阿尔茨海默病核心病理靶点的分子机制、生物标志物价值与靶向治疗进展
阿尔茨海默病核心病理靶点的分子机制、生物标志物价值与靶向治疗进展
阿尔茨海默病由Aβ沉积、Tau异常、神经炎症、脂质代谢紊乱和突触损伤共同驱动。明确不同病理阶段的核心靶点,是疾病分层、疗效监测和联合治疗设计的基础。
关键词:阿尔茨海默病;Aβ;Tau;BACE1;ApoE;神经炎症;神经营养因子;生物标志物;GLP-1R;靶向治疗
1 阿尔茨海默病的病理特征与靶点体系
1.1 Aβ斑块与Tau神经原纤维缠结
阿尔茨海默病的主要病理特征包括细胞外Aβ沉积、神经元内异常磷酸化Tau聚集、突触丢失和进行性神经元死亡。Aβ异常通常较早出现,可促进Tau磷酸化、胶质细胞激活和神经网络异常;Tau病理的区域扩展则与神经退行性改变和认知功能下降联系更紧密。
1.2 病理过程的时间顺序
Aβ积累可在明显认知症状出现前多年发生,随后出现可溶性磷酸化Tau升高、Tau聚集、神经炎症、突触损伤和脑萎缩。不同过程并非简单线性连接,而是通过Aβ-Tau、Tau-炎症、ApoE-小胶质细胞和血管-神经元等网络相互放大。

图1 阿尔茨海默病多重病理机制介导的神经元损伤、突触功能障碍与认知下降
1.3 核心靶点与调节性靶点
APP、BACE1、γ-分泌酶、Aβ和Tau属于直接决定特征性病理形成的核心靶点;ApoE、TREM2、NLRP3、补体、氧化应激及神经营养因子则调节病理蛋白清除、炎症反应和神经元易损性。靶向核心病理可降低病理负荷,靶向调节网络则更适合保护突触、改善微环境和延缓继发性损伤。
1.4 阿尔茨海默病的病理异质性
患者可同时存在脑血管病变、α-突触核蛋白沉积、TDP-43异常及其他年龄相关病理,因此相同的Aβ或Tau负荷不一定产生相同的认知表现。疾病评价应以Aβ和Tau核心标志物确定阿尔茨海默病生物学状态,并结合神经退行性、炎症和共病理指标解释疾病阶段与个体差异。
表1 阿尔茨海默病主要病理靶点及研究定位
靶点体系 | 代表分子 | 主要病理作用 | 主要评价指标 |
Aβ生成 | APP、BACE1、γ-分泌酶 | 产生Aβ40和Aβ42 | Aβ42、Aβ40、sAPPβ、β-CTF |
Aβ聚集与清除 | Aβ寡聚体、LRP1、ApoE、TREM2 | 调节寡聚、斑块及脑内清除 | Aβ42/40、淀粉样蛋白PET |
Tau异常 | GSK-3β、CDK5、PP2A、Tau | 促进Tau磷酸化、聚集和传播 | p-Tau181、p-Tau217、Tau PET |
神经炎症 | TREM2、NLRP3、C1q、C3 | 调节小胶质细胞活化和突触吞噬 | GFAP、sTREM2、炎症因子 |
氧化与死亡 | ROS、线粒体、Caspase、铁死亡通路 | 促进神经元功能障碍和死亡 | 4-HNE、8-OHdG、Caspase-3 |
脂质代谢 | ApoE、ABCA1、LDLR、LRP1 | 影响脂质运输、Aβ清除和炎症 | APOE基因型、ApoE蛋白 |
突触保护 | BDNF、NGF、TrkB、TrkA | 维持可塑性和胆碱能神经元 | BDNF、Synaptophysin、PSD-95 |
2 Aβ生成、聚集与清除相关靶点
2.1 APP的两类加工途径
APP可经α-分泌酶切割进入非淀粉样生成途径,产生可溶性sAPPα并避免形成完整Aβ序列;也可先由BACE1切割形成sAPPβ和β-CTF,再经γ-分泌酶切割生成不同长度的Aβ。Aβ42疏水性和聚集倾向较强,是淀粉样斑块和毒性寡聚体的重要组成。
2.2 BACE1与Aβ生成起始步骤
BACE1决定淀粉样生成途径的起始切割,是降低Aβ生成的直接靶点。抑制BACE1可减少β-CTF和Aβ形成,但BACE1还参与轴突导向、髓鞘形成和突触功能相关底物的加工,因此高强度长期抑制可能干扰正常神经功能。
2.3 γ-分泌酶复合物
γ-分泌酶由Presenilin、Nicastrin、APH-1和PEN-2等组分构成,可切割APP并影响Aβ羧基末端长度。Presenilin突变可改变Aβ42与较短Aβ肽的比例,但γ-分泌酶同时参与Notch等多种蛋白加工,直接完全抑制容易影响正常细胞分化和信号转导。
2.4 Aβ寡聚体与纤维形成
Aβ单体可形成低聚体、原纤维和成熟纤维。可溶性Aβ寡聚体能够扰乱NMDA受体、钙稳态、线粒体和突触可塑性,其神经毒性不完全取决于斑块总量。因此,Aβ研究需区分单体、寡聚体、纤维和斑块,不能仅以总Aβ变化判断毒性是否降低。
2.5 Aβ的细胞与血管清除
Aβ可被小胶质细胞和星形胶质细胞吞噬,经脑脊液和类淋巴通路排出,并通过LRP1等转运系统跨血脑屏障清除。ApoE脂化状态、TREM2功能、血脑屏障完整性和脑脊液流动均会影响清除效率,清除障碍是散发性阿尔茨海默病Aβ积累的重要原因。
2.6 脑淀粉样血管病
Aβ可沉积于脑血管壁形成脑淀粉样血管病,破坏血管完整性并增加微出血风险。抗Aβ治疗动员脑实质和血管Aβ时可能引起脑水肿或微出血,因此需要结合MRI、APOE基因型和脑血管病变评估治疗风险。
3 Tau异常磷酸化与神经原纤维缠结形成
3.1 Tau的正常生理功能
Tau主要分布于神经元轴突,通过结合微管维持微管稳定、轴突结构和胞内运输。Tau与微管的结合受磷酸化动态调节,适度磷酸化有利于细胞骨架重塑,持续过度磷酸化则会降低Tau对微管的亲和力。
3.2 Tau激酶与磷酸酶失衡
GSK-3β、CDK5、MAPK等激酶可磷酸化Tau,PP2A则承担主要去磷酸化作用。Aβ、炎症、钙失衡和氧化应激可增强Tau激酶活性或降低PP2A功能,使Tau在Thr181、Thr217、Thr231、Ser202和Thr205等位点出现异常磷酸化。
3.3 Tau聚集与缠结形成
从微管解离的Tau可发生构象改变、截短和异常修饰,继而形成寡聚体、成对螺旋丝和神经原纤维缠结。Tau寡聚体可影响线粒体、蛋白质降解系统和突触功能,成熟缠结则反映持续累积的Tau病理负荷。
3.4 Tau的神经网络传播
病理Tau可从神经元释放,被相邻或突触连接的神经元摄取,并诱导内源性Tau发生错误折叠。异常Tau可沿神经连接由内嗅皮层逐步扩展至海马和相关皮层,因此阻断Tau种子形成、胞外释放或细胞摄取均具有治疗意义。
3.5 Aβ与Tau的协同
Aβ可通过激活GSK-3β、炎症通路和神经元过度兴奋促进Tau磷酸化与传播,Tau则参与介导Aβ引起的轴突、突触和神经网络损伤。降低Aβ更适合疾病早期,直接抑制Tau聚集与传播则可能在Tau病理已经形成后仍具有价值。
4 神经炎症、氧化应激与神经元凋亡相关靶点
4.1 TREM2与小胶质细胞反应
TREM2参与小胶质细胞对脂质、死亡细胞和Aβ沉积的识别,可调节细胞迁移、吞噬和代谢适应。TREM2功能受损会改变斑块周围小胶质细胞屏障和Aβ清除,但过度或持续活化的小胶质细胞也可释放炎症介质,因此干预目标应是恢复有效清除反应,而不是完全抑制小胶质细胞。
4.2 NLRP3炎症小体
Aβ寡聚体、Tau聚集、线粒体ROS和溶酶体损伤可激活小胶质细胞NLRP3炎症小体,促进Caspase-1活化及IL-1β、IL-18成熟。抑制NLRP3或Caspase-1可减少炎症信号,并可能改善Aβ清除和Tau异常。
4.3 星形胶质细胞与补体通路
反应性星形胶质细胞可改变谷氨酸回收、胆固醇供应、血脑屏障支持和炎症因子分泌。Aβ还可诱导C1q和C3等补体成分在突触附近沉积,使小胶质细胞通过补体受体识别并吞噬突触,导致早期突触丢失。
4.4 线粒体功能与氧化应激
Aβ和异常Tau均可损害线粒体呼吸链、动力学和轴突运输,增加ROS形成并降低ATP生成。ROS进一步氧化脂质、蛋白质和DNA,促进BACE1表达、Tau异常修饰和炎症小体激活,形成氧化损伤与病理蛋白相互放大的循环。
4.5 神经元凋亡与其他死亡方式
持续钙超载、线粒体膜电位下降和细胞色素c释放可激活Caspase-9和Caspase-3介导的凋亡。脂质过氧化、谷胱甘肽耗竭和铁稳态异常还可能促进铁死亡,NLRP3和Gasdermin相关信号则可诱导炎症性细胞死亡。不同死亡方式可能并存,单独检测Caspase-3不足以完整反映神经元损伤。
5 ApoE与脂质代谢介导的阿尔茨海默病遗传风险
5.1 ApoE亚型与遗传风险
人ApoE主要包括ApoE2、ApoE3和ApoE4三种亚型。APOE ε4是晚发型阿尔茨海默病的重要常见遗传风险因素,可提高发病概率并使病理出现时间提前;APOE ε2总体具有一定保护作用,但具体风险还受年龄、性别和其他遗传背景影响。
5.2 ApoE对Aβ聚集与清除的影响
ApoE可与Aβ结合并影响其聚集、细胞摄取和跨血脑屏障运输。ApoE4相关Aβ复合物清除效率较低,可能促进脑实质和血管Aβ积累;ApoE2和ApoE3通常更有利于Aβ运输和清除。
5.3 ApoE脂化与胆固醇运输
ApoE主要由星形胶质细胞和活化小胶质细胞产生,经ABCA1介导脂化后向神经元运输胆固醇和磷脂。ApoE4脂化不足会改变膜脂组成、突触修复、内体运输和受体循环,使神经元更易受到代谢和蛋白质稳态压力影响。
5.4 ApoE与TREM2依赖性小胶质细胞状态
ApoE和TREM2共同调节斑块反应性小胶质细胞的转录状态、迁移和吞噬功能。不同APOE和TREM2风险变异可改变小胶质细胞对Aβ的聚集、包裹及清除反应,因此ApoE靶向治疗可能同时影响脂质运输、炎症状态和Aβ处理。
5.5 ApoE靶向干预方向
ApoE相关策略包括降低有害ApoE4水平、增强ApoE脂化、修正ApoE4构象、促进ApoE4向ApoE3样功能转变,以及调节ApoE受体和TREM2通路。由于ApoE承担正常脂质运输功能,完全清除ApoE可能造成新的神经代谢问题。
6 神经营养因子与突触功能保护机制
6.1 BDNF-TrkB信号
BDNF结合TrkB后可激活PI3K/AKT、MAPK/ERK和PLCγ通路,促进神经元存活、树突棘形成和长时程增强。Aβ、Tau和慢性炎症可降低BDNF表达或削弱TrkB信号,使海马突触可塑性下降;恢复BDNF-TrkB功能可作为病理蛋白清除之外的神经保护策略。
6.2 NGF-TrkA与胆碱能神经元
NGF通过TrkA和p75NTR调节基底前脑胆碱能神经元的生存、轴突投射和胆碱能功能。阿尔茨海默病中基底前脑胆碱能神经元及TrkA信号下降,与注意、学习和记忆受损有关,但NGF难以跨越血脑屏障,限制了全身给药的应用。
6.3 突触前与突触后功能损伤
Aβ寡聚体可抑制突触传递和长时程增强,异常Tau则影响轴突运输、突触囊泡和树突棘细胞骨架。Synaptophysin、Synapsin、PSD-95、Homer1和树突棘密度可用于评价突触结构,电生理长时程增强和神经网络活动则反映功能变化。
6.4 神经兴奋性失衡
疾病早期可出现神经元过度兴奋和网络同步异常,随后发展为突触衰竭。Aβ可引起谷氨酸清除不足和NMDA受体调节异常,Tau则可改变轴突和抑制性神经网络功能。突触保护的重点是恢复兴奋与抑制平衡,而不是单纯增强神经活动。
7 阿尔茨海默病生物标志物的检测与疾病分层
7.1 脑脊液Aβ42/40
脑脊液Aβ42下降反映Aβ被沉积于脑内,Aβ42/40比值可减少个体总Aβ生成差异和前分析因素造成的影响。该比值可用于判断淀粉样病理,但不能直接评价神经元损伤程度。
7.2 磷酸化Tau与总Tau
脑脊液及血浆p-Tau181、p-Tau217和p-Tau231可反映Aβ相关Tau异常。总Tau更接近神经元损伤和蛋白释放状态,疾病特异性低于磷酸化Tau,因此二者不能互相替代。
7.3 血浆p-Tau217
血浆p-Tau217对阿尔茨海默病相关Aβ和Tau病理具有较高判别能力,可用于初步筛查和疾病分层,并减少部分人群进行脑脊液检查或PET扫描的需要。实际应用需采用经过验证的检测平台、阈值和分层判读流程。
7.4 GFAP、NfL与sTREM2
血浆或脑脊液GFAP反映星形胶质细胞反应,神经丝轻链NfL反映轴突损伤,sTREM2可评价小胶质细胞相关反应。这些指标并非阿尔茨海默病特异标志物,但可用于评价神经炎症、神经退行性程度和治疗后的非Aβ效应。
7.5 淀粉样蛋白PET与Tau PET
淀粉样蛋白PET可显示脑内Aβ负荷,并用于确认抗Aβ治疗相关人群;Tau PET更接近Tau病理的区域扩展和临床严重程度。PET定量可支持疾病分层和疗效监测,但受示踪剂、阈值、成本及可及性限制。
7.6 MRI与神经退行性评价
结构MRI可评价海马、内嗅皮层和全脑萎缩,同时用于识别微出血、表浅铁沉积和脑血管病变。弥散成像、功能MRI和脑灌注指标可补充神经网络及白质损伤信息,但这些改变并不具有阿尔茨海默病特异性。
7.7 生物学诊断与临床分期
阿尔茨海默病分层应利用Aβ和Tau核心标志物确定生物学状态,再结合认知功能、日常生活能力、神经退行性和共病理指标进行临床分期。无症状人群出现异常标志物并不等同于短期内必然发展为痴呆,仍需结合年龄、病理负荷和共存疾病判断。
表2 阿尔茨海默病主要生物标志物的判读价值
标志物 | 主要样本或技术 | 主要意义 | 主要局限 |
Aβ42/40 | 脑脊液、血浆 | 反映淀粉样病理 | 对神经退行性程度反映有限 |
p-Tau181 | 脑脊液、血浆 | 反映Aβ相关Tau异常 | 早期敏感性可能低于p-Tau217 |
p-Tau217 | 脑脊液、血浆 | 识别阿尔茨海默病病理并辅助分层 | 不同平台阈值需独立验证 |
总Tau | 脑脊液 | 反映神经元损伤 | 疾病特异性不足 |
GFAP | 血浆、脑脊液 | 反映星形胶质细胞反应 | 多种脑病均可升高 |
NfL | 血浆、脑脊液 | 反映轴突损伤 | 不能确定病因 |
淀粉样蛋白PET | PET | 显示Aβ沉积 | 不能直接评价神经元功能 |
Tau PET | PET | 显示Tau区域负荷 | 示踪剂和疾病阶段影响判读 |
MRI | 结构及血管成像 | 评价萎缩、微出血和共病理 | 缺少阿尔茨海默病特异性 |
8 Aβ、Tau、BACE1与GLP-1R靶向治疗策略
8.1 Aβ单克隆抗体
抗Aβ单克隆抗体通过识别可溶性聚集体、原纤维或斑块Aβ,促进免疫清除并降低脑内淀粉样负荷。代表性药物包括Lecanemab和Donanemab,其主要定位是减缓早期阿尔茨海默病的临床下降,而不是恢复已经丢失的神经元。治疗前需确认Aβ病理,并监测脑水肿和微出血等淀粉样蛋白相关影像异常。
8.2 Tau靶向治疗
Tau治疗策略包括抑制Tau激酶、增强PP2A活性、阻断Tau聚集、促进胞内Tau降解以及利用抗体中和胞外Tau种子。其主要难点是抗体进入神经元有限、Tau表位和构象复杂、病理传播阶段不同以及治疗开始时间可能偏晚。
8.3 BACE1抑制策略
BACE1抑制剂可显著降低Aβ生成,但高强度长期抑制未能稳定改善认知,部分候选药物还出现认知、神经精神或肝脏安全性问题。后续研究更重视早期干预、降低抑制强度以及提高对APP病理加工的选择性。
8.4 GLP-1R靶向策略
GLP-1R激动可调节胰岛素信号、线粒体功能、神经炎症和细胞存活,因此被用于探索阿尔茨海默病的代谢干预。现有证据尚不足以将GLP-1R激动剂作为已确立的阿尔茨海默病疾病修饰治疗,其研究价值主要在于分析代谢异常、炎症和神经保护之间的联系。
8.5 靶向治疗的患者选择
抗Aβ治疗应确认脑内Aβ病理,并结合疾病阶段、MRI表现、APOE ε4状态和脑血管风险选择患者。Tau、炎症和神经保护治疗则应根据Tau负荷、胶质细胞标志物、神经退行性程度和共病理状态进行分层,避免对所有患者采用相同靶点。
8.6 联合治疗方向
阿尔茨海默病治疗可能需要在早期降低Aβ形成或沉积,在病理扩展期限制Tau传播和神经炎症,并持续保护突触、线粒体和脑血管功能。联合方案必须明确各药物对应的病理阶段和生物标志物终点,简单叠加多个靶点并不能保证协同。
表3 阿尔茨海默病主要靶向治疗策略
治疗方向 | 主要靶点 | 主要作用 | 关键限制 |
抗Aβ抗体 | Aβ原纤维、聚集体或斑块 | 降低淀粉样负荷并减缓早期临床下降 | ARIA、输注负担和患者筛选 |
Tau免疫治疗 | 胞外Tau种子 | 限制Tau传播 | 胞内病理难以覆盖 |
Tau激酶抑制 | GSK-3β、CDK5 | 降低Tau异常磷酸化 | 激酶生理底物广泛 |
BACE1抑制 | BACE1 | 降低Aβ生成 | 高强度抑制可能影响正常神经功能 |
神经炎症调节 | TREM2、NLRP3、补体 | 改善清除反应并减少突触损伤 | 炎症具有阶段性和双重作用 |
ApoE调节 | ApoE4、ABCA1、LRP1 | 改善脂质运输和Aβ清除 | 正常脂质功能不可完全抑制 |
GLP-1R激动 | GLP-1R | 调节代谢、炎症和细胞存活信号 | 临床疾病修饰作用尚未确立 |
神经营养支持 | BDNF-TrkB、NGF-TrkA | 保护突触和胆碱能神经元 | 跨血脑屏障和靶区递送困难 |
9 阿尔茨海默病核心病理与生物标志物研究相关产品
9.1 核心蛋白、抗体与检测试剂产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 主要用途 |
β-淀粉样多肽1-42三氟乙酸盐 | ≥95% | 制备Aβ42单体、寡聚体和纤维,建立聚集及神经毒性模型 | |
淀粉样β蛋白片段1-40(TFA盐) | ≥95% | 研究Aβ40聚集、血管沉积及其与Aβ42的差异 | |
β Amyloid(1-42)(scrambled) | — | 作为Aβ42聚集和神经毒性实验的乱序肽对照 | |
Biotinyl-Ahx-Amyloid β-Protein(1-42) | — | Aβ42结合、捕获及抗体识别研究 | |
FITC-β-Ala-Amyloid β-Protein(1-42) | — | 追踪Aβ42摄取、细胞定位和清除过程 | |
Lecanemab(anti-Amyloid Beta) | 无动物源,无载体,重组,ExactAb™,低内毒素,无叠氮钠,已验证,≥95%(SDS-PAGE&SEC-HPLC),见COA | 研究Aβ聚集体识别、抗体结合和免疫清除 | |
Donanemab(anti-Amyloid Beta) | 无动物源,无载体,重组,ExactAb™,低内毒素,无叠氮钠,已验证,≥95%(SDS-PAGE&SEC-HPLC),见COA | 研究斑块相关Aβ识别和抗体介导清除 | |
Crenezumab(anti-Amyloid Beta) | 无动物源,无载体,重组,ExactAb™,低内毒素,无叠氮钠,已验证,≥95%(SDS-PAGE&SEC-HPLC),见COA | 比较不同抗Aβ抗体的结合和清除特征 | |
Recombinant Human Amyloid Precursor Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,无叠氮钠,His标签,≥95%(SDS-PAGE) | APP加工、蛋白互作和分泌酶切割研究 | |
Recombinant Amyloid Precursor Protein Antibody | 重组,ExactAb™,已验证,0.4 mg/mL | 检测APP表达及细胞内定位 | |
人淀粉样前体蛋白(APP)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测人样本中的APP水平 | |
Recombinant human BACE1 protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,无叠氮钠,His标签,≥90%(SDS-PAGE) | BACE1酶活测定和抑制剂筛选 | |
MCA-EIDLMVLDK-Dnp(BACE1荧光底物),TFA盐 | ≥98% | 荧光法检测BACE1切割活性 | |
BACE1 Mouse mAb | 无载体,ExactAb™,已验证,见COA | 检测BACE1表达及APP淀粉样加工通路变化 | |
BACE1 Human Pre-designed siRNA Set A | — | 敲低BACE1并验证Aβ生成的BACE1依赖性 | |
Recombinant Human Tau Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,His标签,≥95%(SDS-PAGE) | Tau磷酸化、聚集和抗体结合研究 | |
APOE Human Pre-designed siRNA Set A | — | 敲低APOE并研究脂质运输、Aβ清除和胶质细胞反应 | |
APOE基因敲除HEK293T细胞RIPA裂解液 | — | ApoE蛋白检测和抗体特异性验证的阴性对照 | |
Recombinant Mouse APOE Protein | ≥90%(SDS-PAGE) | ApoE脂质代谢、受体结合和Aβ相互作用研究 | |
Human APOE ELISA Kit | 生物活性,用于酶联免疫(ELISA),for ELISA | 定量检测人样本中的ApoE水平 | |
PY314(anti-TREM2) | 无动物源,无载体,重组,ExactAb™,低内毒素,无叠氮钠,已验证,≥95%(SDS-PAGE&SEC-HPLC),见COA | TREM2抗体结合及小胶质细胞信号调控研究 | |
TREM2 Human Pre-designed siRNA Set A | — | 敲低TREM2并研究小胶质细胞吞噬和炎症反应 | |
小鼠髓细胞触发受体2(TREM2)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测小鼠样本中的TREM2 | |
Recombinant Human BDNF GMP Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,高性能,无菌,≥70%(SDS-PAGE) | BDNF-TrkB信号、神经元存活和突触保护研究 | |
BDNF Antibody | ExactAb™,已验证,1.0 mg/mL | 检测BDNF表达及神经营养信号变化 | |
人前脑源性神经营养因子(ProBDNF)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测ProBDNF并评价前体加工变化 | |
人成熟型脑源性神经营养因子(mBDNF)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测成熟BDNF水平 | |
人脑源性神经营养因子(BDNF)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 检测人样本中的总BDNF水平 | |
Recombinant Human beta-NGF Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,高性能,PBS Only,≥90%(SDS-PAGE&SEC-HPLC) | NGF-TrkA、胆碱能神经元存活和轴突生长研究 | |
Recombinant Human NGFR/TNFRSF16 Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,高性能,His标签,Fc标签,≥95%(SDS-PAGE) | NGF-p75NTR结合及受体信号研究 | |
NGF Mouse mAb | 无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,高性能,见COA | 检测NGF表达及神经营养信号变化 | |
Recombinant NGFR Antibody | 重组,ExactAb™,已验证,2.0 mg/mL | 检测p75NTR/NGFR表达和受体水平变化 | |
人神经生长因子(NGF)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测人样本中的NGF水平 | |
Recombinant Human NLRP3 Protein | 无载体,His标签,≥90%(SDS-PAGE) | NLRP3蛋白互作、抗体筛选和炎症小体研究 | |
NLRP3 Human Pre-designed siRNA Set A | — | 敲低NLRP3并验证炎症小体依赖性反应 | |
人含NLR家族Pyrin域蛋白3(NALP3/NLRP3)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测人样本中的NLRP3水平 | |
Iba1 Mouse mAb | 无动物源,无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,高性能,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE),1.0 mg/mL | 检测小胶质细胞及其活化状态 | |
GFAP Antibody | 无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,高性能,见COA | 检测星形胶质细胞反应 | |
人神经胶质纤维酸性蛋白(GFAP)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量评价人样本中的星形胶质细胞反应 | |
Recombinant Synaptophysin Antibody | 重组,ExactAb™,已验证,0.48 mg/mL | 检测突触前结构和突触丢失 | |
Recombinant PSD95 Antibody | 重组,ExactAb™,已验证,高性能,见COA | 检测突触后致密区和突触完整性 | |
人β淀粉样蛋白40(Aβ40)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测Aβ40并用于计算Aβ42/40比值 | |
人β淀粉样蛋白42(Aβ42)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测Aβ42及淀粉样病理变化 | |
人磷酸化Tau181蛋白(p-Tau181)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测p-Tau181 | |
人磷酸化Tau-217蛋白(p-Tau217)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测p-Tau217并辅助阿尔茨海默病分层 | |
人磷酸化Tau231蛋白(231P-Tau)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测p-Tau231及早期Tau异常 | |
人神经丝蛋白多肽(NFL)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量评价轴突损伤和神经退行性变化 |
阿尔茨海默病不能由单一病理过程完整解释。Aβ适合用于早期病理确认和淀粉样负荷干预,Tau更能反映疾病扩展与神经退行性进程,ApoE、神经炎症和神经营养通路则决定病理清除、突触易损性和治疗反应。基于生物标志物确定病理阶段并选择相匹配的靶点,是提高疾病修饰治疗有效性的关键。
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