配研究。 | |
共溶与皮肤释放介质 | 57-55-6 | 1,2-丙二醇 | ACS, ≥99.5% | 用于辅酶Q10共溶、保湿、外用制剂释放及皮肤分配条件研究。 | |
纳米乳液液态油相 | 73398-61-5 | 中链甘油三酯 | USP, 欧洲药典(Ph.Eur) | 用于辅酶Q10油相增溶、纳米乳液及纳米结构脂质载体液态脂质基质研究。 | |
蜡质固体脂质基质 | 540-10-3 | 棕榈酸十六酯15 (十六酸酯蜡) | PharmPure™, 欧洲药典(Ph.Eur), NF | 用于固体脂质纳米粒蜡质基质、辅酶Q10包载、结晶行为和缓释性能研究。 | |
亲脂性油相与分配介质 | 110-27-0 | 豆蔻酸异丙酯 | PharmPure™, 欧洲药典(Ph.Eur), NF | 用于辅酶Q10油相增溶、纳米乳液构建及配方与角质层之间的分配研究。 | |
组成明确的磷脂双层材料 | 63-89-8 | 1,2-二棕榈酰-sn-甘油-3-磷酰胆碱(DPPC) | Moligand™, ≥99% | 用于构建组成明确的磷脂双层、研究膜相行为、脂质体稳定性及辅酶Q10膜内定位。 | |
乳化型固体脂质基质 | 31566-31-1 | 单硬脂酸甘油酯(乳化型) | ≥99% | 用于乳化和固体脂质基质构建,研究辅酶Q10包载率、粒径、释放和储存结晶。 | |
稳定型亲脂油相 | 111-01-3 | 角鲨烷 | ≥98% | 用于辅酶Q10油相增溶、乳化体系构建、肤感评价及氧化稳定性研究。 |
表5 辅酶Q10稳定性控制、样品前处理与色谱分析试剂
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
辅酶Q提取与色谱溶剂 | 67-56-1 | 甲醇 | 色谱HPLC plus级, ≥99.9% | 用于辅酶Q10及同系物提取、样品稀释、色谱流动相配制和含量分析。 | |
疏水样品溶解与色谱溶剂 | 109-99-9 | 四氢呋喃(THF) | UltraPureChrom™, 色谱HPLC级, ≥99.9% | 用于辅酶Q10溶解、疏水样品前处理及反相色谱流动相组成调节。 | |
高效液相色谱流动相 | 75-05-8 | 乙腈(ACN) | HPLC梯度级, 色谱HPLC级, ≥99.9% | 用于辅酶Q10、辅酶Q同系物和降解产物的色谱分离、定量及杂质分析。 | |
脂溶性样品提取溶剂 | 67-63-0 | 异丙醇(IPA) | 无水级, ≥99.5% | 用于辅酶Q10、磷脂和油脂样品提取,兼用于色谱流动相及分析器皿清洗。 | |
金属离子络合剂 | 139-33-3 | 乙二胺四乙酸二钠 | ≥99% | 用于络合铁、铜等金属离子,评价辅酶Q10及脂质载体的金属催化氧化稳定性。 |
注:以上为阿拉丁代表性科研产品,更多产品规格、级别、COA信息可用“品名/CAS/货号”在阿拉丁官网检索。
参考文献
[1] National Center for Biotechnology Information. PubChem Compound Summary for CID 5281915, Coenzyme Q10. PubChem.
[2] Lenaz G, Fato R, Formiggini G, Genova ML. The role of Coenzyme Q in mitochondrial electron transport. Mitochondrion. 2007;7(Suppl):S8–S33. DOI: 10.1016/j.mito.2007.03.009.
[3] Rodríguez-Aguilera JC, Cortés AB, Fernández-Ayala DJM, Navas P. Biochemical Assessment of Coenzyme Q10 Deficiency. Journal of Clinical Medicine. 2017;6(3):27. DOI: 10.3390/jcm6030027.
[4] Fan J, Xu W, Xu X, Wang Y. Production of Coenzyme Q10 by microbes: an update. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 2022;38(11):194. DOI: 10.1007/s11274-022-03326-0.
[5] González-Mariscal I, García-Testón E, Padilla S, Martín-Montalvo A, Pomares Viciana T, Vazquez-Fonseca L, Gandolfo Domínguez P, Santos-Ocaña C. The Regulation of Coenzyme Q Biosynthesis in Eukaryotic Cells: All That Yeast Can Tell Us. Molecular Syndromology. 2014;5(3–4):107–118. DOI: 10.1159/000362897.
[6] National Center for Biotechnology Information. PubChem Compound Summary for CID 9962735, Ubiquinol. PubChem.
[7] National Center for Biotechnology Information. PubChem Compound Summary for CID 4678, DL-Panthenol. PubChem.
[8] Hoppe U, Bergemann J, Diembeck W, Ennen J, Gohla S, Harris I, Jacob J, Kielholz J, Mei W, Pollet D, Schachtschabel D, Sauermann G, Schreiner V, Stäb F, Steckel F. Coenzyme Q10, a cutaneous antioxidant and energizer. BioFactors. 1999;9(2–4):371–378. DOI: 10.1002/biof.5520090238.
[9] Knott A, Achterberg V, Smuda C, Mielke H, Sperling G, Dunckelmann K, Vogelsang A, Krüger A, Schwengler H, Behtash M, Kristof S, Diekmann H, Eisenberg T, Berroth A, Hildebrand J, Siegner R, Winnefeld M, Teuber F, Fey S, Möbius J, Retzer D, Burkhardt T, Lüttke J, Blatt T. Topical treatment with coenzyme Q10-containing formulas improves skin’s Q10 level and provides antioxidative effects. BioFactors. 2015;41(6):383–390. DOI: 10.1002/biof.1239.
[10] Abi Nahed R, Hussein A, Cottet-Rousselle C, Vogelsang A, Aulicino F, Berger I, Blatt T, Weise JM, Schlattner U. Coenzyme Q10 protects keratinocytes against oxidation-induced energy stress as revealed by spatiotemporal analysis of cell energetics. Scientific Reports. 2025;15:14501. DOI: 10.1038/s41598-025-98793-4.
[11] Lee WC, Tsai TH. Preparation and characterization of liposomal coenzyme Q10 for in vivo topical application. International Journal of Pharmaceutics. 2010;395(1–2):78–83. DOI: 10.1016/j.ijpharm.2010.05.006.
[12] Gokce EH, Korkmaz E, Tuncay-Tanrıverdi S, Dellera E, Sandri G, Bonferoni MC, Ozer O. A comparative evaluation of coenzyme Q10-loaded liposomes and solid lipid nanoparticles as dermal antioxidant carriers. International Journal of Nanomedicine. 2012;7:5109–5117. DOI: 10.2147/IJN.S34921.
[13] Wang J, Wang H, Zhou X, Tang Z, Liu GQ, Liu GY, Xia Q. Physicochemical characterization, photo-stability and cytotoxicity of coenzyme Q10-loading nanostructured lipid carrier. Journal of Nanoscience and Nanotechnology. 2012;12(3):2136–2148. DOI: 10.1166/jnn.2012.5790.
[14] Tou KAS, Rehman K, Ishak WMW, Zulfakar MH. Influence of omega fatty acids on skin permeation of a coenzyme Q10 nanoemulsion cream formulation: characterization, in silico and ex vivo determination. Drug Development and Industrial Pharmacy. 2019;45(9):1451–1458. DOI: 10.1080/03639045.2019.1628042.
[15] Viegas C, Patrício AB, Prata JM, Nadhman A, Chintamaneni PK, Fonte P. Solid Lipid Nanoparticles vs. Nanostructured Lipid Carriers: A Comparative Review. Pharmaceutics. 2023;15(6):1593. DOI: 10.3390/pharmaceutics15061593.
更多相关文章,详见下方:
4-MSK 的双靶向美白机制:抑制黑色素生成与减少表皮色素滞留
α-硫辛酸的皮肤抗老机制:ALA/DHLA 氧化还原循环、抗氧化网络与胶原 AGEs 形成调控
谷胱甘肽外用护肤机制解析:细胞氧化还原调节、皮肤递送难点与 SLNs 递送策略
从角质层脂质屏障理解神经酰胺:保湿与屏障修护机制、成分选择与配方研究思路
海藻糖(Trehalose)的性质特征、制备工艺与应用技术指南
细胞培养包被体系中玻连蛋白、层粘连蛋白与纤连蛋白的适用性比较
谷胱甘肽(GSH)含量检测:方法体系、实验流程与质量控制要点
谷胱甘肽还原酶:维持GSH/GSSG稳态的黄素依赖还原体系及其检测与应用
危险品化学品经营许可证(带存储)