血液寄生虫显微检测:厚血膜、薄血膜制片与Romanowsky类染色体系
血液寄生虫显微检测:厚血膜、薄血膜制片与Romanowsky类染色体系
血液寄生虫显微检测的关键在于同时获得检出率和形态鉴别信息。厚血膜适合提高低虫血症样本检出率,薄血膜适合观察虫体形态、宿主红细胞变化和虫种特征;Giemsa、Wright-Giemsa、快速Romanowsky染色和荧光染色体系应根据检测对象、样本量、实验通量和鉴定深度选择。
关键词:血液寄生虫;厚血膜;薄血膜;Giemsa染色;Wright-Giemsa染色;疟原虫;巴贝虫;微丝蚴
1 血液寄生虫显微检测的基本逻辑
1.1 检测对象与染色目标
(1)疟原虫
疟原虫显微检测重点包括环状体、滋养体、裂殖体、配子体、感染红细胞形态、Schüffner点、Maurer斑点和虫体色素。厚血膜用于提高检出率,薄血膜用于虫种鉴别和寄生率计算。Giemsa染色仍是形态学观察中最常用的基础体系。
(2)巴贝虫
巴贝虫主要寄生于红细胞内,常表现为环状体、梨形体或四联体样结构。其形态可与疟原虫环状体相似,薄血膜对红细胞内虫体排列方式和色素缺如的观察更重要。判读时应结合红细胞形态、虫体数量和临床背景。
(3)锥虫
锥虫常以血液中活动或固定后的鞭毛体形式出现,观察重点包括虫体长度、波动膜、鞭毛、动基体、细胞核位置和体态弯曲。Giemsa或Wright-Giemsa染色可显示核质和胞质结构,湿片可用于活动性初筛。
(4)微丝蚴
微丝蚴检测关注虫体大小、鞘膜有无、头端间隙、体核排列和尾端核分布。厚血膜、浓集法和特定苏木素类染色可用于提高检出率和显示结构细节。不同虫种的采血时间具有差异,应根据周期性选择取样时间。
表1 血液寄生虫显微检测对象与推荐染色体系
检测对象 | 推荐制片 | 推荐染色 | 主要判读内容 | 控制重点 |
疟原虫 | 厚血膜、薄血膜 | Giemsa染色、Wright-Giemsa染色 | 虫体阶段、红细胞改变、寄生率 | pH、染色时间、血膜厚度 |
巴贝虫 | 薄血膜为主,必要时厚血膜 | Giemsa染色、Wright-Giemsa染色 | 红细胞内环状体、梨形体、四联体 | 与疟原虫环状体区分 |
锥虫 | 湿片、薄血膜、浓集涂片 | Giemsa染色、Wright-Giemsa染色 | 鞭毛体、波动膜、动基体 | 新鲜样本和虫体完整性 |
微丝蚴 | 厚血膜、浓集法、薄血膜 | Giemsa染色、苏木素类染色 | 鞘膜、头端、体核和尾端核 | 采血时间和厚血膜脱血红蛋白 |
利什曼原虫 | 骨髓/脾穿刺涂片、血液特殊样本 | Giemsa染色、Wright-Giemsa染色 | 无鞭毛体、细胞核、动基体 | 巨噬细胞内定位和涂片质量 |
1.2 厚血膜与薄血膜分工
(1)厚血膜
厚血膜通过浓缩较大体积血液提高检出率,适合低虫血症、筛查和随访检测。红细胞在染色前后被溶解或脱血红蛋白,虫体集中于较小视野范围内,但红细胞形态丢失,虫种鉴别能力弱于薄血膜。
(2)薄血膜
薄血膜保留红细胞形态和虫体空间关系,适合虫种鉴别、寄生率计算和红细胞内寄生虫结构观察。样本中虫体数量较低时,薄血膜检出率可能不足,因此常与厚血膜并行。
(3)组合使用
常规血液寄生虫显微检测不宜只依赖一种血膜。厚血膜用于发现虫体,薄血膜用于确认虫种、虫体阶段和感染细胞特征;两者结果不一致时,应优先检查制片质量、染色条件和观察视野数量。
2 Giemsa染色体系
2.1 适用场景
(1)疟原虫检测
Giemsa染色适合厚血膜和薄血膜,是疟原虫显微检测的核心方法。环状体、滋养体、裂殖体和配子体可形成较稳定的蓝紫色核质与淡蓝色胞质对比,红细胞内细小结构也较易识别。
(2)巴贝虫检测
Giemsa染色可显示巴贝虫红细胞内环状体和梨形体。与疟原虫相比,巴贝虫通常缺乏疟色素,红细胞改变相对不同,薄血膜中虫体形态和排列方式更有鉴别价值。
(3)锥虫和微丝蚴观察
Giemsa染色可用于血液锥虫和微丝蚴形态观察。锥虫可显示细胞核、动基体和波动膜轮廓;微丝蚴可观察鞘膜和体核排列,但某些微丝蚴结构显示可能需要专用染色或浓集法补充。
2.2 染色要点
(1)缓冲液pH
Giemsa染色对缓冲液pH敏感。血液寄生虫观察通常要求接近中性至微碱性的缓冲条件,pH偏低可导致整体偏红,pH偏高可导致背景偏蓝或沉淀增加。疟原虫细胞核、胞质和红细胞颗粒的颜色平衡依赖稳定pH。
(2)染色时间
厚血膜通常需要较长染色时间以保证虫体着色充分,薄血膜可根据染液浓度采用较短或中等染色时间。快速缩短染色时间可能造成虫体核质不清,过度延长则容易增加背景和沉淀。
(3)固定差异
薄血膜通常需甲醇固定,以保持红细胞形态和虫体位置;厚血膜通常不进行甲醇固定,以便红细胞脱血红蛋白。若厚血膜误固定,红细胞难以溶解,会显著降低镜检质量。
2.3 判读重点
(1)厚血膜判读
厚血膜中应重点寻找染色清晰的虫体核质、胞质和色素样结构。由于红细胞形态丢失,虫种鉴别应谨慎,阳性后需结合薄血膜确认。
(2)薄血膜判读
薄血膜应观察感染红细胞大小、形态、虫体数量、虫体阶段、色素、点彩和寄生率。疟原虫虫种鉴别尤其依赖薄血膜中红细胞改变和虫体发育阶段组合。
(3)低虫血症样本
低虫血症样本应增加厚血膜观察视野数量,并重复采样或复查。单张阴性涂片不能完全排除早期或低水平感染,尤其在临床高度怀疑时。
表2 Giemsa染色中厚血膜与薄血膜比较
项目 | 厚血膜 | 薄血膜 |
主要目的 | 提高检出率 | 虫种鉴别和寄生率计算 |
红细胞形态 | 基本丢失 | 保留完整 |
虫体密度 | 相对集中 | 接近真实血液分布 |
适合对象 | 低虫血症、筛查、随访 | 疟原虫虫种鉴别、巴贝虫鉴别 |
固定方式 | 通常不甲醇固定 | 通常甲醇固定 |
主要风险 | 血膜脱落、背景重、脱血红蛋白不足 | 血膜过厚、尾部区域不足、虫体少 |
3 Wright-Giemsa与快速Romanowsky染色
3.1 Wright-Giemsa染色
(1)适用场景
Wright-Giemsa染色常用于血液涂片和骨髓涂片,可同时显示血细胞形态和寄生虫结构。对于疟原虫、巴贝虫、锥虫、微丝蚴以及骨髓或组织涂片中的利什曼原虫,该体系具有较好的通用性。
(2)技术特点
Wright-Giemsa染色兼顾血细胞形态学和寄生虫观察,可在临床血液学实验室中与常规血涂片检测衔接。其优势是操作体系成熟、背景细胞信息丰富;不足是厚血膜敏感性和疟原虫细微点彩显示可能受染色条件影响。
(3)判读重点
使用Wright-Giemsa时,应关注虫体核质对比、胞质边界、宿主细胞背景和染色均一性。血细胞过深或背景偏蓝会降低小型环状体检出率,应通过缓冲液pH、染色时间和冲洗方式优化。
3.2 快速Romanowsky染色
(1)适用场景
快速Romanowsky染色适合急诊筛查、现场检测和快速涂片判断,如Diff-Quik类染色体系。它可较快显示血细胞和部分血液寄生虫结构,但在低虫血症和精细虫种鉴别方面不宜完全替代标准Giemsa染色。
(2)技术特点
快速染色流程短、通量高,对设备要求较低,适合初筛和形态快速确认。其染色层次通常不如标准Giemsa稳定,细小点彩、微弱胞质和低丰度虫体可能不够清晰。
(3)判读重点
快速染色阳性结果应结合标准Giemsa或薄血膜复核;快速染色阴性但临床疑似度高时,应增加厚血膜、重复采样或采用分子检测。对于巴贝虫和疟原虫环状体鉴别,薄血膜标准染色仍更可靠。
3.3 方法选择
(1)常规实验室
常规实验室建议以Giemsa染色厚血膜和薄血膜作为基础组合,Wright-Giemsa可作为血液学涂片和骨髓涂片补充方法。
(2)急诊和现场筛查
急诊或现场筛查可采用快速Romanowsky染色提高周转速度,但阳性样本和疑难样本应进行标准染色复核。
(3)科研和药效评价
科研场景中若需要寄生率、虫体阶段比例或药物作用后形态变化分析,应优先选择标准化Giemsa薄血膜,并统一染色时间、pH和计数规则。
表3 Romanowsky类染色体系比较
染色体系 | 适合样本 | 优势 | 局限 | 推荐用途 |
Giemsa染色 | 厚血膜、薄血膜、骨髓涂片 | 寄生虫形态显示稳定 | 对pH和时间敏感 | 疟原虫、巴贝虫、锥虫、微丝蚴常规检测 |
Wright-Giemsa染色 | 薄血膜、骨髓涂片 | 血细胞和寄生虫背景兼顾 | 厚血膜敏感性需控制 | 血液学背景下的寄生虫观察 |
快速Romanowsky染色 | 薄血膜、体液涂片 | 快速、便于现场筛查 | 精细结构和低虫血症检出受限 | 急诊初筛和快速判断 |
Leishman染色 | 薄血膜、血液涂片 | 血细胞形态清晰 | 不同实验室差异较大 | 血液寄生虫和血细胞联合观察 |
JSB染色 | 疟原虫快速筛查 | 染色速度快 | 形态细节相对有限 | 疟疾现场筛查补充 |
4 荧光染色与浓集检测
4.1 荧光染色
(1)适用场景
荧光染色可用于提高低丰度血液寄生虫检出效率,尤其适合筛查场景。吖啶橙、QBC相关体系或核酸荧光染料可使虫体核酸信号更突出,便于快速扫描。
(2)判读特点
荧光法显示的是核酸或特定染料结合信号,检出效率较高,但形态鉴别能力通常不如标准薄血膜染色。阳性信号应结合形态学复核,尤其需要区分血小板、白细胞碎片和染料沉淀。
(3)控制要点
荧光染色需控制染料浓度、孵育时间、背景荧光和显微镜参数。若用于随访或药效评价,应统一曝光和判读标准,避免把背景荧光变化误判为虫体数量变化。
4.2 浓集法
(1)微丝蚴浓集
微丝蚴数量较低时,可采用浓集法提高检出率。浓集后再进行染色,有利于观察体核、鞘膜和尾端核分布。采血时间应与微丝蚴周期性相匹配。
(2)疟原虫低虫血症
疟原虫低虫血症样本仍以厚血膜多视野观察为基础。荧光筛查或分子检测可作为补充,但形态学分期和虫种特征仍需要薄血膜支持。
(3)血液沉渣和白膜层
某些血液寄生虫可在白膜层或浓集层中更易检出。此类方法可提高敏感性,但形态可能受离心和处理步骤影响,应与常规涂片结果结合解释。
表4 荧光和浓集方法在血液寄生虫检测中的应用
方法 | 适合对象 | 主要优势 | 主要限制 | 推荐定位 |
吖啶橙荧光染色 | 疟原虫、部分血液寄生虫 | 快速筛查、信号突出 | 虫种鉴别有限 | 初筛和低丰度样本补充 |
QBC类方法 | 疟原虫、微丝蚴等 | 富集和荧光观察结合 | 依赖专用耗材和设备 | 快速筛查 |
厚血膜浓缩观察 | 疟原虫、微丝蚴 | 提高显微检出率 | 形态鉴别受限 | 常规筛查基础方法 |
微丝蚴浓集法 | 微丝蚴 | 提高低密度感染检出率 | 流程较长 | 微丝蚴疑似样本复查 |
分子检测联用 | 低虫血症或疑难样本 | 灵敏度和特异性较高 | 不提供完整形态信息 | 显微阴性但临床疑似时补充 |
5 不同血液寄生虫的判读要点
5.1 疟原虫
(1)环状体
环状体常表现为细胞核点状或小团块状,胞质呈环形或细弧形。恶性疟原虫可见多重感染红细胞和边缘型环状体,薄血膜对这些特征判读更重要。
(2)滋养体和裂殖体
滋养体和裂殖体可提供虫种鉴别信息。间日疟原虫感染红细胞常增大并可见Schüffner点;恶性疟原虫外周血中成熟阶段较少见,出现大量成熟滋养体或裂殖体需结合病情判断。
(3)配子体
恶性疟原虫配子体常呈新月形或香蕉形,是重要形态特征。其他疟原虫配子体形态不同,应结合感染红细胞大小、点彩和虫体色素综合判断。
5.2 巴贝虫
(1)红细胞内形态
巴贝虫可呈环状、梨形、成对或四联体样排列。其与疟原虫相似之处在于均可见红细胞内环状结构,但巴贝虫通常无疟色素,红细胞内特征性点彩不典型。
(2)鉴别要点
薄血膜中若见四联体样结构,可提示巴贝虫可能,但该结构并非所有样本均出现。鉴别时应结合旅行史、蜱暴露史、溶血表现和必要的分子检测。
(3)计数方式
巴贝虫感染程度可通过薄血膜估算感染红细胞比例。低感染水平时应增加观察红细胞数量,避免因单一区域涂片不均导致偏差。
5.3 锥虫与微丝蚴
(1)锥虫
锥虫血涂片中可见细长虫体、波动膜、鞭毛、细胞核和动基体。新鲜湿片可观察运动性,染色涂片可进行结构确认。虫体形态受干燥、固定和涂片压力影响明显。
(2)微丝蚴
微丝蚴应观察虫体长度、鞘膜、头端间隙、体核排列和尾端核有无。厚血膜可提高检出率,但虫体可能弯曲或重叠;薄血膜和专用染色可补充结构细节。
(3)采血时间
部分微丝蚴具有夜现或昼现周期性,采血时间直接影响检出率。阴性结果应结合采血时间、临床表现和流行病学信息解释。
表5 主要血液寄生虫形态学判读重点
寄生虫 | 主要所在位置 | 关键形态特征 | 优先制片 | 主要鉴别点 |
恶性疟原虫 | 红细胞内 | 多重环状体、边缘型、香蕉形配子体 | 厚血膜+薄血膜 | 与巴贝虫环状体鉴别 |
间日疟原虫 | 红细胞内 | 红细胞增大、Schüffner点、滋养体较大 | 厚血膜+薄血膜 | 与卵形疟和三日疟鉴别 |
巴贝虫 | 红细胞内 | 环状体、梨形体、四联体样结构 | 薄血膜 | 无疟色素,常需结合暴露史 |
锥虫 | 血浆/血细胞间 | 鞭毛、波动膜、动基体 | 湿片+薄血膜 | 虫体完整性和动基体位置 |
微丝蚴 | 血液中 | 鞘膜、体核、尾端核分布 | 厚血膜/浓集法 | 采血时间和尾端核特征 |
6 制片、染色与镜检质量控制
6.1 采血与样本保存
(1)采血时间
疟原虫检测可根据发热周期和临床疑似度安排重复采样;微丝蚴检测应根据虫种周期性选择夜间或白天采血。采血时间记录对阴性结果解释非常关键。
(2)抗凝剂影响
EDTA抗凝血可用于涂片制备,但长时间放置会影响寄生虫形态和红细胞结构。血液样本应尽快制片,延迟处理会增加形态退变和染色异常。
(3)涂片数量
疑似血液寄生虫感染时,建议同时制备厚血膜和薄血膜,并保留备用涂片。低虫血症样本可增加涂片数量和观察时间。
6.2 血膜制备
(1)厚血膜
厚血膜应厚薄适中,干燥充分后再染色。血膜过厚会脱血红蛋白不完全,背景深;血膜过薄则失去浓缩优势。干燥不足时染色易脱片。
(2)薄血膜
薄血膜应形成均匀羽状边缘,最佳观察区域为红细胞单层且轻微接触的区域。过厚区域红细胞重叠,过薄区域细胞变形,均不利于虫体判读。
(3)固定控制
薄血膜甲醇固定时间应稳定,厚血膜不应甲醇固定。固定混淆是血液寄生虫染色中常见错误,会直接影响检出率和形态质量。
6.3 镜检与报告
(1)观察视野
厚血膜阴性判定应满足足够视野数量或白细胞计数范围。薄血膜寄生率计算应明确计数红细胞数量或视野规则。
(2)阳性报告
阳性报告应包括寄生虫类型、虫体阶段、寄生率或半定量结果。若只能确定血液寄生虫阳性而不能明确虫种,应如实报告“疑似”并建议复核。
(3)复核机制
低虫血症、形态不典型、治疗后样本和疑似混合感染均应由有经验人员复核。必要时联用快速抗原、分子检测或血清学方法。
表6 常见染色问题与优化方向
问题 | 常见原因 | 优化方向 |
厚血膜脱落 | 干燥不足、血膜过厚、冲洗过强 | 充分自然干燥,控制血膜厚度,轻柔冲洗 |
背景偏蓝 | pH偏高、染色过久、冲洗不足 | 校正缓冲液pH,缩短染色时间,增加温和冲洗 |
背景偏红 | pH偏低、染液比例不当 | 使用合适pH缓冲液,重新配制染液 |
虫体核质不清 | 染色不足、染液失效或固定不当 | 延长染色时间,更新染液,规范固定 |
红细胞重叠严重 | 薄血膜过厚或推片角度不合适 | 调整血滴大小、推片角度和速度 |
低虫血症漏检 | 观察视野不足或只看薄血膜 | 增加厚血膜观察视野,重复采样 |
巴贝虫与疟原虫难区分 | 仅见环状体,形态信息不足 | 观察薄血膜、寻找色素和四联体,必要时分子确认 |
微丝蚴检出率低 | 采血时间不匹配或血量不足 | 按周期性采血,增加浓集法或厚血膜检查 |
7 血液寄生虫显微检测染色相关试剂选型
表7 血液寄生虫显微检测染色相关试剂选型
应用模块 | 货号 | 产品名称 | 级别/规格 | 方法/体系 | 应用定位 |
血膜固定 | 80% v/v 乙醇固定液 | Moligand™,适用于固定溶液(血膜) | 血膜固定 | 用于血液涂片固定处理,适合血液寄生虫染色前样本制备 | |
样本洗涤与缓冲 | PBS(pH 7.4,无菌) | BioReagent,低内毒素,无菌过滤,用于细胞培养 | 样本洗涤/缓冲 | 用于血液样本、细胞沉渣或涂片前处理中的温和洗涤与缓冲 | |
样本洗涤与缓冲 | PBS溶液,1X | 1X,无菌,pH 7.2–7.4 | 样本洗涤/缓冲 | 用于血液寄生虫样本悬浮、洗涤或染色前辅助处理 | |
样本洗涤与缓冲 | PBS速溶颗粒 | 1 L/pouch | 缓冲液配制 | 用于配制PBS缓冲液,适合显微检测样本处理和常规洗涤 | |
快速染色 | 迪夫快速染色液(无固定液) | BioReagent,生物活性,用于显微镜 | Diff-Quik类快速染色 | 用于血液涂片快速染色,可辅助疟原虫、巴贝虫、锥虫或微丝蚴样本初筛 | |
Giemsa染色 | 吉氏色素 | 血液染色专用 | Giemsa染色 | 用于厚血膜、薄血膜或血液涂片中疟原虫、巴贝虫、锥虫和微丝蚴染色观察 | |
Giemsa染色 | 吉氏色素 | 高级纯 | Giemsa染色 | 用于配制Giemsa染色体系,适合标准化血液寄生虫显微检测 | |
Giemsa染色 | 吉氏色素 | 生物染色剂 | Giemsa染色 | 用于血液寄生虫、血细胞背景和虫体核质结构染色 | |
Giemsa染色 | 姬姆萨染色液 | BioReagent,生物染色剂,用于显微镜,10X | Giemsa染色 | 用于厚血膜和薄血膜染色,适合血液寄生虫常规显微检测 | |
Giemsa染色 | 姬姆萨染色液(即用型) | BioReagent,即用型,生物染色剂,适用于微生物学,用于显微镜 | Giemsa染色 | 用于血液寄生虫涂片快速、稳定染色,减少工作液配制误差 | |
Wright-Giemsa染色 | 瑞氏-姬姆萨染色试剂盒 | BioReagent,生物染色剂,用于显微镜 | Wright-Giemsa染色 | 用于薄血膜、骨髓涂片或血液寄生虫形态观察,适合同时评估宿主血细胞背景 | |
Wright染色 | 瑞氏染色液(即用型) | 即用型,生物染色剂,适用于微生物学,用于显微镜,BioReagent | Wright染色 | 用于血液涂片快速染色,适合血液寄生虫初筛和血细胞形态背景观察 | |
Wright染色 | 瑞氏染色试剂盒 | BioReagent,生物染色剂,用于显微镜 | Wright染色 | 用于血液涂片染色,可作为Giemsa或Wright-Giemsa体系的补充选择 | |
Wright染色 | 瑞氏色素 | 高级纯,≥97%(HPLC),用于血液和生物学染色 | Wright染色 | 用于配制瑞氏染色体系,适合血液涂片和血液寄生虫形态观察 | |
Wright染色 | 瑞氏色素 | 生物染色剂 | Wright染色 | 用于血液学染色体系配置,辅助观察血液寄生虫与宿主细胞形态 | |
May-Grünwald染色 | 迈格林华染色液 | BioReagent,生物染色剂,用于显微镜,适用于微生物学 | May-Grünwald染色 | 可与Giemsa类体系配合,用于血液涂片、血细胞背景和寄生虫结构观察 | |
疟原虫荧光筛查 | 疟原虫染色液(吖啶橙染色液) | BioReagent,适用于微生物学,用于显微镜,生物染色剂 | 吖啶橙荧光染色 | 用于疟原虫荧光筛查,适合低虫血症样本的快速显微观察 | |
荧光核酸染色 | 丫啶橙半氯化锌盐 | 用于电泳 | 吖啶橙荧光染色 | 可用于核酸荧光染色体系配置,辅助血液寄生虫荧光显微筛查 | |
荧光核酸染色 | SYTO9 | BioReagent,≥95%(HPLC) | 核酸荧光染色 | 用于血液寄生虫核酸荧光信号观察,可作为形态学筛查的补充方法 | |
荧光核酸染色 | 即用型SYTO Green 9 活细胞核酸染料(5 mM) | BioReagent,即用型,生物染色剂,适用于荧光分析,用于显微镜,无菌,5 mM | 核酸荧光染色 | 用于荧光显微观察中寄生虫核酸信号显示,适合快速筛查或成像补充 | |
微丝蚴染色 | 微丝蚴染色液(代氏苏木素染色液) | BioReagent,生物染色剂,适用于微生物学,用于显微镜 | 微丝蚴专用染色 | 用于微丝蚴鞘膜、体核排列、头端和尾端结构观察 | |
微丝蚴染色 | 微丝蚴染色液(硼砂美蓝染色液) | BioReagent,生物染色剂,适用于微生物学,用于显微镜 | 硼砂美蓝染色 | 用于微丝蚴形态学观察,辅助显示虫体轮廓和体核分布 | |
核结构染色 | Heidenhain铁苏木素染色液 | BioReagent,用于显微镜,生物染色剂 | 铁苏木精染色 | 用于微小寄生虫、微丝蚴或组织内寄生虫结构的高对比度观察 | |
组织/骨髓寄生虫辅助 | 改良苏木素-伊红(HE)染色试剂盒 | BioReagent,用于细胞培养,用于显微镜 | HE染色 | 用于组织或骨髓样本中寄生虫截面、宿主炎症反应和组织病变观察 | |
组织/骨髓寄生虫辅助 | 苏木素伊红(HE)染色试剂盒(含分化液) | BioReagent,用于显微镜,生物染色剂 | HE染色 | 用于组织内血液寄生虫相关病变和宿主组织反应观察 | |
组织/骨髓寄生虫辅助 | 苏木素伊红(HE)染色试剂盒(含分化液和返蓝液) | BioReagent,用于显微镜,生物染色剂 | HE染色 | 用于组织切片标准化HE染色,辅助虫体截面和炎症背景判读 | |
抗酸性卵囊排查 | 抗酸染色液(Kinyoun冷染法) | BioReagent,生物染色剂,用于显微镜,适用于微生物学 | Kinyoun冷染法 | 用于疑似抗酸性卵囊或相关寄生虫结构排查,作为血液寄生虫鉴别场景的补充 | |
抗酸性卵囊排查 | 抗酸染色液(Ziehl-Neelsen热染法) | BioReagent,生物染色剂,用于显微镜 | Ziehl-Neelsen抗酸染色 | 用于抗酸性寄生虫卵囊或相关结构染色观察 | |
抗酸荧光补充 | 抗酸染色液(金胺O-罗丹明荧光法) | BioReagent,生物染色剂,适用于微生物学,用于显微镜 | 金胺O-罗丹明荧光法 | 用于抗酸性卵囊荧光筛查,适合与常规血液寄生虫检测作鉴别补充 | |
抗酸荧光补充 | 抗酸染色液(金胺O荧光法) | BioReagent,生物染色剂,用于显微镜,适用于微生物学 | 金胺O荧光法 | 用于抗酸性结构荧光观察,辅助疑难样本排查 | |
抗酸主染组分 | 石炭酸品红 | AR | 抗酸主染 | 用于抗酸染色主染体系配置,辅助抗酸性卵囊或相关结构观察 | |
抗酸复染 | 亚甲基蓝 | 0.1% | 抗酸复染 | 用于抗酸染色背景复染,使阳性结构与背景形成对比 | |
抗酸复染 | 亚甲基蓝 | ≥70% | 亚甲基蓝复染 | 用于抗酸染色或涂片背景复染体系配置 | |
荧光抗酸组分 | 金胺O | 生物染色剂,≥90% | 荧光抗酸染色 | 用于抗酸性结构荧光染色体系配置,适合疑难寄生虫样本补充筛查 | |
封片保存 | 中性树胶 | FMP | 永久封片 | 用于染色后血涂片、组织切片或永久制片封片保存 | |
封片保存 | 甘油明胶封片液 | 适用于免疫荧光,BioReagent,即用型,适用于免疫组织化学,无菌 | 水性/半永久封片 | 用于荧光染色样本或显微观察样本封片保存 |
8 常见问题
8.1 血液寄生虫检测为什么要同时做厚血膜和薄血膜?
厚血膜提高检出率,适合低虫血症筛查;薄血膜保留红细胞形态,适合虫种鉴别和寄生率计算。两者功能不同,并行使用可同时提高敏感性和判读准确性。
8.2 Giemsa染色和Wright-Giemsa染色哪个更适合疟原虫?
标准Giemsa染色更适合疟原虫厚血膜和薄血膜检测,尤其适合虫体阶段和红细胞改变观察。Wright-Giemsa可用于血液学背景下的薄血膜观察,但疑难样本仍建议用标准Giemsa复核。
8.3 快速染色阴性可以排除疟疾吗?
不能。快速Romanowsky染色适合初筛,但低虫血症、早期感染或涂片质量不佳时可能漏检。临床疑似度高时,应进行厚血膜标准Giemsa染色、重复采样或分子检测。
8.4 巴贝虫和疟原虫如何在血涂片中区分?
两者均可出现红细胞内环状体。巴贝虫通常无疟色素,可见梨形体或四联体样结构;疟原虫常可结合虫体阶段、色素、红细胞改变和点彩进行判断。形态不典型时需结合流行病学和分子检测。
8.5 微丝蚴检测为什么强调采血时间?
部分微丝蚴在外周血中具有周期性,夜间或白天出现密度不同。采血时间不匹配可能导致假阴性。检测前应根据疑似虫种和流行区特点安排采血时间。
8.6 厚血膜为什么不能甲醇固定?
厚血膜需要红细胞溶解或脱血红蛋白,以便寄生虫集中显示。甲醇固定会保留红细胞结构,影响脱血红蛋白过程,使背景过厚并降低虫体可见性。
8.7 显微镜阴性但临床高度怀疑怎么办?
应复查厚血膜和薄血膜,增加观察视野或重复采血。若仍阴性,可结合快速抗原检测、PCR或其他分子方法。显微镜结果应与发热周期、旅行史、蜱叮咬史、贫血和血小板变化综合判断。
血液寄生虫显微检测应以标准化血膜制备和Romanowsky类染色为基础。厚血膜解决检出率问题,薄血膜解决形态鉴别问题;Giemsa染色适合常规确证,Wright-Giemsa和快速染色适合补充场景,荧光和浓集方法则用于低丰度或快速筛查样本。
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