急性肾损伤(AKI/ARF)动物模型构建与评价
急性肾损伤(AKI/ARF)动物模型构建与评价
急性肾衰竭(Acute Renal Failure,ARF)在现代研究和临床表述中更常用“急性肾损伤”(Acute Kidney Injury,AKI)这一术语。AKI是指肾功能在短时间内快速下降,导致含氮代谢废物排泄障碍、体液容量调节异常、电解质紊乱和酸碱平衡失调。
关键词:急性肾损伤;急性肾衰竭;缺血再灌注损伤;顺铂肾毒性;横纹肌溶解;脓毒症相关AKI;KIM-1;NGAL
1 AKI动物模型的研究定位
1.1 ARF与AKI的术语关系
ARF强调肾功能突然衰竭,多用于早期文献和传统表述;AKI强调肾脏从轻度损伤到明显功能衰竭的连续病理过程,更适合描述肾小管损伤、炎症反应、微循环障碍和分子标志物变化。因此,在动物实验设计中,建议优先使用AKI作为模型名称,ARF可作为传统术语或背景说明保留。
1.2 造模目的
AKI模型的建立通常服务于以下研究目标:
(1)模拟临床病因
包括缺血再灌注、药物肾毒性、横纹肌溶解、脓毒症、梗阻性损伤和多因素复合损伤等。
(2)解析损伤机制
重点关注氧化应激、炎症反应、线粒体功能障碍、细胞凋亡、坏死性凋亡、焦亡、铁死亡和内皮损伤等过程。
(3)筛选干预药物
用于评价抗氧化剂、抗炎药物、线粒体保护剂、铁死亡抑制剂、NLRP3抑制剂、Nrf2通路激活剂等潜在肾保护策略。
(4)验证生物标志物
常检测血肌酐、尿素氮、胱抑素C、NGAL、KIM-1、IL-18、尿蛋白、尿沉渣及组织病理损伤评分。
(5)研究AKI向CKD转化
部分模型可用于观察肾小管间质纤维化、毛细血管稀疏、慢性炎症和肾功能不完全恢复。
1.3 模型选择原则
AKI模型选择应与研究问题直接对应,而不是单纯追求造模速度或血肌酐升高幅度。
表1 常用AKI动物模型选择要点
模型类型 | 主要模拟病因 | 造模试剂/诱导因素 | CAS号 | 核心损伤部位 | 主要优势 | 适用研究方向 |
缺血再灌注损伤模型 | 肾移植、休克、心脏手术相关低灌注 | 肾蒂/肾动脉夹闭后再灌注 | - | 近端小管、血管内皮、髓质外带 | 临床相关性强,机制明确 | 缺血缺氧、再灌注损伤、炎症、修复 |
顺铂诱导模型 | 化疗药物肾毒性 | 顺铂 | 近端肾小管 | 操作相对简单,损伤稳定 | 药物肾毒性、线粒体损伤、凋亡 | |
庆大霉素诱导模型 | 氨基糖苷类抗生素肾毒性 | 庆大霉素硫酸盐 | 近端肾小管 | 适合抗生素肾毒性研究 | 溶酶体损伤、氧化应激、肾小管坏死 | |
甘油诱导横纹肌溶解模型 | 挤压伤、剧烈运动、肌红蛋白尿 | 甘油 | 肾小管管腔和小管上皮 | 模拟肌红蛋白尿性AKI | 管型阻塞、氧化损伤、铁死亡 | |
LPS诱导模型 | 内毒素血症 | 脂多糖(LPS) | 肾小管、内皮、免疫系统 | 操作简便,炎症反应明显 | TLR4/NF-κB、细胞因子风暴 | |
CLP模型 | 多菌性脓毒症 | 盲肠结扎穿孔术 | - | 全身炎症、微循环和肾小管 | 更接近复杂脓毒症 | 脓毒症相关AKI、免疫失衡 |
基因修饰模型 | 特定基因功能异常 | 基因敲除/过表达/条件性敲除 | - | 取决于靶基因和启动子 | 可解析特定分子机制 | 自噬、氧化应激、纤维化、修复 |
2 缺血再灌注损伤模型
2.1 造模原理
缺血再灌注损伤(Ischemia-Reperfusion Injury,IRI)模型通过暂时阻断肾脏血流造成缺血,再恢复血流形成再灌注损伤。该模型常用于模拟肾移植、休克、主动脉手术、心脏手术或严重低血压后发生的缺血性AKI。
2.2 造模方法
(1)动物选择
常用小鼠、大鼠和家兔,其中小鼠适合基因修饰研究,大鼠适合生理指标、药效和病理学评价。
(2)手术方式
常见方式包括双侧肾蒂夹闭、单侧肾缺血合并对侧肾切除、单侧肾缺血保留对侧肾等。双侧夹闭更容易出现明显肾功能改变,单侧模型更适合观察局部损伤和修复过程。
(3)缺血时间
小鼠常用缺血时间约20–45min,大鼠常用约30–60min。缺血时间过短可能损伤不足,缺血时间过长会显著增加死亡率。具体时间需根据动物种属、年龄、体重、麻醉方式、夹闭部位和实验终点预实验优化。
(4)关键操作
造模过程中应维持体温稳定,避免低体温降低损伤程度;夹闭后肾脏颜色应变暗,松夹后应观察血流恢复和肾脏颜色回转。体温、麻醉深度、补液、手术时长和术后护理都会影响模型稳定性。
2.3 机制通路
IRI模型的核心病理过程包括缺血期能量耗竭和再灌注期炎症氧化损伤。
(1)线粒体损伤和氧化应激
缺血导致ATP生成下降,Na⁺/K⁺-ATPase功能受损,细胞水肿和离子稳态破坏;再灌注后氧供应恢复,线粒体和NADPH氧化酶产生大量ROS,诱发脂质、蛋白和DNA氧化损伤。
(2)炎症反应
损伤相关分子模式释放后可激活TLR4/NF-κB通路、NLRP3炎症小体和补体系统,促进TNF-α、IL-1β、IL-6、IL-18等炎症因子表达。
(3)细胞死亡
肾小管上皮细胞可发生凋亡、坏死、坏死性凋亡、焦亡和铁死亡。Bax/Bcl-2失衡、Caspase-3活化、RIPK1/RIPK3/MLKL通路激活、Caspase-1/Gasdermin D介导焦亡以及GPX4下降均可参与损伤进程。
(4)修复与纤维化
损伤后肾小管上皮细胞可进入去分化、增殖和再分化过程;若修复不完全,则可能出现持续炎症、毛细血管稀疏、TGF-β/Smad信号激活和肾间质纤维化。
2.4 关键检测指标
IRI模型常检测以下指标:
(1)肾功能指标
血肌酐、尿素氮、胱抑素C、尿量、尿渗透压和电解质。
(2)肾损伤标志物
NGAL、KIM-1、Clusterin、IL-18、尿蛋白和尿沉渣。
(3)炎症相关指标
NLRP3、Caspase-1、IL-1β、IL-18、TNF-α、IL-6、NF-κB p65、HMGB1。
(4)氧化应激指标
ROS、MDA、4-HNE、SOD、GSH/GSSG、Nrf2、HO-1。
(5)组织学评价
HE、PAS、TUNEL、肾小管坏死评分、管型形成、刷状缘脱落和炎症细胞浸润。
3 肾毒性药物诱导AKI模型
3.1 顺铂诱导AKI模型
顺铂是经典化疗药物肾毒性模型诱导剂,主要损伤近端肾小管。该模型适合研究药物性AKI、线粒体损伤、DNA损伤反应、凋亡、炎症和肾保护药物筛选。
(1)造模方法
大鼠常用顺铂单次腹腔注射,剂量多在5–10mg/kg范围内;小鼠常用剂量需根据品系和体重调整。给药后通常在3–5d出现明显肾功能异常和肾小管损伤。
(2)损伤机制
顺铂可经有机阳离子转运体OCT2和铜转运相关蛋白进入肾小管细胞,引发DNA损伤、线粒体呼吸链障碍、ROS累积和细胞色素C释放。p53、Bax、Caspase-3等凋亡信号被激活,同时可伴随炎症反应、内质网应激和铁死亡改变。
(3)关键指标
常检测血肌酐、尿素氮、KIM-1、NGAL、OCT2、CTR1、p53、Bax、Bcl-2、Cleaved Caspase-3、Nrf2、HO-1、GPX4、ACSL4和4-HNE。
3.2 庆大霉素诱导AKI模型
庆大霉素属于氨基糖苷类抗生素,可在肾近端小管细胞内蓄积,引发溶酶体功能异常、线粒体损伤和氧化应激。该模型适用于抗生素相关肾毒性、近端小管损伤和抗氧化干预研究。
(1)造模方法
常采用连续皮下或腹腔注射庆大霉素,给药时间多为5–10d,剂量需根据动物种属和实验目的设置。参考范围可为100–200mg/kg/d,但应通过预实验平衡损伤程度和死亡风险。
(2)损伤机制
庆大霉素可通过内吞作用在近端小管上皮细胞蓄积,引起溶酶体磷脂沉积、线粒体功能障碍、ROS升高和肾小管上皮细胞坏死或凋亡。
(3)关键指标
常检测肾功能、KIM-1、NGAL、NAG、MDA、SOD、Caspase-3、Bax/Bcl-2、肾小管坏死评分和刷状缘损伤。
3.3 模型应用注意事项
肾毒性药物诱导模型对动物品系、年龄、性别、水合状态、给药途径和剂量高度敏感。顺铂模型过量时易造成严重全身毒性和体重快速下降;庆大霉素模型给药周期过长可导致明显死亡或慢性损伤。因此,实验前应明确研究终点是急性损伤、恢复过程还是慢性转归。
4 甘油诱导横纹肌溶解相关AKI模型
4.1 造模原理
甘油诱导横纹肌溶解模型用于模拟挤压伤、严重肌肉损伤、剧烈运动、缺血性肌坏死或药物相关横纹肌溶解导致的肌红蛋白尿性AKI。肌红蛋白大量释放后经肾小球滤过,在酸性尿环境中形成管型,造成肾小管阻塞和直接毒性损伤。
4.2 造模方法
常采用大鼠或小鼠后肢肌肉注射50%甘油。大鼠常用剂量范围约8–10mL/kg,小鼠剂量需按体重和品系调整。造模前禁水可增强模型稳定性,但也会加重动物应激和死亡风险,应根据伦理要求和实验目的谨慎设置。
4.3 机制通路
(1)管型阻塞
肌红蛋白在酸性尿液中沉积,可与Tamm-Horsfall蛋白等形成管型,导致肾小管腔阻塞和管内压力升高。
(2)氧化损伤
肌红蛋白释放的血红素铁可催化Fenton反应,促进ROS生成,诱导脂质过氧化和线粒体损伤。
(3)铁死亡
游离铁增加、脂质过氧化堆积和GPX4功能下降可共同促进铁死亡。ACSL4上调、MDA和4-HNE升高、GSH耗竭等均提示铁死亡参与。
4.4 关键检测指标
(1)肌肉损伤指标
肌红蛋白、肌酸激酶、LDH。
(2)肾功能指标
血肌酐、尿素氮、尿量、尿色、尿肌红蛋白。
(3)铁代谢和铁死亡指标
Ferritin、Hepcidin、Transferrin receptor、GPX4、ACSL4、SLC7A11、MDA、4-HNE。
(4)组织学指标
管型形成、肾小管坏死、刷状缘脱落、髓质外带损伤和炎症细胞浸润。
5 脓毒症相关AKI模型
5.1 LPS诱导模型
脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)诱导模型用于模拟内毒素血症相关炎症反应。该模型操作相对简便,炎症反应迅速,适合研究TLR4/MyD88/NF-κB通路、细胞因子释放、内皮损伤和肾小管炎症应答。
(1)造模方法
小鼠常用LPS腹腔注射或静脉注射,参考剂量约5–10mg/kg。剂量、给药途径和观察时间会显著影响死亡率和肾损伤程度。低剂量更适合炎症机制研究,高剂量更容易形成系统性休克样状态。
(2)机制通路
LPS可通过TLR4/MyD88通路激活NF-κB,诱导TNF-α、IL-6、IL-1β等炎症因子释放;同时可导致内皮损伤、微循环障碍、NO调节异常、线粒体功能下降和肾小管应激反应。
(3)关键指标
TLR4、MyD88、NF-κB p65、TNF-α、IL-6、IL-1β、ICAM-1、VCAM-1、Caspase-1、Gasdermin D、NGAL、KIM-1。
5.2 CLP模型
盲肠结扎穿孔术(Cecal Ligation and Puncture,CLP)通过诱导多菌性腹腔感染模拟复杂脓毒症。与LPS模型相比,CLP更接近临床脓毒症的感染过程、免疫反应和多器官损伤特点。
(1)造模方法
CLP通过结扎部分盲肠并穿刺,使肠内容物进入腹腔引发多菌感染。模型严重程度受结扎长度、穿刺针号、穿刺次数、挤出粪便量、补液、抗生素使用和术后护理影响。
(2)机制通路
CLP可引发全身炎症反应、免疫抑制、内皮屏障破坏、肾微循环灌注异常和肾小管代谢重编程。焦亡、凋亡、线粒体损伤和自噬异常均可能参与脓毒症相关AKI。
(3)关键指标
除肾功能和组织学指标外,还应监测体温、活动状态、细菌负荷、血清炎症因子、乳酸水平、内皮损伤标志物和多器官损伤指标。
5.3 模型应用注意事项
LPS模型更适合快速、可控地研究内毒素炎症通路;CLP模型更适合评价复杂感染、免疫失衡和临床转化相关干预。脓毒症相关AKI不一定表现为显著肾小管坏死,部分情况下肾功能异常与微循环障碍、炎症介质、线粒体功能下降和细胞代谢改变密切相关。
6 基因修饰AKI模型
6.1 模型定位
基因修饰模型通常不是单独模拟某一种临床AKI病因,而是用于回答“某个基因或通路是否参与AKI发生、修复或慢性化”的机制问题。常见策略包括全身性敲除、条件性敲除、转基因过表达、报告基因小鼠和细胞特异性基因编辑。
6.2 常见研究方向
(1)氧化应激调控
如Nrf2、Keap1、HO-1等通路,用于研究抗氧化防御对AKI的影响。
(2)缺氧应答
如HIF-1α、HIF-2α及其下游VEGF、EPO相关通路,用于研究低氧适应和血管修复。
(3)自噬调控
如Atg5、Atg7、Beclin-1、LC3相关模型,用于评价肾小管上皮自噬在损伤和修复中的作用。
(4)炎症和焦亡
如NLRP3、Caspase-1、Gasdermin D、TLR4、MyD88等,用于解析炎症小体和先天免疫通路。
(5)纤维化转化
如TGF-β、Smad3、α-SMA、Collagen I相关模型,用于研究AKI后肾间质纤维化和AKI向CKD转化。
6.3 应用要点
基因修饰模型通常需要与IRI、顺铂、LPS、CLP或甘油模型叠加使用,才能判断基因在特定病因背景下的作用。若采用肾小管特异性、足细胞特异性或内皮细胞特异性敲除模型,应明确启动子表达部位、敲除效率、基础肾表型和损伤后的时间窗变化。
表2 AKI动物模型评价与机制研究相关产品
应用模块 | 货号 | 产品名称 | 级别和纯度 | 应用定位 |
氧化应激干预 | N-乙酰-L-半胱氨酸(NAC) | Moligand™, 用于细胞培养, ≥99% | 用于AKI氧化应激和肾保护干预研究,适合IRI、药物肾毒性及体外肾小管损伤模型 | |
氧化应激干预 | N-乙酰-L-半胱氨酸(NAC) | Moligand™, ≥99% | 用于ROS清除、抗氧化干预和机制验证 | |
ROS检测 | 2,7-二氯二氢荧光素二乙酸酯(DCFH-DA) | ≥97% | 用于检测细胞或组织总ROS水平,评价AKI相关氧化应激 | |
ROS检测 | 2,7-二氯二氢荧光素二乙酸酯 | 10mM in DMSO | 用于细胞实验中ROS荧光检测 | |
常规组织病理染色 | 苏木精 | for microscopy (Hist.), indicator (pH 5.0-6.0) | 用于HE染色中的细胞核染色,观察肾小管坏死、管型形成和炎症浸润 | |
常规组织病理染色 | 苏木精 | 生物染色剂 | 用于肾组织常规病理染色 | |
常规组织病理染色 | 伊红染色液 | 5%(w/v) | 与苏木精配合用于HE染色,观察肾组织结构和细胞损伤 | |
常规组织病理染色 | 水溶性伊红染液 |
| 用于组织切片胞质和细胞外基质染色 | |
PAS染色 | 高碘酸 | ACS, ≥99% | PAS染色关键试剂,用于观察肾小管刷状缘、基底膜和管型改变 | |
PAS染色 | 高碘酸溶液 | 7%(v/v)Aqueous | 可用于PAS相关氧化步骤或组织化学染色体系 | |
PAS染色 | 高碘酸溶液 | 8%(w/v)Aqueous | 用于组织糖类结构、基底膜和管型相关染色评价 | |
纤维化评价 | Masson三色染色试剂盒 | BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜 | 用于观察AKI后肾间质胶原沉积和纤维化改变 | |
纤维化评价 | Masson三色染色试剂盒(固绿法) | BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜 | 用于AKI向CKD转化过程中胶原纤维染色 | |
纤维化评价 | 改良Masson三色染色液 | BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜 | 用于肾组织间质纤维化和胶原沉积观察 | |
细胞凋亡检测 | TUNEL细胞凋亡检测试剂盒(显色法) | BioReagent, 用于显微镜, 比色法 | 用于组织切片中凋亡细胞显色检测,评价肾小管上皮细胞凋亡 | |
细胞凋亡检测 | TUNEL细胞凋亡检测试剂盒(显色法, 含凋亡阳性诱导剂) | BioReagent, 用于显微镜, 比色法 | 用于AKI组织凋亡检测,并提供阳性诱导对照 | |
细胞凋亡检测 | 一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒(绿色,FITC) | BioReagent, 适用于荧光分析, 生物技术级 | 用于荧光法检测AKI组织或细胞凋亡 | |
细胞凋亡检测 | 一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒(红色,Cy3) | BioReagent, 适用于荧光分析, 生物技术级 | 用于多通道荧光成像中的凋亡检测 | |
肾功能检测 | 肌酐(Cr)含量检测试剂盒(PA速率, 微量法) | BioReagent | 用于检测血清、尿液或组织样本肌酐水平,评价AKI肾功能损伤 | |
肾功能检测 | 肌酐(Cr)含量检测试剂盒(肌氨酸氧化酶, 微量法) | BioReagent | 用于AKI动物模型肌酐定量检测 | |
肾功能检测 | 肌酐(Cr)含量检测试剂盒(肌氨酸氧化酶, 比色法) | BioReagent | 用于比色法检测肌酐水平,评价肾小球滤过功能下降 | |
肾功能检测/质控 | 尿素氮溶液标准物质 | 1000.0mg/L in water | 用于尿素氮检测方法校准或质控 | |
细胞损伤检测 | 乳酸脱氢酶(LDH)细胞毒性检测试剂盒(WST-8, 微量法) | BioReagent | 用于体外肾小管细胞损伤和药物肾毒性评价 | |
细胞损伤检测 | 乳酸脱氢酶(LDH)活性检测试剂盒(LD-L, 比色法) | BioReagent | 用于检测LDH活性,辅助评价横纹肌溶解或细胞损伤 | |
细胞损伤检测 | 乳酸脱氢酶(LDH)活性检测试剂盒(LD-P, 紫外比色法) | BioReagent | 用于紫外比色法检测LDH活性 | |
细胞损伤检测 | 大鼠乳酸脱氢酶(LDH)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于大鼠AKI模型LDH水平检测 | |
细胞损伤检测 | 小鼠乳酸脱氢酶(LDH)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠AKI模型LDH水平检测 | |
横纹肌溶解标志物检测 | 大鼠肌红蛋白(MYO/MB)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于甘油诱导横纹肌溶解相关AKI模型评价 | |
横纹肌溶解标志物检测 | 小鼠肌红蛋白(MYO/MB)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠横纹肌溶解相关AKI模型肌红蛋白检测 | |
AKI早期损伤标志物检测 | 大鼠中性粒细胞明胶酶相关脂质运载蛋白(NGAL)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 检测大鼠NGAL水平,评价早期肾小管损伤 | |
AKI早期损伤标志物检测 | 小鼠中性粒细胞明胶酶相关脂质运载蛋白(NGAL)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 检测小鼠NGAL水平,评价AKI早期损伤 | |
AKI早期损伤标志物检测 | 大鼠肾损伤分子1(Kim-1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 检测大鼠KIM-1水平,评价近端肾小管损伤 | |
AKI早期损伤标志物检测 | 小鼠肾损伤分子1(Kim-1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 检测小鼠KIM-1水平,评价肾小管损伤 | |
炎症/AKI标志物检测 | 大鼠白细胞介素18(IL-18)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于大鼠炎症性AKI和肾小管损伤评价 | |
炎症/AKI标志物检测 | 小鼠白细胞介素18(IL-18)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠AKI炎症反应和炎症小体相关研究 | |
炎症/AKI标志物检测 | 小鼠白细胞介素18前体(pro-IL-18)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于评价IL-18前体及炎症小体相关变化 | |
炎症因子检测 | 大鼠肿瘤坏死因子α(TNF-α)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于大鼠LPS、CLP或IRI模型炎症反应评价 | |
炎症因子检测 | 小鼠肿瘤坏死因子α(TNF-α)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠AKI模型TNF-α检测 | |
炎症因子检测 | 大鼠白细胞介素6(IL-6)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于大鼠脓毒症相关AKI和炎症通路研究 | |
炎症因子检测 | 小鼠白细胞介素6(IL-6)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠AKI模型IL-6检测 |
7 不同研究目的下的模型选择
7.1 缺血性AKI研究
优先选择IRI模型。若关注再灌注氧化应激、微循环损伤和肾移植相关机制,可采用双侧肾缺血或单侧缺血合并对侧肾切除模型;若关注长期修复和纤维化,可采用较轻损伤并延长观察时间。
7.2 药物肾毒性研究
顺铂模型适合化疗药物肾毒性、DNA损伤、线粒体损伤和凋亡研究;庆大霉素模型适合抗生素肾毒性、近端小管蓄积和氧化应激研究。若研究转运体机制,应重点关注OCT2、CTR1、MATE和相关药物转运蛋白。
7.3 铁死亡和肌红蛋白尿研究
甘油诱导横纹肌溶解模型更适合研究肌红蛋白相关管型阻塞、游离铁介导氧化损伤和铁死亡。若研究铁死亡抑制剂、铁螯合剂或脂质过氧化抑制剂,该模型具有较强机制相关性。
7.4 炎症和脓毒症相关AKI研究
LPS模型适合快速研究TLR4/NF-κB、炎症因子和焦亡通路;CLP模型更适合模拟复杂感染和临床脓毒症过程。若研究临床转化,应优先考虑CLP模型,并规范补液、抗生素和术后护理条件。
7.5 AKI向CKD转化研究
单次急性损伤后延长观察时间,或采用中等程度IRI、重复低剂量毒性刺激、单侧肾缺血等模型,可用于研究慢性炎症、肾小管异常修复和肾间质纤维化。此类研究应增加Masson、Sirius Red、α-SMA、Collagen I、Fibronectin和TGF-β/Smad3等指标。
急性肾损伤动物模型的价值在于建立可控的病理场景,用于解析机制和筛选干预策略。IRI、顺铂/庆大霉素、甘油、LPS/CLP和基因修饰模型分别对应不同临床病因和分子通路;只有将模型选择、造模参数、评价指标和研究终点统一设计,才能提高AKI实验结果的可重复性和临床解释价值。
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