纳米抗体的结构特征、工程化设计及其在肿瘤诊断与治疗中的应用
纳米抗体的结构特征、工程化设计及其在肿瘤诊断与治疗中的应用
纳米抗体具有分子量小、表位可及性高和工程化灵活等特点,可用于肿瘤分子成像、靶向递送、免疫调控及工程化细胞治疗。
关键词:纳米抗体;VHH;重链抗体;多价化;多特异性;肿瘤成像;靶向治疗;药物递送;免疫治疗;抗体文库
1 纳米抗体的来源、结构与分子特征
1.1 纳米抗体的生物学来源
纳米抗体通常指骆驼科动物重链抗体的可变结构域(variable domain of heavy-chain-only antibody,VHH)。骆驼科重链抗体天然缺少轻链和重链CH1结构域,单个VHH即可独立完成抗原识别,分子量通常约为12~15 kDa。鲨鱼新抗原受体抗体的可变结构域VNAR也属于单域抗体,但其进化来源、结构组成和抗原结合方式与VHH不同,肿瘤研究中所称的纳米抗体通常主要指VHH。
1.2 VHH的结构组成
VHH保留典型免疫球蛋白折叠,由框架区和三个互补决定区组成。
(1)框架区
VHH原本与轻链接触的部分框架残基具有较强亲水性,可降低缺少轻链后疏水表面暴露造成的聚集,并支持单个结构域独立折叠。
(2)CDR1和CDR2
参与抗原表面的初始识别和结合界面形成,其序列及空间构象会影响VHH的特异性和亲和力。
(3)CDR3
通常比传统抗体重链可变区的CDR3更长,可进入酶活性口袋、受体沟槽和其他空间受限表位;部分VHH还含有连接CDR3与CDR1或框架区的额外二硫键,有助于稳定抗原结合构象。
1.3 纳米抗体的主要分子特征
(1)分子尺寸较小
较小的水动力学半径有利于组织扩散和隐蔽表位识别,也会增加肾小球滤过和快速清除。
(2)表达与工程化相对简便
VHH不需要重链和轻链配对,可在细菌、酵母或哺乳动物细胞中表达,并便于进行串联、融合、定点突变和化学偶联。
(3)稳定性具有克隆差异
部分VHH具有较好的热稳定性、溶解性和复性能力,但不同克隆的聚集倾向、冻融稳定性及制剂耐受性差异明显,仍需逐一验证。
(4)天然缺少Fc功能
单个VHH不能天然介导Fcγ受体结合、补体激活和FcRn回收,因此不具备完整IgG的长循环及Fc效应,需要根据用途进行功能补充。
2 纳米抗体与传统单克隆抗体的性能差异
比较项目 | 纳米抗体 | 传统单克隆抗体 |
基本结构 | 单个VHH结构域 | 两条重链与两条轻链组成的IgG |
分子量 | 通常约12~15 kDa | 通常约150 kDa |
表位可及性 | 较易识别沟槽、裂隙和隐蔽表位 | 更适合形成较大的抗原结合界面 |
实体瘤分布 | 扩散较快,但可能受高亲和力捕获限制 | 渗透相对较慢,组织滞留时间较长 |
血液半衰期 | 单价形式通常较短 | FcRn回收支持较长循环 |
Fc介导效应 | 天然缺失 | 可介导ADCC、ADCP及补体效应 |
工程化特点 | 便于串联、融合和定点偶联 | Fc工程和工业化生产体系成熟 |
主要应用倾向 | 快速成像、多特异性构建和靶向递送 | 长期阻断、系统治疗和免疫效应募集 |
3 纳米抗体的多价化、多特异性与功能偶联设计
纳米抗体工程化的核心是根据靶点分布、作用机制和预期体内暴露,对结合价态、靶点数量、半衰期和功能载荷进行组合设计。
(1)多价化设计
将两个或多个相同VHH串联可提高表观结合强度和受体占据率,并增强对高密度抗原细胞的选择性。多价结合也可能诱导受体聚集、内化或异常激活,因此需结合靶点功能评价具体构型。
(2)多表位设计
将识别同一靶点不同表位的VHH组合,可减少单一表位遮挡或突变造成的逃逸,并可能增强受体阻断和内化。
(3)多特异性设计
将不同肿瘤抗原识别模块组合可扩大对肿瘤异质性的覆盖范围;将肿瘤抗原VHH与CD3、CD16或免疫检查点结合模块连接,则可募集T细胞、NK细胞或将免疫调节作用集中于肿瘤局部。
(4)半衰期延长设计
白蛋白结合VHH、Fc融合或其他增大水动力学半径的结构可降低肾清除并延长循环时间。成像探针通常需要快速降低血液背景,而持续治疗分子需要较长受体占据,因此二者的药代设计不同。
(5)功能偶联设计
纳米抗体可与荧光染料、放射性核素、细胞毒药物、蛋白毒素、光敏剂或纳米载体连接。定点偶联有助于控制修饰位置和载荷数量,减少随机标记对抗原结合界面的干扰。
4 纳米抗体在肿瘤分子成像与诊断中的应用
4.1 肿瘤分子成像
(1)PET与SPECT成像
纳米抗体可连接正电子或单光子发射核素,用于检测肿瘤抗原表达、病灶分布和病灶间异质性。核素半衰期应与纳米抗体快速分布和清除的特点匹配,以减少未结合探针和肾脏摄取造成的非靶组织辐射。
(2)荧光成像
荧光标记纳米抗体可用于细胞成像、组织切片、多重标志物分析和术中导航。近红外染料具有较低组织自发荧光,更适合体内肿瘤边界识别。
(3)多模态成像
将放射性和荧光标记整合于同一纳米抗体,可结合术前全身定位与术中局部导航,但双重修饰需避免影响结合活性和体内分布。
4.2 病理检测与体液标志物分析
纳米抗体尺寸小、表位可及性较好,可作为免疫组化、免疫荧光和生物传感器中的识别分子,尤其适合检测空间受限或容易被传统抗体遮挡的表位。将VHH固定于电化学、光学或微流控平台,还可用于检测体液中的肿瘤抗原、外泌体和其他标志物;检测性能除取决于亲和力外,还受到固定方向、表面密度、样本基质和抗原构象影响。
4.3 成像与诊断结果判读
肿瘤中的高探针摄取可能来源于特异性结合,也可能受到血管通透性、局部血流和非特异性滞留影响。成像研究应联合评价肿瘤摄取值、肿瘤与血液比值、肿瘤与肌肉比值、主要器官分布和时间变化,并设置非结合VHH、靶点阴性模型及竞争阻断组;荧光或放射性信号增强不能直接等同于靶点表达升高,仍需通过组织学或蛋白检测确认。
5 纳米抗体在肿瘤靶向治疗与药物递送中的应用
5.1 肿瘤靶向治疗方式
(1)受体和配体阻断
纳米抗体可结合肿瘤细胞表面受体、配体或酶活性区域,阻断配体结合、受体二聚化和下游信号。单价VHH持续时间较短时,可通过多价化、双表位结合或半衰期延长提高阻断能力。
(2)纳米抗体-药物偶联物
VHH可将细胞毒药物递送至肿瘤细胞。适合的靶点应在肿瘤中高表达、在关键正常组织中表达较低,并在结合后发生内化;连接子还需在循环中稳定,并在内体、溶酶体或胞质环境中释放载荷。
(3)纳米抗体-毒素融合物
将VHH与蛋白毒素或毒素催化结构域融合,可利用靶点介导的内吞杀伤肿瘤细胞。此类分子的效力较高,但正常组织低水平靶点表达和非特异性摄取也可能造成明显毒性。
(4)放射性核素靶向治疗
治疗性α或β核素可通过纳米抗体递送至肿瘤组织,利用辐射杀伤靶细胞和邻近细胞。肾脏重吸收和放射性代谢物滞留是重要限制。
(5)纳米载体靶向递送
纳米抗体可修饰脂质体、聚合物颗粒或其他载体,用于递送化疗药、核酸和光敏剂。载体整体粒径、表面电荷和蛋白冠会重新决定体内分布,因此游离VHH的高渗透性不能直接外推至大型载体。
5.2 靶向递送的关键评价因素
药物递送效果需同时考虑靶点表达、内化速度、胞内运输、连接子稳定性、载荷释放和正常组织摄取。仅观察到纳米抗体与细胞表面结合,不能证明载荷能够进入适宜的胞内区室;仅有体外杀伤结果,也不能替代对血清稳定性、游离载荷和主要器官分布的评价。
6 纳米抗体在肿瘤免疫调控与细胞治疗中的作用
6.1 肿瘤免疫调控方式
(1)免疫检查点阻断
纳米抗体可阻断肿瘤细胞和免疫细胞之间的抑制性受体-配体相互作用,也可与肿瘤抗原识别模块组合,提高免疫调节分子在肿瘤局部的浓度。
(2)T细胞募集
肿瘤抗原VHH与CD3结合模块连接后,可同时结合肿瘤细胞和T细胞,诱导免疫突触形成和靶细胞杀伤。
(3)NK细胞募集
肿瘤靶向VHH与CD16或其他NK细胞受体结合模块组合,可促进NK细胞接近并杀伤肿瘤细胞。
(4)肿瘤微环境调控
纳米抗体可靶向免疫抑制性细胞因子、趋化因子、髓系细胞或异常基质成分,改变免疫细胞浸润和局部免疫抑制状态。

图1 纳米抗体在肿瘤靶向治疗、药物递送与免疫微环境调控中的应用示意图
6.2 纳米抗体在工程化细胞中的应用
VHH可替代传统单链抗体可变片段作为CAR-T或CAR-NK的胞外识别结构域,其结构简单、链间错配风险较低,便于构建双靶点和多靶点CAR。VHH还可在细胞内表达为胞内纳米抗体,干预致癌蛋白、融合蛋白或信号复合物,并可与蛋白降解模块连接以降低靶蛋白水平。
纳米抗体在游离状态下具有较高结合能力,并不代表其在CAR或多特异性构型中一定具有理想功能。表位位置、铰链长度、跨膜区、共刺激结构域和免疫突触几何结构均会影响最终活性;过强或持续的效应细胞激活还可能引起细胞因子释放、耗竭和正常组织损伤。
7 纳米抗体文库构建、筛选与制备技术
7.1 纳米抗体文库类型
(1)免疫文库
来源于经目标抗原免疫的骆驼科动物,通常较容易获得经过体内亲和成熟的特异性克隆,但需要动物免疫周期。
(2)天然文库
来源于未经特定抗原免疫的个体,可用于多种靶点筛选,但通常需要较大的有效库容量。
(3)合成与半合成文库
以稳定VHH框架为基础人工设计CDR多样性,可减少动物依赖并提高序列可控性,其性能取决于框架选择、氨基酸分布和实际功能多样性。
7.2 纳米抗体筛选方法
(1)噬菌体展示
通过多轮抗原吸附、洗涤和扩增富集结合克隆,技术成熟且适用于大规模文库。
(2)酵母展示
可结合流式细胞分选,同时评价VHH表面表达量和抗原结合能力。
(3)核糖体展示与mRNA展示
不受细胞转化效率限制,可建立更大规模的体外文库,但后续克隆表达和功能验证要求较高。
(4)细胞筛选
针对膜受体时,可使用靶点阳性细胞进行筛选,并使用靶点阴性细胞扣除非特异性克隆,以提高对天然构象表位的识别能力。
7.3 亲和成熟、人源化与制备
亲和成熟可通过CDR定点突变、易错PCR和二级文库筛选提高结合能力,但应同步评价特异性、解离速率、表达量和聚集风险。人源化主要通过调整VHH框架残基降低潜在免疫原性,同时保留维持独立折叠和CDR构象的关键位点;过度替换可能降低稳定性和亲和力,需要通过回复突变和实验验证进行修正。
纳米抗体可在细菌、酵母或哺乳动物细胞中表达。制备后需检测纯度、单体比例、分子量、聚集、内毒素、结合亲和力和生物学活性;多价、融合或偶联分子还需评价结构完整性、标记效率、血清稳定性及改造后的结合能力。
8 纳米抗体临床转化的药代动力学、安全性与技术挑战
纳米抗体临床转化需要同时解决体内暴露、安全性、靶点选择和生产一致性问题。
(1)快速清除与肾脏摄取
单价VHH通常快速经肾小球滤过,并可能在近端肾小管中重吸收。快速清除适合成像,但会降低治疗性分子的持续暴露,并增加放射性或毒性载荷的肾脏蓄积。
(2)免疫原性
非人源框架、CDR、人工连接肽和新形成的结构界面均可能诱导抗药抗体。人源化可降低部分风险,但不能完全消除免疫原性。
(3)正常组织毒性
高亲和力、多价化和细胞毒载荷会放大正常组织低水平靶点表达造成的损伤,因此需综合评价肿瘤表达比例、正常组织分布、可溶性抗原和靶点内化。
(4)肿瘤异质性与抗原逃逸
单一靶点可能无法覆盖全部肿瘤细胞,双靶点或多靶点设计可降低逃逸风险,但会增加正常组织交叉结合和作用机制分析的复杂度。
(5)分子稳定性与聚集
多价化、Fc融合和疏水载荷偶联可能增加聚集、降解和表达量下降,需要建立能够区分单体、聚集体、降解产物和不同偶联形式的质量控制体系。
(6)剂量与作用机制验证
临床剂量不能仅由体外亲和力推算,还需结合药代动力学、组织分布、受体占据和药效标志物,区分暴露不足、靶点不依赖和下游耐药等不同原因。
9 纳米抗体研究相关产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 研究环节 | 主要应用 |
VHH Human IgG1-Fc, anti-HEL | 无载体,重组,ExactAb™,低内毒素,无叠氮钠,已验证,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE),见COA | VHH-Fc融合设计 | 用作Fc融合纳米抗体模型,研究分子二价化、Fc功能引入和半衰期延长 | |
Human IgG1-VHH (AF647), anti-HEL | ExactAb™,已验证,Ex:650nm,Em:668nm,0.5 mg/mL | 远红光标记VHH | 用于观察VHH结合、细胞定位和组织分布,并作为荧光标记纳米抗体模型 | |
Human IgG1-VHH (Biotin), anti-HEL | ExactAb™,已验证,0.5 mg/mL | 生物素标记VHH | 用于ELISA、 亲和捕获和 链霉亲和素 检测体系, 评价纳米抗体 结合性能 | |
Human IgG1-VHH (FITC), anti-HEL | ExactAb™,已验证,Ex:498nm,Em:517nm,0.5 mg/mL | 绿色荧光标记VHH | 用于流式细胞术和荧光成像,验证VHH标记后的抗原结合能力 | |
EZ-HiFi无缝克隆试剂盒 | BioReagent,分子生物学级,无菌 | 纳米抗体构建 | 用于VHH序列克隆、连接肽插入及多价、多特异性表达载体构建 | |
快速多片段DNA无缝克隆预混液 | BioReagent,2× | 多模块序列组装 | 用于一次性组装多个VHH、Fc、标签或功能结构域 | |
通用型一步法无缝克隆试剂盒 | — | VHH载体构建 | 用于纳米抗体表达载体、融合蛋白和工程化构型的快速组装 | |
BDP FL NHS酯,光稳定的绿色荧光染料 | Ex:502nm,Em:511nm,≥95% | 纳米抗体荧光偶联 | 通过活性酯标记VHH或VHH融合蛋白,用于绿色荧光成像和结合检测 | |
Cyanine 3,SE,橙色荧光染料 | ≥95%(HPLC) | 纳米抗体荧光偶联 | 用于纳米抗体橙红光标记和多通道成像 | |
Cyanine 5,SE,红色荧光染料 | Ex:647nm,Em:665nm,≥95%(HPLC) | 远红光偶联 | 用于细胞、组织和体内分布成像,标记后需重新验证亲和力和非特异性结合 | |
Cypate(近红外荧光染料) | BioReagent,生物染色剂,适用于荧光分析,用于显微镜,≥97% | 近红外成像设计 | 用于构建近红外荧光纳米抗体探针,研究肿瘤定位和组织分布 | |
人B细胞成熟抗原酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | BCMA靶点定量 | 检测样本中的BCMA水平,为BCMA靶向纳米抗体或工程化细胞研究提供靶点信息 | |
人癌胚抗原(CEA)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent,用于酶联免疫(ELISA) | CEA靶点定量 | 检测可溶性CEA,用于CEA靶向纳米抗体模型的样本分层和结果验证 | |
人癌胚抗原相关的细胞粘附分子6(CEACAM6)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | CEACAM6靶点定量 | 用于CEACAM6相关肿瘤标志物研究及靶向分子开发中的样本检测 | |
人糖抗原125(CA125)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 肿瘤标志物检测 | 用于检测CA125水平,辅助评价相关肿瘤模型和诊断研究样本 | |
人细胞毒性T-淋巴细胞关联抗原4(CTLA4)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 免疫检查点检测 | 检测CTLA4水平,辅助开展免疫检查点纳米抗体和免疫调控研究 | |
人黑色素瘤相关抗原(MAGE-A3)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 肿瘤抗原检测 | 用于MAGE-A3相关肿瘤样本评价和靶抗原研究 | |
内毒素去除亲和层析介质 | BioReagent,50% v/v | 纳米抗体样品纯化 | 去除重组纳米抗体或融合蛋白制剂中的内毒素,适用于细胞和动物功能实验前处理 | |
内毒素清除试剂 | BioReagent,分子生物学级,for DNA and RNA applications | 核酸样品内毒素控制 | 降低纳米抗体表达质粒或核酸递送样品中的内毒素干扰 | |
无内毒素质粒大提试剂盒 | BioReagent,for DNA and RNA applications | 表达载体制备 | 制备用于细胞转染和工程化细胞构建的低内毒素VHH表达质粒 | |
Anti-Flag纳米抗体磁珠 | BioReagent,Magnetic Bead Content: ≥10 mg/mL;Bead Diameter: 2 μm | 标签蛋白富集 | 用于Flag标记VHH、融合纳米抗体和相关蛋白复合物的免疫沉淀及纯化 | |
Anti-GFP纳米抗体磁珠 | BioReagent,Magnetic Bead Content: ≥10%(V/V);Bead Diameter: 10~30 μm | GFP融合蛋白富集 | 用于GFP融合VHH表达验证、亲和纯化和蛋白互作分析 | |
Anti-HA纳米抗体磁珠 | BioReagent,Magnetic Bead Content: ≥10 mg/mL;Bead Diameter: 2 μm | HA标签蛋白富集 | 用于HA标记纳米抗体或工程化融合蛋白的免疫沉淀 | |
Anti-V5纳米抗体磁珠 | BioReagent,Magnetic Bead Content: ≥10 mg/mL;Bead Diameter: 2 μm | V5标签蛋白富集 | 用于V5标记VHH的表达验证、纯化和相互作用研究 | |
Anti-mCherry纳米抗体磁珠 | BioReagent,Magnetic Bead Content: ≥10%(V/V) | 荧光融合蛋白富集 | 用于mCherry融合纳米抗体或相关复合物的免疫沉淀 与纯化 | |
Flag标签蛋白免疫沉淀试剂盒(纳米抗体磁珠法) | BioReagent,即用型,for IP | Flag融合蛋白免疫沉淀 | 用于Flag标记VHH及其结合复合物的快速富集和互作验证 | |
GFP标签免疫(共)沉淀试剂盒(纳米抗体磁珠法) | BioReagent,for IP | GFP融合蛋白共沉淀 | 用于分析GFP融合纳米抗体的表达、稳定性和蛋白相互作用 | |
HA标签免疫(共)沉淀试剂盒(纳米抗体磁珠法) | BioReagent,for IP | HA融合蛋白共沉淀 | 用于HA标记VHH及工程化融合蛋白的互作分析 | |
RFP标签免疫(共)沉淀试剂盒(纳米抗体磁珠法) | BioReagent,for IP | RFP融合蛋白共沉淀 | 用于红色荧光蛋白融合VHH的纯化和蛋白复合物研究 | |
V5标签免疫(共)沉淀试剂盒(纳米抗体磁珠法) | BioReagent,即用型,for IP | V5融合蛋白免疫沉淀 | 用于V5标记纳米抗体和融合构建体的表达验证与相互作用研究 |
纳米抗体的优势不仅在于分子尺寸小,更在于可围绕靶点特征和作用机制进行多价化、多特异性、半衰期和功能载荷设计。只有将靶点选择、体内分布、结合与功能活性、制备质量和安全性联合评价,才能将其结构优势转化为可靠的肿瘤诊断与治疗效果。
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