干扰素刺激基因在抗病毒免疫中的作用:RIG-I、MDA5、IFI35与ISG表达调控
干扰素刺激基因在抗病毒免疫中的作用:RIG-I、MDA5、IFI35与ISG表达调控
干扰素刺激基因(ISG)是细胞抗病毒状态建立的核心执行层。病毒RNA被RIG-I、MDA5等模式识别受体识别后,可经MAVS、TBK1、IRF3/IRF7和NF-κB诱导I型/III型干扰素产生,再通过JAK-STAT通路驱动ISG表达。IFI35等ISG相关调控因子可参与干扰素反应强度、持续时间和炎症输出的精细调节。
关键词:干扰素刺激基因;RIG-I;MDA5;IFI35;ISG;抗病毒免疫;I型干扰素;JAK-STAT
1 干扰素刺激基因与抗病毒免疫的研究逻辑
1.1 ISG的功能定位
(1)抗病毒效应执行
ISG是干扰素信号激活后诱导表达的一组效应基因,覆盖病毒入侵限制、病毒RNA降解、蛋白翻译抑制、病毒复制复合体干扰、颗粒装配抑制和感染细胞免疫标记等多个环节。常见ISG包括ISG15、MX1、OAS1、OAS2、IFIT1、IFIT2、IFIT3、RSAD2、PKR/EIF2AK2、IFITM1/2/3和BST2等。
(2)信号放大与反馈调控
ISG不只是抗病毒终末效应分子,也可参与上游信号调节。部分ISG能增强病毒核酸识别或促进干扰素反应,另一些则限制过度炎症和持续性JAK-STAT激活。抗病毒免疫研究中,应同时关注ISG的效应功能和反馈调控功能。
(3)细胞类型依赖性
不同细胞中ISG表达谱差异明显。上皮细胞、巨噬细胞、树突状细胞、肝细胞、神经细胞和肿瘤细胞对病毒感染、dsRNA模拟物、I型干扰素或III型干扰素的响应不同。实验设计不能只检测单一ISG,而应结合细胞类型、病毒类型和感染阶段选择指标组合。
1.2 抗病毒信号的基本轴线
(1)病毒RNA识别
RIG-I和MDA5是胞质RNA病毒识别中的关键RLR(RIG-I-like receptor)成员。RIG-I更偏向识别带5′-三磷酸、短双链区域或特定末端结构的病毒RNA;MDA5更常与较长双链RNA或复制中间体相关。两者识别对象不同,但均可经MAVS连接下游抗病毒信号。
(2)干扰素诱导
RIG-I或MDA5激活后,MAVS在线粒体外膜形成信号平台,进一步激活TBK1、IKKε、IRF3、IRF7和NF-κB。IRF3/IRF7促进IFNB1、IFNA亚型和部分干扰素相关基因转录,NF-κB则驱动炎症因子和趋化因子表达,如TNF、IL6、CXCL10和CCL5。
(3)ISG表达执行
分泌出的IFN-β、IFN-α或IFN-λ与相应受体结合后,激活JAK1、TYK2、STAT1和STAT2,形成ISGF3复合物并进入细胞核,诱导ISRE依赖的ISG表达。此时,细胞进入抗病毒预警状态,对病毒复制和传播形成限制。
表1 RIG-I/MDA5-IFN-ISG抗病毒信号框架
分析层面 | 核心分子 | 推荐检测方法 | 判读重点 |
病毒RNA识别 | RIG-I/DDX58、MDA5/IFIH1 | qPCR、Western blot、IF、敲低/敲除 | 区分病毒RNA识别受体来源和激活条件 |
接头蛋白信号 | MAVS | Western blot、IF、线粒体定位分析 | 判断RLR信号是否进入MAVS平台 |
激酶激活 | TBK1、IKKε、p-TBK1 | Western blot、磷酸化抗体检测 | 评价IRF3激活前的关键节点 |
转录因子激活 | IRF3、p-IRF3、IRF7、NF-κB p65 | Western blot、核转位、报告基因 | 判断干扰素和炎症因子转录启动 |
干扰素产生 | IFNB1、IFNA、IFNL1/2/3 | qPCR、ELISA、报告基因 | 区分I型和III型干扰素反应 |
ISG表达 | ISG15、MX1、OAS1、IFIT1、RSAD2、IFI35 | qPCR、Western blot、RNA-seq | 评价抗病毒状态建立程度 |
抗病毒效应 | 病毒RNA、病毒蛋白、感染率、病毒滴度 | qPCR、TCID50、Plaque assay、IF | 将信号变化与病毒复制结果关联 |
2 RIG-I与MDA5在病毒RNA识别中的分工
2.1 RIG-I信号特征
(1)识别短RNA和5′-三磷酸结构
RIG-I由DDX58编码,属于胞质RNA传感器,常识别具有5′-三磷酸或5′-二磷酸末端、短双链结构或特定病毒RNA构象的RNA。许多负链RNA病毒、部分正链RNA病毒复制中间体和人工5′ppp RNA可诱导RIG-I激活。
(2)CARD结构域介导MAVS激活
RIG-I在结合病毒RNA后构象发生变化,暴露N端CARD结构域,并与MAVS发生相互作用。MAVS激活后进一步招募下游激酶复合体,引发IRF3/IRF7和NF-κB通路启动。
(3)实验判读要点
RIG-I表达升高不等同于RIG-I激活。研究中应结合RIG-I蛋白构象、MAVS下游信号、p-TBK1、p-IRF3、IFNB1和ISG表达判断。若RIG-I升高但IFNB1和ISG无明显变化,可能代表预激活状态、反馈诱导或识别底物不足。
2.2 MDA5信号特征
(1)识别长dsRNA或病毒复制中间体
MDA5由IFIH1编码,常与长双链RNA、病毒复制中间体和部分正链RNA病毒识别相关。Poly(I:C)高分子量形式常用于模拟MDA5相关dsRNA刺激,但实际响应仍受递送方式、细胞类型和内体TLR3背景影响。
(2)寡聚化和信号阈值
MDA5对长dsRNA的识别通常伴随沿RNA分子组装和寡聚化。其信号启动具有一定阈值特征,低水平或短片段dsRNA未必足以诱导强烈MDA5信号。高剂量刺激则可能引发强干扰素反应和细胞毒性,需要同步评估细胞活性。
(3)与RIG-I的互补关系
RIG-I和MDA5对病毒类型和RNA构象的偏好不同,但在许多病毒感染中可存在交叉或阶段性协同。早期感染中RIG-I可能更快响应特定病毒RNA,复制中后期MDA5可能对累积dsRNA中间体产生更强贡献。判断二者作用时,应采用敲低、敲除或特异性刺激物比较。
2.3 RIG-I/MDA5结果判读
(1)按病毒类型判断
流感病毒、VSV、SeV等常用于RIG-I相关信号研究;EMCV、部分小RNA病毒和长dsRNA模拟物常用于MDA5相关研究。不同病毒复制方式、RNA结构和免疫逃逸蛋白不同,不能用一种病毒模型概括所有RLR信号。
(2)按刺激方式判断
转染5′ppp RNA、短dsRNA或病毒RNA提取物更适合评价RIG-I;高分子量Poly(I:C)胞质递送更适合评价MDA5;若Poly(I:C)未转染而直接加到培养基中,结果可能更多涉及TLR3或内吞途径。
(3)按下游信号判断
RIG-I/MDA5均通过MAVS进入TBK1-IRF3和NF-κB通路,因此单看IFNB1或ISG上升无法区分具体上游受体。应结合DDX58、IFIH1敲低/敲除、MAVS缺失、刺激物类型和病毒模型综合判读。
表2 RIG-I与MDA5抗病毒识别特征比较
比较维度 | RIG-I/DDX58 | MDA5/IFIH1 |
主要识别对象 | 5′-三磷酸RNA、短dsRNA、特定病毒RNA结构 | 长dsRNA、病毒复制中间体、高分子量dsRNA |
典型刺激物 | 5′ppp RNA、短dsRNA、部分病毒RNA | 高分子量Poly(I:C)、长dsRNA、特定RNA病毒复制产物 |
关键接头蛋白 | MAVS | MAVS |
主要下游通路 | TBK1-IRF3、NF-κB | TBK1-IRF3、NF-κB |
常见读数 | IFNB1、CXCL10、ISG15、MX1、p-IRF3 | IFNB1、IFIT1、OAS1、MX1、p-IRF3 |
优化重点 | 刺激RNA构型、转染效率、RIG-I激活状态 | dsRNA长度、胞质递送、刺激剂量和细胞毒性 |
判读风险 | RIG-I表达升高不等于激活 | Poly(I:C)结果可能混入TLR3信号 |
3 IFI35在干扰素反应中的调控位置
3.1 IFI35的基本特征
(1)干扰素诱导表达
IFI35属于干扰素诱导相关蛋白,可在病毒感染、I型干扰素刺激或炎症信号激活后上调。其表达变化常与ISG表达谱同步出现,因此可作为干扰素反应状态的指标之一。
(2)反馈调控属性
IFI35并非典型病毒RNA传感器,也不是直接抗病毒酶。其更适合被理解为干扰素反应中的调控因子,可能参与调节RLR相关信号、炎症输出或ISG表达强度。研究IFI35时,应关注其对IFNB1、ISG15、MX1、OAS1、IFIT1和CXCL10等指标的影响。
(3)细胞背景依赖性
IFI35的作用可能受细胞类型、病毒种类、刺激强度和时间窗影响。某些模型中IFI35可能表现为负反馈调节因子,限制过度干扰素反应;在另一些炎症或感染背景中,其表达升高也可能伴随更强的免疫激活状态。实验中不宜仅根据IFI35上调就判断其促进或抑制抗病毒免疫。
3.2 IFI35与RIG-I/MDA5信号的关系
(1)位于识别信号下游
IFI35通常不作为病毒RNA的直接识别受体,而是处在干扰素诱导反应和反馈调节层面。RIG-I或MDA5激活后,IFNB1和ISG程序启动,IFI35可作为其中一个被诱导的基因进入调控网络。
(2)影响反应幅度
若敲低IFI35后IFNB1、ISG15、IFIT1、MX1或CXCL10表达升高,提示其可能限制干扰素反应;若敲低后这些基因下降,则提示其可能支持抗病毒信号维持。具体结论必须与病毒复制读数和上游磷酸化信号联用。
(3)与病毒复制结果关联
IFI35表达改变是否具有抗病毒意义,应通过病毒RNA拷贝数、病毒蛋白、感染细胞比例或病毒滴度判断。若IFI35敲低改变ISG表达但病毒复制无明显变化,说明其可能主要影响信号表型,而非决定性抗病毒效应。
3.3 IFI35实验设计
(1)表达诱导实验
可用IFN-β、IFN-α、病毒感染、5′ppp RNA或Poly(I:C)刺激细胞,检测IFI35的时间依赖性表达。建议设置2 h、6 h、12 h、24 h和48 h等时间点,以区分早期信号基因、经典ISG和后期反馈因子。
(2)敲低或过表达实验
IFI35功能验证可采用siRNA、shRNA、CRISPR或过表达系统。敲低效率需同时在mRNA和蛋白层面确认。过表达实验应避免表达量远高于生理诱导水平,否则可能引入非生理蛋白互作或应激反应。
(3)通路分层检测
评价IFI35对抗病毒信号的影响时,应分层检测p-TBK1、p-IRF3、IFNB1、IFNL1、STAT1/STAT2磷酸化、ISG表达和病毒复制。只检测单一ISG难以定位IFI35作用发生在RLR识别层、干扰素产生层还是JAK-STAT响应层。
表3 IFI35功能研究的检测框架
研究问题 | 推荐指标 | 方法 | 判读重点 |
IFI35是否被干扰素诱导 | IFI35 mRNA、IFI35蛋白 | qPCR、Western blot、IF | 明确诱导时间窗和细胞类型差异 |
IFI35是否影响RLR信号 | p-TBK1、p-IRF3、IFNB1、CXCL10 | Western blot、qPCR、ELISA | 判断其是否作用于干扰素产生层 |
IFI35是否影响JAK-STAT | p-STAT1、p-STAT2、IRF9、ISG15、MX1 | Western blot、qPCR | 判断其是否作用于干扰素响应层 |
IFI35是否影响病毒复制 | 病毒RNA、病毒蛋白、感染率、病毒滴度 | RT-qPCR、IF、Plaque assay | 将信号变化与抗病毒效应关联 |
IFI35是否参与反馈调节 | IFI35敲低/过表达后ISG变化 | siRNA、过表达、RNA-seq | 判断正调控或负反馈属性 |
IFI35是否具有细胞特异性 | 不同细胞系或原代细胞 | qPCR、Western blot、感染实验 | 避免用单一细胞模型外推 |
4 ISG表达调控与抗病毒效应
4.1 ISG表达启动
(1)I型干扰素通路
IFN-β和IFN-α与IFNAR1/IFNAR2结合后,激活JAK1和TYK2,随后促进STAT1与STAT2磷酸化。STAT1、STAT2和IRF9形成ISGF3复合物并结合ISRE元件,诱导一系列ISG表达。
(2)III型干扰素通路
IFN-λ通过IFNLR1和IL10RB受体复合物激活类似的JAK-STAT信号,主要在上皮屏障组织中发挥抗病毒作用。呼吸道、肠道和肝脏上皮模型中,IFN-λ与ISG表达的关系尤其值得单独分析。
(3)直接ISG诱导
部分ISG可在RLR激活后不完全依赖分泌型干扰素而被直接诱导,尤其是早期IRF3或NF-κB相关基因。若需要区分直接诱导和干扰素自分泌放大,可使用JAK抑制剂、IFNAR阻断抗体或条件培养基转移实验。
4.2 典型ISG功能分组
(1)病毒RNA降解与复制抑制
OAS1、OAS2、OAS3和RNase L轴可促进病毒RNA降解;PKR/EIF2AK2可通过eIF2α磷酸化抑制蛋白翻译;IFIT家族可识别异常帽结构或特定病毒RNA特征,限制病毒复制。
(2)病毒进入与释放限制
IFITM1、IFITM2和IFITM3可影响病毒膜融合和进入过程;BST2/Tetherin可限制部分包膜病毒颗粒释放。此类ISG的作用与病毒生命周期阶段密切相关,检测时应结合病毒进入、复制和释放分阶段实验。
(3)泛素样修饰和免疫调节
ISG15可通过ISGylation影响宿主和病毒蛋白功能,也可作为干扰素反应强度的常用标志。MX1/MX2、RSAD2/Viperin、GBP家族等则通过不同机制干扰病毒复制、装配或细胞内定位。
4.3 ISG表达判读
(1)单基因不足以代表抗病毒状态
单一ISG上调只能说明某一通路节点被激活,不能代表完整抗病毒状态。建议至少检测ISG15、MX1、OAS1、IFIT1、RSAD2和CXCL10等多个指标,并结合病毒复制读数判断功能意义。
(2)mRNA与蛋白不同步
ISG mRNA通常较早上升,蛋白表达则受翻译、稳定性和病毒免疫逃逸影响。若mRNA明显升高但蛋白不变,应排查时间点、抗体灵敏度、病毒蛋白翻译抑制和样本处理方式。
(3)过强ISG反应可能伴随细胞损伤
高强度干扰素或dsRNA刺激可诱导细胞周期抑制、凋亡、焦亡或代谢压力。抗病毒实验中应同步检测细胞活性、死亡率和炎症因子,避免将细胞毒性导致的病毒减少误判为特异性抗病毒效应。
表4 常见ISG与抗病毒效应方向
ISG/通路 | 主要功能方向 | 推荐检测方法 | 判读重点 |
ISG15 | ISGylation、干扰素反应标志、免疫调节 | qPCR、Western blot、ELISA | 可作为ISG反应强度指标,但需结合功能读数 |
MX1/MX2 | 干扰病毒复制或核衣壳运输 | qPCR、Western blot | 病毒类型依赖性明显 |
OAS1/OAS2/OAS3 | 激活RNase L,促进RNA降解 | qPCR、Western blot、RNase L相关检测 | 适合RNA病毒复制抑制研究 |
IFIT1/IFIT2/IFIT3 | 识别异常RNA结构,抑制翻译或复制 | qPCR、Western blot | 对病毒RNA帽结构和复制方式敏感 |
IFITM1/2/3 | 限制病毒进入和膜融合 | qPCR、Western blot、感染率检测 | 需结合病毒进入实验 |
RSAD2/Viperin | 干扰病毒复制、脂质代谢和颗粒形成 | qPCR、Western blot | 常作为广谱抗病毒ISG指标 |
PKR/EIF2AK2 | 抑制蛋白翻译,诱导抗病毒应激 | Western blot、p-eIF2α | 需区分抗病毒效应与细胞毒性 |
BST2/Tetherin | 限制包膜病毒释放 | qPCR、Western blot、病毒释放检测 | 适合包膜病毒释放阶段研究 |
CXCL10 | 干扰素诱导趋化因子 | qPCR、ELISA | 反映炎症和免疫细胞募集信号 |
5 实验模型与方法选择
5.1 病毒感染模型
(1)真实病毒感染
真实病毒感染可同时呈现病毒入侵、复制、免疫逃逸和ISG反馈调控,适合评价RIG-I/MDA5-IFN-ISG轴的功能意义。实验需根据病毒生物安全等级、MOI、感染时间和细胞类型设计,并同步检测病毒复制和宿主信号。
(2)假病毒或复制子系统
假病毒和复制子系统适合在较低生物安全风险下研究病毒进入、复制元件或报告信号。此类模型更便于高通量筛选,但不能完整反映真实病毒的免疫逃逸蛋白和复制周期。
(3)病毒模拟物刺激
5′ppp RNA、Poly(I:C)、病毒RNA提取物或合成dsRNA可用于拆解RIG-I/MDA5信号。模拟物实验更适合机制定位,但需要注意递送方式、剂量和细胞毒性,不能完全替代病毒感染结果。
5.2 信号检测方法
(1)qPCR
qPCR适合检测DDX58、IFIH1、IFI35、IFNB1、IFNL1、ISG15、MX1、OAS1、IFIT1、RSAD2和CXCL10等转录水平变化。时间点设计应覆盖早期识别、干扰素产生和ISG放大阶段。
(2)Western blot
Western blot可检测RIG-I、MDA5、IFI35、p-TBK1、p-IRF3、p-STAT1、ISG15、MX1和OAS1等蛋白变化。对通路激活研究而言,磷酸化蛋白和总蛋白应同时检测,避免将表达变化误判为激活变化。
(3)免疫荧光与流式
免疫荧光可观察IRF3、p65或STAT1核转位,以及病毒蛋白和ISG细胞定位。流式适合分析感染细胞比例、ISG阳性细胞群和细胞死亡。对于异质性强的感染模型,单细胞水平检测比整体裂解样本更有信息量。
5.3 功能验证方法
(1)敲低与敲除
DDX58、IFIH1、MAVS、IFI35、STAT1或关键ISG的敲低/敲除可用于确定功能位置。敲低实验应设置非靶向对照、多个siRNA序列和救援实验,避免脱靶效应影响结论。
(2)干扰素补偿实验
若RIG-I或MDA5缺失导致ISG下降,可外源加入IFN-β或IFN-λ判断下游JAK-STAT是否仍可响应。若外源干扰素能恢复ISG表达,说明缺陷主要位于干扰素产生层;若不能恢复,则需考虑受体或STAT通路异常。
(3)病毒复制读数
抗病毒功能必须通过病毒读数验证。常见指标包括病毒RNA拷贝数、病毒蛋白表达、感染细胞比例、病毒滴度、斑块形成和细胞病变。只检测ISG上升不能证明抗病毒效应增强。
表5 RIG-I/MDA5-IFI35-ISG研究方法组合
实验目的 | 推荐处理 | 核心读数 | 关键对照 |
区分RIG-I与MDA5贡献 | 5′ppp RNA、Poly(I:C)、病毒感染 | DDX58、IFIH1、IFNB1、ISG15 | DDX58/IFIH1敲低或敲除 |
判断IFI35是否被诱导 | IFN-β、病毒感染、dsRNA刺激 | IFI35 mRNA和蛋白 | 未刺激对照、时间梯度 |
分析IFI35调控作用 | IFI35 siRNA或过表达 | IFNB1、ISG15、MX1、病毒RNA | 非靶向siRNA、救援实验 |
区分干扰素产生与响应 | 病毒感染后加入JAK抑制剂或外源IFN | p-IRF3、p-STAT1、ISG | IFNAR/JAK-STAT对照 |
评价ISG抗病毒功能 | 关键ISG敲低后感染病毒 | 病毒滴度、病毒蛋白、感染率 | 细胞活性和敲低效率 |
评价炎症输出 | 感染或dsRNA刺激 | CXCL10、IL6、TNF、CCL5 | 细胞死亡和刺激剂量控制 |
6 干扰素与ISG研究相关试剂与材料选型
表6 RIG-I、MDA5、IFI35、TBK1与IRF3信号节点检测和干预产品
应用模块 | 货号 | 产品名称 | 级别/规格 | 体系定位 |
RIG-I检测 | Recombinant RIG-I/DDX58 Antibody | ExactAb™,Validated,重组,3.0mg/mL | 用于检测RIG-I/DDX58蛋白表达,适合病毒感染、Poly(I:C)或IFN诱导实验 | |
RIG-I检测 | Recombinant RNA Sensor RIG-I Antibody | 敲低验证 | 用于RIG-I表达验证和DDX58敲低实验中的蛋白检测 | |
MDA5蛋白/对照 | MDA5 | ≥80%(SDS-PAGE) | 可作为MDA5相关实验中的蛋白对照或方法学材料 | |
MDA5检测 | Recombinant MDA5 Antibody | 重组,ExactAb™,已验证,敲低验证,见COA | 用于检测MDA5/IFIH1蛋白表达,适合dsRNA刺激和病毒感染模型 | |
MDA5检测 | 人黑色素瘤分化相关基因5(MDA5)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本MDA5水平检测 | |
MDA5干预 | IFIH1 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低MDA5/IFIH1,验证MDA5对IFNB1和ISG表达的贡献 | |
MDA5检测 | IFIH1 Mouse mAb | 敲低验证 | 用于IFIH1/MDA5蛋白检测和敲低验证 | |
MDA5检测 | Recombinant IFIH1 Antibody | 敲低验证 | 用于IFIH1蛋白检测,适合MDA5相关通路研究 | |
IFI35检测 | IFI35 Antibody | 无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,高性能,见COA | 用于IFI35蛋白诱导检测,适合IFN、病毒感染或Poly(I:C)刺激实验 | |
IFI35干预 | IFI35 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低IFI35,分析其对IFNB1、ISG15、MX1、CXCL10和病毒复制的调节作用 | |
IFI35蛋白/对照 | Recombinant Human IFI35 Protein | ≥97%(SDS-PAGE) | 可用于IFI35抗体验证、蛋白互作或体外功能研究 | |
MAVS干预 | MAVS Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低MAVS,验证RIG-I/MDA5信号是否依赖MAVS传递 | |
TBK1蛋白/对照 | Recombinant Human TBK1 Protein | ≥90%(SDS-PAGE) | 用于TBK1抗体验证、激酶相关实验或方法学对照 | |
TBK1检测 | Recombinant NAK/TBK1 Antibody | 重组,ExactAb™,已验证,见COA | 用于检测总TBK1蛋白水平 | |
p-TBK1检测 | Recombinant Phospho-NAK/TBK1(S172)Antibody | 敲低验证 | 用于检测TBK1 S172磷酸化,评价RLR下游激酶激活 | |
p-TBK1检测 | Recombinant TBK1(phospho S172)Antibody | 重组,ExactAb™,已验证,见COA | 用于检测p-TBK1,判断IRF3激活上游信号 | |
TBK1干预 | TBK1 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低TBK1,验证IFNB1和ISG诱导是否依赖TBK1 | |
TBK1干预 | TBK1 siRNA-1 |
| 用于TBK1敲低和通路定位 | |
TBK1干预 | TBK1 siRNA-2 |
| 用于TBK1敲低重复验证 | |
TBK1干预 | TBK1 siRNA-3 |
| 用于多序列敲低验证,降低脱靶解释风险 | |
TBK1抑制 | TBK1-IN-1 | Moligand™,10mM in DMSO | 用于抑制TBK1,分析IRF3磷酸化和IFNB1诱导 | |
TBK1抑制 | TBK1-IN-1 | ≥98% | 用于TBK1依赖性抗病毒信号验证 | |
TBK1/IKKε抑制 | TBK1/IKKε-IN-1 |
| 用于抑制TBK1/IKKε通路,分析IRF3相关IFN产生 | |
TBK1/IKKε抑制 | TBK1/IKKε-IN-1(化合物1) | 10mM in DMSO | 用于TBK1/IKKε依赖性通路干预 | |
TBK1/IKKε抑制 | TBK1/IKKε-IN-1(化合物1) | ≥96% | 用于TBK1/IKKε相关抗病毒通路研究 | |
TBK1/IKKε抑制 | TBK1/IKKε-IN-2 | ≥98% | 用于TBK1/IKKε通路抑制剂比较 | |
TBK1/IKKε抑制 | TBK1/IKKε-IN-2 | 10mM in DMSO | 用于细胞实验中TBK1/IKKε信号阻断 | |
TBK1/IKKε抑制 | TBK1/IKKε-IN-4 | ≥99% | 用于高纯度TBK1/IKKε抑制实验 | |
TBK1/IKKε抑制 | TBK1/IKKε-IN-4 | Moligand™,10mM in DMSO | 用于细胞水平通路抑制 | |
TBK1降解 | TBK1 PROTAC 3i | Moligand™ | 用于TBK1蛋白降解模型,分析TBK1缺失对IFN-ISG轴的影响 | |
TBK1降解 | TBK1PROTAC®3i,TANK结合激酶1(TBK1)降解剂 | Moligand™,≥98%(HPLC) | 用于TBK1蛋白降解验证,需结合总TBK1和p-TBK1检测 | |
TBK1 KO对照 | TBK1基因敲除HEK293T细胞RIPA裂解液 |
| 用于TBK1抗体特异性验证和KO对照 | |
TBK1 KO对照 | TBK1基因敲除HEK293T细胞Trizol裂解液 |
| 用于TBK1 mRNA或转录水平对照验证 | |
TBK1检测 | 人TANK结合激酶1(TBK1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本TBK1水平检测 | |
p-TBK1检测 | 人磷酸化TANK结合激酶1(P-TBK1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本p-TBK1水平检测 | |
TBK1检测 | 小鼠TANK结合激酶1(TBK1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠样本TBK1检测 | |
p-TBK1检测 | 小鼠磷酸化TANK结合激酶1(p-TBK1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠样本p-TBK1检测 | |
IRF3干预 | IRF3 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低IRF3,验证IFNB1和ISG诱导对IRF3的依赖性 | |
IRF3检测 | Recombinant IRF3 Antibody | ExactAb™,Validated,重组,0.3mg/mL | 用于检测IRF3总蛋白表达 | |
IRF3检测 | Recombinant IRF3 Antibody | 重组,已验证,ExactAb™,见COA | 用于IRF3蛋白检测和通路分析 | |
IRF3检测 | 人干扰素调节因子3(IRF3)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本IRF3水平检测 | |
IRF3检测 | 小鼠干扰素调节因子3(IRF3)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠样本IRF3水平检测 |
表7 JAK-STAT与ISG表达检测和功能验证相关产品
应用模块 | 货号 | 产品名称 | 级别/规格 | 体系定位 |
STAT1蛋白/对照 | Recombinant Human STAT1 Protein | 无载体,His标签,≥95%(SDS-PAGE),见COA | 用于STAT1抗体验证、标准品或通路研究对照 | |
STAT1蛋白/对照 | Recombinant Human STAT1 Protein | 无载体,生物活性,ActiBioPure™,≥90%(SDS-PAGE),见COA | 可用于STAT1相关功能和方法学验证 | |
STAT1蛋白/对照 | Recombinant Mouse STAT1 Protein | ≥90%(SDS-PAGE) | 用于小鼠STAT1检测或抗体验证 | |
p-STAT1检测 | Recombinant Phospho-STAT1(S727)Antibody | 敲低验证 | 用于检测STAT1 S727磷酸化,评价IFN-JAK-STAT激活状态 | |
STAT1检测 | Recombinant STAT1 Antibody | 敲低验证 | 用于STAT1总蛋白检测 | |
STAT1检测 | Recombinant STAT1 Antibody | 重组,ExactAb™,敲低验证,已验证,见COA | 用于STAT1蛋白表达检测和干扰素响应分析 | |
STAT1检测 | Recombinant STAT1 Antibody | 敲低验证 | 用于STAT1检测和敲低验证 | |
STAT1干预 | STAT1 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低STAT1,验证ISG表达是否依赖JAK-STAT通路 | |
STAT1检测 | STAT1 Mouse mAb | 敲低验证 | 用于STAT1蛋白检测 | |
STAT1抑制 | STAT1/3-IN-1 |
| 用于干预STAT1/3相关信号,需结合p-STAT1验证 | |
STAT1 KO对照 | STAT1基因敲除HEK293T细胞RIPA裂解液 |
| 用于STAT1抗体特异性验证和KO对照 | |
STAT1 KO对照 | STAT1基因敲除HEK293T细胞Trizol裂解液 |
| 用于STAT1转录水平KO对照 | |
STAT1检测 | 人信号传导子及转录激活子1(STAT1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本STAT1水平检测 | |
p-STAT1检测 | 人磷酸化信号传导子及转录激活子1(p-STAT1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本p-STAT1检测 | |
STAT1检测 | 小鼠信号传导转录激活因子1(STAT1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠样本STAT1水平检测 | |
STAT1体内干预 | In vivo Stat1 Mouse Pre-designed siRNA-1 |
| 用于小鼠体内STAT1敲低实验 | |
STAT1体内干预 | In vivo Stat1 Mouse Pre-designed siRNA-2 |
| 用于体内STAT1敲低重复验证 | |
STAT1体内干预 | In vivo Stat1 Mouse Pre-designed siRNA-3 |
| 用于多序列体内STAT1干预设计 | |
STAT2检测 | Recombinant STAT2 Antibody | 敲除验证 | 用于STAT2蛋白检测和KO验证 | |
STAT2干预 | STAT2 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低STAT2,验证ISGF3和ISG诱导依赖性 | |
STAT2 KO对照 | STAT2基因敲除HEK293T细胞RIPA裂解液 |
| 用于STAT2抗体验证和KO对照 | |
STAT2 KO对照 | STAT2基因敲除HEK293T细胞Trizol裂解液 |
| 用于STAT2转录水平KO对照 | |
STAT2检测 | 人信号传导转录激活因子2(STAT2)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本STAT2水平检测 | |
ISG15干预 | ISG15 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低ISG15,验证ISG15对抗病毒效应或ISGylation的作用 | |
ISG15检测 | Recombinant ISG15 Antibody | 重组,ExactAb™,已验证,高性能,见COA | 用于ISG15蛋白检测和ISG反应评价 | |
ISG15检测 | Recombinant ISG15 Antibody | 敲低验证 | 用于ISG15敲低实验中的蛋白验证 | |
ISG15检测 | 人类泛素蛋白(ISG15)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本ISG15水平检测 | |
ISG15检测 | 小鼠泛素交叉反应蛋白(ISG15)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠样本ISG15检测 | |
MX1检测 | MX1 Antibody | 无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,见COA | 用于MX1蛋白检测,评价经典抗病毒ISG诱导 | |
MX1干预 | MX1 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低MX1,分析其在特定病毒复制限制中的作用 | |
OAS1干预 | OAS1 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低OAS1,研究OAS-RNase L轴与RNA病毒复制限制 | |
IFIT1干预 | IFIT1 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低IFIT1,验证异常病毒RNA识别和翻译抑制相关作用 | |
IFIT1B干预 | IFIT1B Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于IFIT1B相关ISG功能研究 | |
RSAD2干预 | RSAD2 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于敲低RSAD2/Viperin,验证其对病毒复制和细胞代谢相关抗病毒效应的影响 |
7 常见问题
7.1 RIG-I和MDA5都能诱导ISG,实验中如何区分二者作用?
应通过刺激物、病毒模型和基因干预联合区分。5′ppp RNA更偏向RIG-I,长dsRNA或高分子量Poly(I:C)更常用于MDA5相关研究;最终仍需通过DDX58或IFIH1敲低/敲除验证具体贡献。
7.2 IFI35是抗病毒效应基因还是调控因子?
IFI35更适合被视为干扰素诱导的调控因子,而非典型直接抗病毒酶。其功能方向需要根据敲低或过表达后IFNB1、ISG表达和病毒复制结果判断,不能仅凭表达上调定义为抗病毒增强。
7.3 ISG15、MX1、OAS1和IFIT1是否可以任选一个作为ISG指标?
不建议只选一个。不同ISG的诱导动力学和抗病毒机制不同,单一指标容易造成误判。建议至少选择3–5个ISG,并同时检测病毒复制和细胞活性。
7.4 Poly(I:C)刺激是否一定代表MDA5激活?
不一定。Poly(I:C)的分子量、递送方式和细胞类型决定其主要识别路径。转染进入胞质的高分子量Poly(I:C)更适合研究MDA5;直接加入培养基时,TLR3信号可能占主要贡献。
7.5 RIG-I或MDA5表达升高是否说明细胞正在识别病毒?
不一定。RIG-I和MDA5本身可被干扰素诱导,表达升高可能只是细胞处于抗病毒预警状态。应结合p-TBK1、p-IRF3、IFNB1、MAVS依赖性和病毒复制变化判断是否存在真实识别激活。
RIG-I和MDA5是病毒RNA识别层的关键受体,IFI35位于干扰素诱导和反馈调控网络中,ISG则构成抗病毒效应执行层。研究该通路时,应从病毒识别、干扰素产生、JAK-STAT响应、ISG表达和病毒复制结果逐层验证,避免将单一基因表达变化直接等同于抗病毒功能改变。
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