CD161-LLT1免疫调控轴研究:肿瘤免疫、NK细胞功能和T细胞反应评价
CD161-LLT1免疫调控轴研究:肿瘤免疫、NK细胞功能和T细胞反应评价
CD161-LLT1轴连接NK细胞、T细胞与肿瘤微环境,是评估肿瘤免疫调控和免疫逃逸的重要通路之一。该轴研究不宜仅停留在CD161或LLT1表达水平检测,还应结合细胞来源、空间定位、细胞毒功能、细胞因子释放、耗竭表型和阻断验证进行综合评价。
关键词:CD161;LLT1;肿瘤免疫;NK细胞;T细胞反应;免疫检查点;肿瘤微环境
1 CD161-LLT1免疫调控轴的研究逻辑
1.1 通路组成
(1)CD161/KLRB1
CD161由KLRB1编码,属于C型凝集素样受体,表达于NK细胞、部分CD4+ T细胞、CD8+ T细胞、MAIT细胞、Th17样细胞和部分组织驻留T细胞。它既可作为特定免疫细胞亚群标志,也可参与调控细胞活化、组织迁移、细胞因子产生和细胞毒反应。
(2)LLT1/CLEC2D
LLT1由CLEC2D编码,是CD161的重要配体,可表达于抗原呈递细胞、活化免疫细胞和部分肿瘤细胞。肿瘤细胞、B细胞、树突状细胞或髓系细胞上调LLT1时,可能通过与CD161相互作用改变NK细胞和T细胞反应。
(3)轴向关系
CD161-LLT1轴并非固定的单向“激活”或“抑制”通路,其功能取决于细胞类型、组织背景、肿瘤类型、共刺激/共抑制信号和炎症环境。NK细胞研究中应重点评价细胞毒功能是否受抑;T细胞研究中则需区分CD161所代表的是效应、组织驻留、Th17样特征,还是慢性刺激或功能耗竭状态。
1.2 研究问题拆解
(1)CD161来源
应明确CD161主要来自NK细胞、CD8+ T细胞、CD4+ T细胞、MAIT细胞还是组织驻留T细胞。不同来源的CD161阳性细胞在肿瘤免疫中的功能意义不同,不能仅用总CD161表达解释免疫状态。
(2)LLT1来源
LLT1可来源于肿瘤细胞、抗原呈递细胞、B细胞、树突状细胞或髓系细胞。若LLT1主要位于肿瘤细胞表面,更适合解释肿瘤对NK/T细胞反应的调控;若主要位于免疫细胞,则需进一步分析免疫细胞间的调控网络。
(3)功能改变
表达变化必须与功能读数结合。CD161-LLT1轴研究至少应覆盖细胞毒指标、细胞因子、脱颗粒、增殖、耗竭标志和肿瘤杀伤结果,避免将表面标志变化直接等同于功能改变。
表1 CD161-LLT1轴研究的核心检测框架
研究层面 | 核心指标 | 推荐方法 | 判读重点 |
受体表达 | CD161/KLRB1 | 流式、IHC、IF、qPCR、转录组 | 明确表达细胞类型和空间位置 |
配体表达 | LLT1/CLEC2D | 流式、IHC、IF、qPCR、Western blot | 区分肿瘤细胞、髓系细胞和淋巴细胞来源 |
NK细胞功能 | CD107a、IFN-γ、Granzyme B、Perforin、杀伤率 | 流式、ELISA、细胞毒实验 | 判断CD161-LLT1是否影响细胞毒功能 |
T细胞反应 | CD69、CD25、Ki-67、IFN-γ、TNF-α、IL-17A | 流式、ELISA、ICS、转录组 | 区分活化、增殖、炎症型和耗竭型反应 |
免疫抑制 | PD-1、TIM-3、LAG-3、TIGIT、CTLA-4 | 流式、IHC、转录组 | 判断CD161+细胞是否伴随耗竭或抑制表型 |
肿瘤微环境 | CD8、NKp46、CD56、CD68、MHC-I、PD-L1 | 多重IF、IHC、空间转录组 | 结合空间邻近关系判断轴向作用可能性 |
2 CD161与LLT1表达检测
2.1 CD161表达分析
(1)流式细胞术
流式细胞术适合定量分析CD161在NK细胞、CD8+ T细胞、CD4+ T细胞和MAIT细胞中的表达比例与表达强度。面板设计应至少包含CD45、CD3、CD56、CD16、CD4、CD8、TCR或MAIT相关标志,并结合活死染排除死细胞造成的假阳性信号。
(2)组织定位
IHC或多重免疫荧光适合判断CD161+细胞在肿瘤巢、间质、血管周围和坏死区的空间分布。单标CD161无法确认细胞来源,更适合与CD3、CD8、CD56、NKp46、CD103或其他组织驻留相关标志联合检测。
(3)转录组分析
KLRB1表达可用于单细胞转录组或bulk RNA分析。单细胞数据能区分不同免疫细胞亚群;bulk数据反映的是总体表达,容易受免疫浸润比例影响,需结合细胞组成校正或免疫细胞去卷积分析。
2.2 LLT1表达分析
(1)肿瘤细胞表达
肿瘤细胞表面LLT1表达可通过流式、IHC、IF或Western blot检测。若LLT1高表达与NK细胞杀伤下降、CD107a减少或Granzyme B下降同步出现,可支持肿瘤细胞通过LLT1参与免疫逃逸。
(2)免疫细胞表达
LLT1也可能由B细胞、树突状细胞、单核/巨噬细胞或活化淋巴细胞表达。分析肿瘤组织时,应结合CD19、CD11c、CD14、CD68、HLA-DR等标志确定LLT1来源。
(3)诱导条件
炎症因子、肿瘤刺激、Toll样受体信号或细胞活化状态可能改变LLT1表达。体外实验可设置IFN-γ、TNF-α、LPS或肿瘤条件培养基处理,观察LLT1是否被诱导上调。
2.3 共表达与空间关系
(1)细胞间邻近
CD161-LLT1轴依赖细胞接触或局部相互作用。多重IF、空间转录组或成像质谱可用于判断CD161+免疫细胞是否靠近LLT1+肿瘤细胞或抗原呈递细胞。
(2)同一细胞共表达
若同一细胞同时表达CD161和LLT1,应谨慎解释。此类结果可能代表自分泌/旁分泌调控或活化状态改变,也可能来自抗体非特异、双tsinglet事件或细胞碎片黏附,需要通过流式singlet门控和成像验证确认。
(3)功能关联
表达量升高不能直接说明通路激活。应通过阻断抗体、基因敲低、过表达、共培养或配体重组蛋白刺激实验验证功能因果关系。
3 肿瘤免疫中的CD161-LLT1轴
3.1 肿瘤免疫逃逸
(1)LLT1上调
部分肿瘤细胞或肿瘤相关免疫细胞可上调LLT1,使其与CD161+ NK细胞或T细胞接触。若LLT1高表达区域同时出现NK细胞脱颗粒降低、细胞毒分子减少或肿瘤杀伤下降,可提示该轴参与免疫逃逸。
(2)NK细胞抑制
NK细胞依赖NKG2D、DNAM-1、NKp30、NKp44、NKp46等激活受体识别异常细胞。CD161-LLT1信号若削弱NK细胞脱颗粒和杀伤能力,可能降低肿瘤免疫监视效率。
(3)T细胞反应重塑
CD161+ T细胞并不必然代表抑制细胞。其可能具有组织驻留、炎症反应、IL-17相关或效应记忆特征。肿瘤中CD161+ T细胞增加时,应结合PD-1、TIM-3、LAG-3、TOX、IFN-γ、GZMB和IL-17A判断功能状态。
3.2 肿瘤类型差异
(1)实体瘤
实体瘤中应重点观察LLT1在肿瘤细胞、肿瘤相关巨噬细胞和B细胞中的表达,以及CD161+ NK/T细胞是否进入肿瘤巢。肿瘤间质屏障明显时,CD161+细胞可能富集于间质,而非直接邻近肿瘤细胞。
(2)血液肿瘤
血液肿瘤样本中,LLT1表达可能与肿瘤B细胞、异常淋巴细胞或抗原呈递细胞有关。流式分析更适合区分肿瘤细胞和免疫细胞来源。
(3)免疫治疗背景
在PD-1/PD-L1、CTLA-4或NK细胞治疗研究中,CD161-LLT1轴可作为补充免疫调控节点。若CD161或LLT1与疗效、免疫浸润或耗竭标志相关,可进一步开展阻断实验验证其治疗价值。
表2 肿瘤免疫中CD161-LLT1轴的常见结果模式
结果模式 | 可能解释 | 建议补充实验 |
LLT1高表达,NK杀伤下降 | 肿瘤可能通过LLT1抑制NK细胞功能 | CD161/LLT1阻断、CD107a、杀伤实验 |
CD161+ CD8+ T细胞增加,GZMB高 | 可能代表效应型或组织驻留样T细胞富集 | 联测IFN-γ、PD-1、CD103、TCF1 |
CD161+ T细胞增加,PD-1/TIM-3高 | 可能伴随耗竭或慢性刺激状态 | TOX、LAG-3、功能刺激实验 |
LLT1主要位于髓系细胞 | 可能反映髓系细胞参与免疫调控 | CD68、CD163、HLA-DR、多重IF |
KLRB1在bulk RNA中升高 | 可能由免疫浸润增加驱动 | 单细胞分析或免疫细胞去卷积 |
阻断LLT1后杀伤增强 | 支持CD161-LLT1轴具有功能抑制作用 | 重复供体、不同肿瘤细胞系验证 |
4 NK细胞功能评价
4.1 NK细胞亚群
(1)CD56bright NK细胞
CD56bright NK细胞以细胞因子产生和免疫调节功能为主,常表达较高水平的调控受体。CD161在该亚群中的变化应结合IFN-γ、TNF-α、CD69和增殖指标解释。
(2)CD56dim NK细胞
CD56dim NK细胞以细胞毒作用为主,常表达CD16、Granzyme B和Perforin。若CD161-LLT1轴影响该亚群,应重点检测CD107a、靶细胞裂解率和抗体依赖细胞毒作用。
(3)组织驻留NK样细胞
肿瘤组织中部分NK样细胞可能表现出组织驻留、低细胞毒或耗竭样特征。分析时应加入CD69、CD103、CXCR6、TIGIT、PD-1等标志,避免将组织适应性变化简单解释为活化或抑制。
4.2 功能检测
(1)脱颗粒实验
CD107a是NK细胞脱颗粒常用读数。将NK细胞与LLT1+肿瘤细胞共培养后检测CD107a,可评估CD161-LLT1轴是否影响杀伤颗粒释放。
(2)细胞毒实验
LDH释放、流式靶细胞死亡、荧光/发光细胞毒实验可直接评价杀伤效率。若阻断CD161或LLT1后靶细胞死亡增加,更能支持该轴参与抑制NK细胞杀伤。
(3)细胞因子检测
IFN-γ、TNF-α和GM-CSF可反映NK细胞活化和炎症调节能力。若细胞毒下降但细胞因子不变,说明CD161-LLT1可能主要影响脱颗粒或杀伤过程;若二者均下降,则提示更广泛的功能抑制。
4.3 机制验证
(1)阻断实验
使用CD161或LLT1阻断抗体可观察NK细胞杀伤、脱颗粒和细胞因子是否恢复。阻断实验应设置同型对照、未阻断对照和LLT1阴性靶细胞对照。
(2)基因操作
肿瘤细胞中敲低或过表达CLEC2D,或在NK细胞中调控KLRB1,可用于验证方向性作用。若LLT1过表达降低NK细胞杀伤,而敲低LLT1恢复杀伤,证据链更完整。
(3)共刺激背景
NK细胞功能受IL-2、IL-12、IL-15、IL-18和靶细胞配体共同影响。CD161-LLT1轴实验应控制细胞因子刺激强度,避免强刺激掩盖通路效应。
表3 NK细胞功能评价指标
功能层面 | 推荐指标 | 方法 | 判读重点 |
亚群构成 | CD3、CD56、CD16、CD161 | 流式 | 区分CD56bright和CD56dim NK细胞 |
脱颗粒 | CD107a | 流式共培养 | 判断杀伤颗粒释放是否受LLT1影响 |
细胞毒分子 | Granzyme B、Perforin | 流式、Western blot、ELISA | 与靶细胞死亡结果联用 |
细胞因子 | IFN-γ、TNF-α、GM-CSF | ICS、ELISA、CBA | 判断功能抑制是否影响炎症输出 |
杀伤效率 | 靶细胞死亡率、LDH释放 | 流式、发光/荧光、LDH法 | 作为功能因果验证核心结果 |
抑制表型 | TIGIT、PD-1、NKG2A、TIM-3 | 流式 | 判断NK细胞是否处于抑制或耗竭样状态 |
5 T细胞反应评价
5.1 CD161+ T细胞亚群
(1)CD8+ T细胞
CD161+ CD8+ T细胞可能具有效应记忆、组织驻留或慢性刺激特征。需要结合GZMB、PRF1、IFN-γ、PD-1、TCF1、CD103和Ki-67判断其功能,而不是仅按CD161阳性判定为抑制或激活。
(2)CD4+ T细胞
CD161+ CD4+ T细胞常与Th17样、记忆样或组织炎症相关特征有关。IL-17A、RORγt、CCR6、IFN-γ和TNF-α有助于判断其炎症型功能。
(3)MAIT细胞
MAIT细胞通常高表达CD161,并参与黏膜免疫、抗菌反应和肿瘤免疫调节。若样本中MAIT细胞比例较高,应使用Vα7.2、MR1四聚体或相关标志区分MAIT细胞,避免将MAIT细胞变化误解为普通T细胞CD161变化。
5.2 T细胞功能指标
(1)活化与增殖
CD69、CD25、HLA-DR、Ki-67可用于评价T细胞活化和增殖。若CD161+ T细胞同时表现出Ki-67升高和效应因子增强,提示其可能处于活化扩增状态。
(2)效应功能
IFN-γ、TNF-α、IL-2、Granzyme B和Perforin可反映T细胞效应能力。CD161-LLT1轴是否影响T细胞功能,应通过刺激实验、共培养和阻断实验验证。
(3)耗竭与抑制
PD-1、TIM-3、LAG-3、TIGIT、CTLA-4和TOX可用于评价耗竭或慢性刺激表型。CD161+ T细胞若同时高表达多种耗竭标志且细胞因子下降,更可能代表功能受限状态。
5.3 共培养与抗原刺激实验
(1)肿瘤共培养
将T细胞与LLT1+肿瘤细胞或抗原呈递细胞共培养,可观察CD161-LLT1轴对T细胞活化、细胞因子和杀伤能力的影响。需设置LLT1阻断、CD161阻断和配体阴性对照。
(2)TCR刺激
抗CD3/CD28刺激可用于评估T细胞最大活化能力。若强TCR刺激后CD161-LLT1效应减弱,说明该轴可能在较弱抗原刺激或肿瘤接触条件下更明显。
(3)抗原特异性反应
肿瘤抗原肽、肿瘤细胞裂解物或自体肿瘤细胞共培养可用于分析抗原特异性T细胞反应。此类实验更接近肿瘤免疫场景,但对样本质量和对照体系要求更高。
表4 T细胞反应评价指标
分析目标 | 推荐指标 | 方法 | 判读重点 |
T细胞亚群 | CD3、CD4、CD8、CD161 | 流式、IF | 明确CD161来源于哪类T细胞 |
MAIT细胞区分 | Vα7.2、MR1四聚体、CD161 | 流式 | 避免MAIT细胞混入普通T细胞解释 |
活化状态 | CD69、CD25、HLA-DR | 流式 | 判断短期和持续性活化 |
增殖能力 | Ki-67、CFSE稀释 | 流式 | 判断T细胞扩增能力 |
效应功能 | IFN-γ、TNF-α、IL-2、GZMB | ICS、ELISA、CBA | 与杀伤或抗原刺激实验联用 |
耗竭状态 | PD-1、TIM-3、LAG-3、TIGIT、TOX | 流式、IHC、转录组 | 判断慢性刺激和功能受限程度 |
6 实验设计与质量控制
6.1 样本类型
(1)肿瘤组织
肿瘤组织适合分析CD161+免疫细胞浸润、LLT1空间分布和免疫抑制环境。新鲜组织可用于流式和单细胞分析,FFPE样本可用于IHC或多重IF。
(2)外周血
外周血适合动态监测CD161+ NK/T细胞比例和功能状态,但不能完全代表肿瘤微环境。若研究肿瘤免疫逃逸,应优先增加肿瘤组织或肿瘤浸润淋巴细胞检测。
(3)体外共培养
体外共培养适合验证CD161-LLT1轴的功能因果关系。实验中应控制效靶比、细胞因子浓度、刺激时间和靶细胞LLT1表达水平。
6.2 方法组合
(1)流式为基础
流式细胞术适合解析细胞亚群、受体表达、脱颗粒、细胞因子和耗竭标志。CD161-LLT1轴研究中,流式通常是核心功能和表型平台。
(2)组织定位作补充
IHC和多重IF可确认CD161+细胞与LLT1+细胞是否存在空间接触。若缺少空间定位,仅凭总体表达无法判断该轴是否在组织内发生相互作用。
(3)阻断实验验证因果
CD161或LLT1阻断是判断通路功能的重要步骤。若阻断后NK杀伤增强、T细胞因子恢复或肿瘤细胞死亡增加,才能更有力说明该轴具有功能意义。
6.3 关键控制点
(1)抗体特异性
CD161和LLT1抗体需要验证适用平台。流式抗体、IHC抗体和Western blot抗体不能默认通用,应分别验证阳性对照、阴性对照和同型对照。
(2)门控策略
NK细胞应排除CD3+ T细胞,T细胞分析应区分CD4/CD8/MAIT/Treg等亚群。LLT1检测应排除死细胞、双tsinglet和Fc受体非特异结合。
(3)功能读数优先
表达数据是线索,功能数据才是关键。CD161-LLT1轴研究应至少包含一项功能实验,如CD107a、细胞毒实验、细胞因子释放、阻断恢复或基因操作。
表5 CD161-LLT1轴实验设计中的常见问题与优化方向
问题 | 常见原因 | 优化方向 |
CD161表达升高但功能无变化 | CD161仅代表亚群标志或刺激强度过高 | 增加阻断实验和弱刺激条件 |
LLT1信号背景高 | 抗体非特异、Fc受体结合或死细胞干扰 | 加Fc封闭、活死染和阴性对照 |
NK杀伤实验差异不明显 | 效靶比不合适或LLT1表达不足 | 优化效靶比并验证靶细胞LLT1 |
T细胞结果解释混乱 | CD161+ T细胞组成复杂 | 区分CD4、CD8、MAIT和组织驻留T细胞 |
bulk RNA中KLRB1升高难解释 | 免疫浸润比例变化 | 单细胞分析或免疫细胞去卷积 |
阻断实验无效 | 阻断抗体浓度不足或通路非主导 | 设置阳性对照并联合其他检查点分析 |
组织染色不能判断相互作用 | 缺少空间邻近信息 | 使用多重IF或空间分析 |
7 CD161-LLT1免疫调控轴研究相关产品选型
表6 CD161-LLT1免疫调控轴研究相关产品选型
应用模块 | 货号 | 产品名称 | 级别/规格 | 方法/体系 | 应用定位 |
CD161表达检测 | CD161 Mouse mAb | 无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,PBS Only,见COA | 抗体检测 | 用于CD161蛋白检测,适合NK细胞、T细胞和肿瘤浸润免疫细胞中CD161表达分析 | |
CD161流式检测 | CD161 Mouse mAb (FITC) | ExactAb™,已验证,Ex:498nm,Em:517nm,0.5 mg/mL | 流式细胞术 | 用于CD161+ NK细胞、CD161+ T细胞和MAIT样细胞流式分群 | |
CD161互作验证 | Recombinant Human CD161 Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,His标签,≥95%(SDS-PAGE) | 重组蛋白/结合实验 | 用于CD161-LLT1结合研究、抗体结合验证和功能实验对照 | |
CD161互作验证 | Recombinant Human CD161 Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,无叠氮钠,Fc标签,≥95%(SDS-PAGE) | 重组蛋白/配体结合实验 | 用于受体-配体互作、阻断验证和蛋白结合实验 | |
CD161基因干预 | KLRB1 Human Pre-designed siRNA Set A |
| siRNA | 用于敲低CD161/KLRB1,验证CD161对NK细胞或T细胞功能的调控作用 | |
LLT1基因干预 | CLEC2D Human Pre-designed siRNA Set A |
| siRNA | 用于敲低LLT1/CLEC2D,验证肿瘤细胞或免疫细胞来源LLT1的功能贡献 | |
T细胞分群 | CD3 Mouse mAb (APC) | ExactAb™,已验证,Ex:650nm,Em:660nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于识别T细胞群体,辅助区分CD161+ T细胞与CD161+ NK细胞 | |
T细胞分群 | CD3 Mouse mAb (AF488) | ExactAb™,已验证,Ex:490nm,Em:525nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于多色流式面板中T细胞识别和CD161共表达分析 | |
T细胞分群 | CD3 Mouse mAb (PE) | ExactAb™,已验证,Ex:565nm,Em:575nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于T细胞分群、T细胞活化和CD161+ T细胞比例检测 | |
T细胞分群 | Recombinant CD3 Antibody | 无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE&SEC-HPLC),见COA | 抗体检测 | 用于组织或蛋白水平T细胞标志检测,可辅助肿瘤浸润T细胞分析 | |
NK细胞分群 | CD56 Mouse mAb | 无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,PBS Only,见COA | 抗体检测 | 用于识别NK细胞和部分NKT样细胞,辅助CD161+ NK细胞分析 | |
NK细胞流式检测 | CD56 Mouse mAb (APC) | ExactAb™,已验证,无叠氮钠,Ex:650nm,Em:660nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于CD56+ NK细胞分群及CD56bright/CD56dim亚群分析 | |
NK细胞流式检测 | CD56 Mouse mAb (FITC) | ExactAb™,已验证,无叠氮钠,Ex:498nm,Em:517nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于多色流式中NK细胞识别和CD161共表达分析 | |
NK细胞流式检测 | CD56 Mouse mAb (PE) | ExactAb™,已验证,无叠氮钠,Ex:565nm,Em:575nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于NK细胞比例检测和肿瘤浸润NK细胞表型分析 | |
NK细胞标志验证 | Recombinant Human NCAM-1/CD56 Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,无叠氮钠,高性能,His标签,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE) | 重组蛋白/对照 | 用于CD56检测体系阳性对照或抗体结合验证 | |
NK细胞分群 | CD16 Mouse mAb | 无载体,ExactAb™,已验证,见COA | 抗体检测 | 用于识别CD16+细胞毒型NK细胞,辅助CD56dim NK细胞功能分析 | |
NK细胞流式检测 | CD16 Mouse mAb (APC) | 已验证,Ex:650nm,Em:660nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于CD16+ NK细胞、ADCC相关表型和CD161共表达检测 | |
NK细胞流式检测 | CD16 Mouse mAb (FITC) | 已验证,Ex:498nm,Em:517nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于NK细胞亚群分型和CD16表达强度分析 | |
NK细胞流式检测 | CD16 Mouse mAb (PE) | 已验证,Ex:565nm,Em:575nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于CD16+ NK细胞比例、细胞毒亚群和功能状态分析 | |
Fc封闭/非特异控制 | CD16/CD32 Rat mAb | 无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,PBS Only,见COA | Fc受体封闭/流式前处理 | 用于减少髓系细胞和肿瘤组织单细胞悬液中的Fc受体非特异结合 | |
髓系来源判定 | CD163 Mouse mAb | Azide Free,Validated,Carrier Free,1.0 mg/mL | 抗体检测 | 用于识别CD163+巨噬细胞,辅助判断LLT1是否来源于免疫抑制性髓系细胞 | |
髓系来源判定 | Recombinant CD163 Antibody | 敲低验证 | 抗体检测 | 用于巨噬细胞标志检测,辅助肿瘤微环境中髓系细胞来源分析 | |
髓系标志检测 | 人CD163分子(CD163)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于人源样本中CD163水平检测,辅助评估肿瘤相关巨噬细胞反应 | |
T/NK细胞活化 | Recombinant Human CD69 Protein | 无动物源,无载体,His标签,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE),见COA | 重组蛋白/对照 | 用于CD69检测体系验证,辅助T细胞和NK细胞活化研究 | |
T/NK细胞活化干预 | CD69 Human Pre-designed siRNA Set A |
| siRNA | 用于CD69表达调控,辅助研究CD161-LLT1轴下游活化状态变化 | |
NK脱颗粒检测 | LAMP1/CD107a Mouse mAb | 见COA | 抗体检测/流式 | 用于NK细胞和细胞毒T细胞脱颗粒检测,是评价杀伤功能的核心指标 | |
NK脱颗粒检测 | LAMP1/CD107a Antibody | 敲低验证 | 抗体检测 | 用于CD107a/LAMP1检测,辅助评估细胞毒颗粒释放 | |
NK脱颗粒对照 | Recombinant Human LAMP-1/CD107a Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,His标签,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE),见COA | 重组蛋白/对照 | 用于CD107a检测体系验证和阳性对照 | |
细胞毒分子检测 | Recombinant Granzyme B Antibody | ExactAb™,Validated,Carrier Free,Recombinant,0.3 mg/mL | 抗体检测 | 用于NK细胞和细胞毒性T细胞Granzyme B表达检测 | |
细胞毒功能对照 | Recombinant Human Granzyme B Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,His标签,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE) | 重组蛋白/对照 | 用于Granzyme B检测体系阳性对照和方法学验证 | |
细胞毒分子检测 | Granzyme M Antibody | ExactAb™,Validated,Carrier Free,0.6 mg/mL | 抗体检测 | 用于补充评价NK细胞颗粒酶谱和细胞毒分子表达 | |
细胞毒机制干预 | Perforin-IN-2 | ≥99% | Perforin抑制剂 | 用于验证穿孔素依赖性杀伤是否参与CD161-LLT1轴功能效应 | |
抗原呈递/活化状态 | HLA-DR Mouse mAb | 无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,高性能,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE),0.5 mg/mL | 抗体检测 | 用于抗原呈递细胞、活化T细胞和肿瘤微环境免疫状态分析 | |
抗原呈递流式检测 | HLA-DR Mouse mAb (APC) | ExactAb™,已验证,无叠氮钠,Ex:650nm,Em:660nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于检测HLA-DR+抗原呈递细胞,辅助判断LLT1免疫细胞来源 | |
抗原呈递流式检测 | HLA-DR Mouse mAb (PE) | 已验证,Ex:565nm,Em:575nm,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于多色流式中HLA-DR与CD161、CD3、CD56等标志联合分析 | |
IFN-γ蛋白检测 | IFN-γ Mouse mAb | 无载体,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE),见COA | 抗体检测 | 用于NK细胞和T细胞IFN-γ表达检测,评价效应功能输出 | |
IFN-γ流式检测 | IFN-γ Mouse mAb (FITC) | ExactAb™,已验证,5 μL/test | 胞内因子流式 | 用于ICS检测IFN-γ,评价CD161+ NK/T细胞效应功能 | |
IFN-γ检测 | 人γ干扰素(IFN-γ)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于人源样本、细胞上清或共培养体系中IFN-γ检测 | |
IFN-γ检测 | 小鼠γ干扰素(IFN-γ)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于小鼠肿瘤模型中IFN-γ检测,评价NK/T细胞抗肿瘤效应 | |
IFN-γ刺激/对照 | IFN-γ1b (human recombinant) | Moligand™ | 重组细胞因子 | 用于体外刺激、阳性对照或分析LLT1诱导条件下的炎症调节效应 | |
TNF-α检测 | 人肿瘤坏死因子α(TNF-α)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于人源样本或共培养上清中TNF-α检测,评价T/NK细胞促炎效应 | |
TNF-α检测 | 小鼠肿瘤坏死因子α(TNF-α)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于小鼠肿瘤模型中TNF-α检测,辅助评价免疫效应反应 | |
TNF-α刺激/对照 | Recombinant Human TNF-α Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,高性能,≥95%(SDS-PAGE),expressed in E. coli,见COA | 重组细胞因子 | 用于体外刺激、炎症条件建模和LLT1诱导条件研究 | |
T细胞活化/增殖 | Recombinant IL-2 Receptor alpha/CD25 Antibody | 无动物源,无载体,重组,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,高性能,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE),见COA | 抗体检测 | 用于检测CD25/IL-2Rα,评价T细胞活化和增殖状态 | |
T细胞活化流式 | Recombinant IL-2 Receptor alpha/CD25 Antibody (PE) | ExactAb™,已验证,重组,5 μL/test | 流式细胞术 | 用于CD25+活化T细胞检测,适合CD161+ T细胞功能表型分析 | |
IL-2检测 | 人白细胞介素2(IL-2)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于检测T细胞活化后IL-2分泌,评价T细胞反应强度 | |
IL-2检测 | 小鼠白细胞介素2(IL-2)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于小鼠肿瘤模型或T细胞共培养体系中IL-2检测 | |
T/NK细胞培养刺激 | Recombinant Human IL-2 Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,高性能,His标签,≥95%(SDS-PAGE),See COA | 细胞因子刺激 | 用于NK细胞和T细胞培养、扩增和功能维持 | |
T/NK细胞培养刺激 | Recombinant Mouse IL-2 Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,高性能,His标签,≥95%(SDS-PAGE),见COA | 细胞因子刺激 | 用于小鼠来源T/NK细胞培养和功能实验 | |
Th17样反应检测 | 人白细胞介素17A(IL-17A)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于CD161+ T细胞Th17样反应和IL-17A分泌水平检测 | |
Th17样反应检测 | 小鼠白细胞介素17A(IL-17A)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于小鼠模型中IL-17A检测,辅助评价CD161+ T细胞炎症型特征 | |
IL-17A蛋白检测 | Recombinant IL-17A Antibody | 无载体,重组,ExactAb™,无叠氮钠,已验证,PBS Only,见COA | 抗体检测 | 用于IL-17A蛋白检测,辅助分析CD161+ CD4+ T细胞或Th17样反应 | |
IL-17A刺激/对照 | Recombinant Human IL-17A Protein | 无动物源,无载体,生物活性,ActiBioPure™,His标签,PBS Only,≥95%(SDS-PAGE),见COA | 重组细胞因子 | 用于IL-17A通路刺激、阳性对照和Th17样功能研究 | |
Th17转录特征检测 | 人转录因子维A酸相关孤独受体γt(RORγt)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于人源样本中RORγt检测,辅助评价CD161+ T细胞Th17样分化特征 | |
Th17转录特征检测 | 小鼠转录因子维A酸相关孤独受体γt(RORγt)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | ELISA | 用于小鼠模型中RORγt检测,辅助评价Th17样T细胞反应 | |
RORγt机制干预 | SR1001,RORα和RORγt反向激动剂 | Moligand™,≥98% | RORγt通路干预 | 用于验证CD161+ T细胞Th17样反应与RORγt通路的关系 |
8 常见问题
8.1 CD161是NK细胞标志还是T细胞标志?
CD161不是单一细胞类型标志。它可表达于NK细胞、部分CD4+ T细胞、CD8+ T细胞、MAIT细胞和组织驻留样T细胞。研究中必须结合CD3、CD56、CD4、CD8、Vα7.2等标志确定细胞来源。
8.2 LLT1高表达是否一定说明肿瘤免疫抑制?
不一定。LLT1高表达提示可能存在CD161相关调控,但是否造成免疫抑制需要功能实验验证。只有当LLT1高表达伴随NK/T细胞功能下降,并且阻断CD161-LLT1后功能恢复,才更支持免疫抑制作用。
8.3 CD161+ T细胞是促效应还是抑制性细胞?
取决于肿瘤类型、细胞亚群和功能状态。CD161+ T细胞可能具有效应、组织驻留、Th17样或耗竭样特征。应结合GZMB、IFN-γ、IL-17A、PD-1、TIM-3、TOX和Ki-67综合判断。
8.4 研究CD161-LLT1轴必须做阻断实验吗?
若只做表达分析,可以获得相关性线索;若要证明功能作用,建议做阻断实验、敲低/过表达或重组配体刺激实验。功能因果验证是该轴研究的关键。
8.5 NK细胞功能评价优先检测哪些指标?
优先检测CD107a脱颗粒、Granzyme B/Perforin、IFN-γ和靶细胞死亡率。若研究CD161-LLT1抑制作用,阻断LLT1或CD161后的杀伤恢复是重要证据。
8.6 LLT1来源如何判断?
可通过流式多标记、IHC/多重IF或单细胞转录组判断。肿瘤细胞来源应与肿瘤标志物共定位,髓系来源应与CD68、CD163或HLA-DR等标志联合分析。
8.7 CD161-LLT1轴能否作为免疫治疗靶点?
该轴具有研究价值,但需要结合肿瘤类型、表达位置、功能实验和临床相关性判断。若阻断该轴能增强NK/T细胞杀伤,并与患者预后或免疫治疗反应相关,才更支持其作为候选靶点。
CD161-LLT1轴研究应从表达定位进入功能验证,再结合肿瘤微环境和免疫治疗背景解释。CD161标记的免疫细胞具有明显异质性,LLT1来源也可能不同;只有将细胞亚群、空间关系、阻断实验和NK/T细胞功能读数整合,才能判断该轴在肿瘤免疫中的真实作用。
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