RNA-DNA杂合体如何影响基因组稳定性:RNase H1、RNase H2与R-loop调控机制
RNA-DNA杂合体如何影响基因组稳定性:RNase H1、RNase H2与R-loop调控机制
RNA-DNA杂合体是RNA链与DNA模板链配对形成的核酸结构,典型形式包括转录相关R-loop和DNA中核糖核苷酸嵌入后形成的杂合区域。RNase H1、RNase H2及解旋酶、拓扑异构酶、RNA加工因子共同决定这类结构是参与正常调控,还是转化为复制压力、DNA损伤和基因组不稳定来源。
关键词:RNA-DNA杂合体;R-loop;RNase H1;RNase H2;基因组稳定性;转录复制冲突;复制压力;核糖核苷酸切除修复;DNA损伤;DRIP-qPCR
1 RNA-DNA杂合体与R-loop的结构特征
1.1 基本结构
RNA-DNA杂合体由一条RNA链与互补DNA链配对形成。若该结构发生在双链DNA区域,另一条DNA链被排出并形成单链DNA区,则构成典型R-loop。R-loop不是单纯异常结构,在启动子、终止区、免疫球蛋白基因、线粒体DNA复制和部分调控区域中可参与正常转录调控;但当形成位置、持续时间或清除效率失衡时,会增加DNA损伤风险。
(1)转录相关R-loop
转录过程中,新生RNA可重新与模板DNA链配对,尤其在GC偏高、G-rich RNA、转录强度高、RNA加工受阻或DNA拓扑压力升高的区域更容易形成R-loop。该结构会暴露非模板链单链DNA,使其更易受到核酸酶、脱氨酶或复制叉碰撞影响。
(2)复制相关RNA-DNA杂合体
复制过程中,RNA引物、冈崎片段加工残留以及错误嵌入DNA中的核糖核苷酸均可形成RNA-DNA杂合特征。与经典转录R-loop不同,这类结构更直接连接DNA复制成熟、核糖核苷酸切除修复和复制叉稳定性。
(3)线粒体RNA-DNA杂合体
线粒体DNA复制和转录高度耦联,RNA-DNA杂合体可参与复制起始和转录后处理。RNase H1在线粒体中尤其重要,其缺失或功能不足会影响线粒体DNA复制、拷贝数维持和呼吸链功能。
1.2 R-loop的双重作用
R-loop具有调控与损伤双重属性。稳定、短暂且定位明确的R-loop可参与转录终止、启动子开放、染色质调节和免疫相关基因重排;持续积累或错误定位的R-loop则可阻碍复制叉推进、诱发转录复制冲突、促进双链断裂并激活DNA损伤应答。实验判读时不宜将R-loop简单等同于“有害结构”,应结合形成位置、细胞周期、转录状态和DNA损伤读数分析。
表1 RNA-DNA杂合体的主要来源与判读重点
结构来源 | 典型区域 | 相关机制 | 风险点 | 推荐联合指标 |
转录相关R-loop | 启动子、终止区、高转录基因、GC-rich区域 | 新生RNA回配模板链 | 转录复制冲突、单链DNA暴露 | DRIP-qPCR、γH2AX、RNA Pol II、复制叉指标 |
RNA引物残留 | 复制起始位点、冈崎片段成熟区域 | RNA引物去除不完全 | 复制成熟异常 | RNase H2、FEN1、LIG1、复制压力指标 |
核糖核苷酸嵌入DNA | 全基因组复制产物 | DNA聚合酶误掺入rNMP | DNA断裂、突变、复制阻滞 | RNase H2、RER相关指标、碱敏感断裂分析 |
线粒体RNA-DNA杂合体 | mtDNA复制和转录区域 | 复制起始、RNA处理 | mtDNA拷贝数下降、呼吸链异常 | RNase H1、mtDNA copy number、OXPHOS指标 |
端粒相关R-loop | 端粒和TERRA转录区域 | TERRA-DNA杂合体形成 | 端粒复制压力和端粒不稳定 | TERRA、端粒FISH、DNA损伤焦点 |
2 RNase H1与RNase H2的功能分工
2.1 RNase H1
RNase H1主要切割较长RNA-DNA杂合体中的RNA链,对连续RNA-DNA杂合结构处理能力较强,但通常不能高效识别单个嵌入DNA中的核糖核苷酸。其功能覆盖核基因组R-loop清除和线粒体RNA-DNA杂合体处理,在线粒体DNA复制中尤其关键。
(1)核内R-loop处理
RNase H1过表达常用于验证S9.6抗体或DRIP信号是否来自RNA-DNA杂合体。若RNase H1处理后DRIP-qPCR信号下降,说明该区域存在RNase H敏感的杂合结构;若信号不变,则需要考虑非特异结合、dsRNA信号或检测背景。
(2)线粒体DNA维持
RNase H1参与线粒体RNA引物或RNA-DNA杂合体处理。RNase H1不足可导致线粒体DNA复制异常、mtDNA拷贝数下降和氧化磷酸化受损,因此线粒体模型中不应只检测核内R-loop。
(3)实验应用边界
RNase H1过表达可降低部分R-loop,但过量表达可能改变正常调控性R-loop和转录状态。功能验证时应结合催化失活突变体、定位突变体、DRIP信号、DNA损伤和细胞活力共同判断。
2.2 RNase H2
RNase H2是由RNASEH2A、RNASEH2B和RNASEH2C组成的异源三聚体,既可处理RNA-DNA杂合体,也可识别DNA双链中单个核糖核苷酸并启动核糖核苷酸切除修复。与RNase H1相比,RNase H2在清除嵌入DNA的rNMP方面具有不可替代性。
(1)核糖核苷酸切除修复
DNA聚合酶在复制过程中会误掺入核糖核苷酸。RNase H2识别该位点后切开RNA-DNA连接处,后续由DNA聚合酶、核酸酶和连接酶完成修复。该过程受损时,基因组中rNMP累积,可能引发复制阻滞、DNA断裂和突变。
(2)R-loop调控
RNase H2也可参与部分R-loop处理,但其功能不能简单等同于RNase H1。若模型中RNASEH2A/B/C缺陷导致R-loop信号升高,应进一步区分是转录R-loop增加、rNMP修复缺陷,还是复制压力继发性改变。
(3)疾病相关性
RNase H2复合体缺陷与核酸代谢异常、DNA损伤应答和先天免疫激活密切相关。若胞质DNA、cGAS-STING通路或干扰素刺激基因上调,应同时评估基因组rNMP累积、DNA损伤和R-loop状态。
表2 RNase H1与RNase H2的功能差异
项目 | RNase H1 | RNase H2 |
组成形式 | 单一酶蛋白 | RNASEH2A/B/C三亚基复合体 |
主要底物 | 较长RNA-DNA杂合体 | RNA-DNA杂合体、单个嵌入DNA的rNMP |
关键功能 | R-loop清除、线粒体RNA-DNA杂合体处理 | 核糖核苷酸切除修复、复制相关RNA-DNA结构处理 |
线粒体相关性 | 强 | 通常不作为线粒体DNA复制核心处理酶 |
实验用途 | R-loop信号验证、过表达清除实验 | rNMP修复缺陷、复制压力和免疫激活研究 |
判读风险 | 过表达可能影响正常R-loop调控 | R-loop升高可能是rNMP累积和复制压力的间接结果 |
3 R-loop形成与清除的调控网络
3.1 转录强度与RNA加工
高转录区域更容易形成R-loop,但转录强并不必然导致R-loop积累。RNA加帽、剪接、3'端加工和RNA输出可降低新生RNA回配模板DNA的机会;当剪接因子、RNA输出因子或转录终止过程受损时,新生RNA滞留在染色质附近,R-loop形成概率升高。实验中若观察到R-loop增加,应同步检测RNA加工或转录终止异常,而不宜只归因于RNase H不足。
3.2 DNA拓扑与染色质状态
转录推进会造成局部超螺旋压力,负超螺旋可促进DNA链分离并增加RNA回配机会。拓扑异构酶、染色质重塑因子和组蛋白修饰状态会影响R-loop形成阈值。TOP1或TOP2功能异常、染色质过度开放或GC-rich区域暴露,均可能使R-loop更稳定。
3.3 解旋酶与核酸加工因子
SETX、DDX、DHX、PIF1、FANCM等解旋酶或核酸处理因子可参与R-loop解离、转录终止、复制叉保护和DNA修复。不同因子作用位置不同:有的偏转录终止区,有的偏复制叉冲突区域,有的与同源重组或范可尼贫血通路相关。解释R-loop表型时,应结合具体因子的定位和功能背景。
3.4 复制叉与转录复制冲突
复制叉与转录机器在同一DNA模板上相遇时,R-loop可加剧冲突。头对头冲突通常更容易造成复制叉停滞和DNA断裂;同向冲突也可能因RNA-DNA杂合体、RNA Pol II停滞或拓扑压力异常而产生复制压力。R-loop相关基因组不稳定性常表现为复制叉速度下降、叉停滞增加、γH2AX升高和53BP1/RPA焦点积累。
表3 R-loop调控因子与功能分层
调控层级 | 代表因素 | 主要作用 | 异常后常见结果 |
RNA加工 | 剪接因子、RNA输出因子、3'端加工因子 | 降低新生RNA回配DNA机会 | 转录相关R-loop增加 |
DNA拓扑 | TOP1、TOP2 | 缓解转录诱导超螺旋压力 | DNA链分离增加,R-loop稳定化 |
解旋酶 | SETX、DDX/DHX家族、PIF1、FANCM | 解离R-loop或保护复制叉 | 转录终止异常、复制压力升高 |
修复通路 | BRCA1/2、FANCD2、ATR、ATM | 处理R-loop相关损伤和复制压力 | DSB、染色体不稳定 |
核酸酶 | RNase H1、RNase H2 | 切割RNA-DNA杂合体中的RNA链 | R-loop或rNMP相关损伤累积 |
染色质环境 | 组蛋白修饰、染色质重塑因子 | 调节DNA可及性和转录状态 | R-loop形成位置改变 |
4 RNA-DNA杂合体异常与基因组不稳定性
4.1 复制压力
R-loop可作为复制叉前方的物理障碍,也可通过改变拓扑结构和染色质状态增加复制叉停滞。复制压力通常表现为复制叉速度降低、DNA纤维实验中复制轨迹缩短、RPA单链DNA焦点增加和ATR通路激活。若RNase H1过表达可部分恢复复制叉推进,说明R-loop可能参与该复制缺陷。
4.2 DNA双链断裂
R-loop暴露的单链DNA更易发生损伤,复制叉撞击稳定R-loop也可形成断裂。γH2AX、53BP1、pATM、pDNA-PKcs等指标升高可提示DNA损伤,但不能单独证明损伤由R-loop导致。更可靠的设计是将RNase H处理、R-loop检测和DNA损伤救援结果放在同一模型中分析。
4.3 突变与染色体重排
持续R-loop可增加单链DNA脱氨、复制错误和修复通路异常参与。免疫球蛋白基因重排、生殖细胞减数分裂、重复序列区域和高转录基因附近尤其需要关注R-loop与突变模式的关系。若同时存在BRCA或FANCD2通路缺陷,R-loop相关损伤更容易转化为染色体不稳定。
4.4 先天免疫激活
RNase H2缺陷、rNMP清除障碍和R-loop相关DNA损伤可产生异常核酸片段,进而激活cGAS-STING或干扰素相关通路。此类模型中,IFNB1、ISG15、CXCL10等上调不应单独解释为感染样反应,还应评估核酸代谢缺陷、DNA损伤和胞质DNA积累。
5 R-loop检测方法与实验设计
5.1 DRIP-qPCR和DRIP-seq
DRIP方法通常利用S9.6抗体识别RNA-DNA杂合体,再通过qPCR或测序定位R-loop区域。其优势是操作相对成熟、适合区域验证和全基因组筛查;主要风险是S9.6也可能识别双链RNA或非特异核酸结构,因此RNase H预处理是关键对照。
(1)区域验证
DRIP-qPCR适合验证特定基因启动子、终止区、重复序列或损伤热点区域的R-loop变化。应设置阳性区域、阴性区域和RNase H处理对照,避免仅凭单一区域信号得出全局结论。
(2)全基因组定位
DRIP-seq可分析R-loop全基因组分布,但样本处理、片段化方式、抗体批次和生物信息分析参数会显著影响结果。关键发现应回到DRIP-qPCR、RNase H敏感性验证和功能实验中确认。
5.2 S9.6免疫荧光
S9.6免疫荧光可用于观察细胞内RNA-DNA杂合体总体变化,适合初筛和细胞群体比较。该方法空间分辨率有限,且容易受到核酸提取、固定方式和抗体特异性影响。若信号增强,应进一步通过RNase H处理、核酸酶对照和区域性检测验证。
5.3 R-ChIP与酶学标记方法
R-ChIP类方法利用催化失活RNase H变体结合RNA-DNA杂合体,用于提高定位特异性。其优势是可减少部分抗体相关背景,但也可能受到表达水平、融合蛋白定位和结合偏好的影响。适合与DRIP-seq互补,而不宜作为唯一证据。
5.4 DNA损伤与复制压力联用
R-loop检测应与功能读数联合。常用组合包括DRIP-qPCR加γH2AX、S9.6免疫荧光加RNase H1过表达、DNA fiber加RNase H救援、R-loop区域测序加转录水平分析。若只有R-loop信号升高而无复制压力或损伤指标变化,应谨慎判定其病理意义。
表4 R-loop检测方法与适用场景
方法 | 主要用途 | 优点 | 关键对照 | 主要限制 |
DRIP-qPCR | 特定位点R-loop验证 | 定量直接,适合机制验证 | RNase H处理、阴性区域、输入DNA | 位点选择影响结论 |
DRIP-seq | 全基因组R-loop图谱 | 可发现高风险区域 | RNase H处理、重复样本 | 抗体背景和分析参数影响大 |
S9.6免疫荧光 | 细胞内总体R-loop初筛 | 可观察细胞群体差异 | RNase H处理、核酸酶对照 | 定位和定量精度有限 |
R-ChIP | R-loop定位 | 特异性较高,适合互补验证 | 催化失活对照、表达量控制 | 依赖融合蛋白表达和定位 |
DNA fiber联用 | 判断复制叉受阻 | 可直接评价复制压力 | RNase H1救援、复制抑制对照 | 技术要求高 |
γH2AX/53BP1联用 | 判断损伤后果 | 可连接R-loop与DNA损伤 | RNase H救援、细胞周期控制 | 不能单独证明损伤来源 |
6 结果判读与常见误区
6.1 R-loop升高不一定代表RNase H缺陷
R-loop增加可能来自转录增强、RNA加工障碍、拓扑压力升高、解旋酶缺陷、复制叉停滞或染色质状态改变。若直接将R-loop升高归因于RNase H不足,容易忽略上游转录和染色质因素。应同时检测RNase H1/H2表达或活性、RNA加工因子、转录水平和复制压力。
6.2 RNase H1救援不等于所有损伤都来自R-loop
RNase H1过表达可降低部分RNA-DNA杂合体并缓解复制压力,但也可能改变正常转录调控性R-loop。若DNA损伤下降,应进一步确认救援是否依赖RNase H1催化活性,并排除转录抑制、细胞周期改变或细胞毒性下降造成的间接影响。
6.3 RNase H2缺陷需区分rNMP累积与R-loop积累
RNase H2缺陷的核心问题之一是DNA中核糖核苷酸切除修复异常。此时R-loop信号、DNA断裂和免疫激活可能共同出现,但不一定都由经典转录R-loop直接造成。应结合rNMP相关检测、碱敏感断裂分析、复制压力指标和RNase H2复合体亚基表达进行判断。
6.4 S9.6信号必须设置RNase H敏感性验证
S9.6信号增强并不自动等同于R-loop增加。若RNase H处理后信号明显下降,支持RNA-DNA杂合体来源;若信号不下降,应考虑双链RNA、非特异背景或样本处理问题。对高影响结论,建议至少使用一种非S9.6依赖方法进行交叉验证。
表5 R-loop研究中的常见异常模式与解释路径
结果模式 | 可能解释 | 建议补充实验 |
S9.6信号升高,RNase H处理后下降 | RNA-DNA杂合体增加 | DRIP-qPCR定位、RNase H1救援、转录水平检测 |
R-loop升高,γH2AX升高 | R-loop相关损伤或复制压力 | DNA fiber、53BP1/RPA焦点、细胞周期分析 |
RNASEH2缺陷,ISG上调 | rNMP累积、DNA损伤或胞质核酸激活 | cGAS-STING指标、rNMP修复分析、DNA损伤检测 |
RNase H1过表达救援复制叉速度 | R-loop参与复制压力 | 催化失活RNase H1对照、DRIP-qPCR验证 |
R-loop升高但DNA损伤不变 | 调控性R-loop或损伤阈值未达到 | 分析位点分布、转录调控和长期稳定性 |
抗体检测与测序结果不一致 | 抗体背景、样本处理或区域选择差异 | 增加RNase H对照和独立方法验证 |
7 实验设计建议
7.1 机制研究
若目标是证明某蛋白调控R-loop,应同时完成“R-loop变化—RNase H敏感性—功能后果—救援验证”四个层面。只显示S9.6信号变化不足以支撑机制结论,必须说明R-loop是否导致复制压力、DNA损伤或转录异常。
7.2 RNase H1与RNase H2功能区分
RNase H1实验更适合分析长RNA-DNA杂合体和线粒体相关表型;RNase H2实验更适合分析rNMP嵌入、复制成熟和先天免疫激活。若同时观察到R-loop和DNA损伤增加,应根据底物类型、亚细胞定位和遗传干预对象区分两者贡献。
7.3 样本与细胞周期控制
R-loop与复制压力高度受细胞周期影响。S期比例变化、转录强度差异、复制抑制剂处理和细胞毒性均可改变R-loop读数。建议在流式细胞周期、EdU掺入、细胞活力和转录水平相对稳定的前提下比较不同处理组。
7.4 多指标联合验证
可靠的R-loop研究不依赖单一检测。基础组合可采用DRIP-qPCR、RNase H处理、S9.6免疫荧光和DNA损伤指标;机制深入时可增加R-ChIP、DRIP-seq、DNA fiber、RNA-seq、ChIP-seq或细胞状态控制。
8 RNA-DNA杂合体、RNase H与R-loop调控研究产品选型
表6 RNase H、RNASEH基因干预与R-loop直接处理产品选型
应用模块 | 货号 | 产品名称 | 级别/规格 | 应用定位 |
RNA-DNA杂合体处理 | RNase H | 600U | 用于降解RNA-DNA杂合体中的RNA链,适合DRIP、S9.6检测和R-loop信号验证 | |
RNA-DNA杂合体处理 | 核糖核酸酶 H (RNase H) | from Escherichia coli H 560 pol A1 | 用于体外RNA-DNA杂合体处理和RNase H敏感性对照 | |
RNA-DNA杂合体处理 | Thermostable RNase H | BioReagent, 无DNA酶和RNA酶, 分子生物学级, EnzymoPure™, 无菌, for DNA and RNA applications, ≥95%, 5 U/μl | 用于较高温度条件下RNA-DNA杂合体处理和反应体系优化 | |
RNase H2酶学处理 | 核糖核酸酶 H2 | ActiBioPure™, EnzymoPure™, 生物活性, 无动物源, 无载体, ≥95%(SDS-PAGE), 5.0 U/μL | 用于RNase H2相关RNA-DNA杂合体处理和酶学验证 | |
RNase H2酶学处理 | 热稳定核糖核酸酶HII | 重组, 分子生物学级, EnzymoPure™, ≥95%(SDS-PAGE), expressed in E.coli; 2 U/μl | 用于热稳定RNase HII反应体系和RNA-DNA杂合体处理 | |
RNase H蛋白验证 | Recombinant Human RNASEH Protein | ≥90%(SDS-PAGE) | 用于RNase H相关阳性对照、抗体验证或酶学体系开发 | |
RNase H2A蛋白验证 | Recombinant Mouse RNASEH2A Protein | ≥90%(SDS-PAGE) | 用于RNase H2A蛋白检测、抗体验证和方法学对照 | |
RNASEH1表达干预 | RNASEH1 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于RNASEH1敲低,研究核内R-loop积累、线粒体RNA-DNA杂合体处理和DNA损伤变化 | |
RNASEH2A表达干预 | RNASEH2A Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于RNase H2催化亚基敲低,分析rNMP切除修复、R-loop异常和复制压力 | |
RNASEH2B表达干预 | RNASEH2B Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于RNase H2复合体亚基敲低,研究复合体稳定性、DNA损伤和免疫激活 | |
RNASEH2C表达干预 | RNASEH2C Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于RNase H2复合体功能验证和RNASEH2C依赖性表型分析 | |
RNase H2A蛋白验证 | RNASEH2A Mouse mAb | 见COA | 用于Western blot、IF或细胞模型中RNASEH2A表达验证 | |
RNase H抑制研究 | NSC727447,HIV-1和HIV-2的核糖核酸酶H(RNase H)抑制剂 | Moligand™,≥98% | 用于病毒RNase H相关酶学研究;不宜直接替代人RNase H1/H2功能抑制剂 | |
RNase-free体系维护 | RNase Inhibitor | 医药级, PharmPure™, ≥95%, 40U/μl | 用于保护RNA样本,降低非特异RNA降解对R-loop相关检测的干扰 | |
RNase-free体系维护 | RNase Inhibitor | 医药级, PharmPure™, ≥95%, 1000U/μl | 用于DRIP、RNA-DNA杂合体检测和RNA相关样本前处理 | |
RNase-free体系维护 | RNase Inhibitor (Murine, 40U/μL) | 重组, BioReagent, 无DNA酶和RNA酶, 分子生物学级, for DNA and RNA applications, ≥95%(SDS-PAGE), 40U/μl | 用于RNA保护和核酸操作体系中RNase污染控制 | |
RNase-free体系维护 | RNase抑制剂(RNasin) | 40U/μl | 用于R-loop相关样本制备中的RNA保护 |
表7 R-loop检测、核酸处理与实验体系辅助产品选型
应用模块 | 货号 | 产品名称 | 级别/规格 | 应用定位 |
RNase-free水相体系 | RNase-Free Water | 100 ml | 用于DRIP、qPCR、RNA-DNA杂合体处理和RNase敏感性实验 | |
RNase-free缓冲体系 | PBS, DNase&RNase Free | 无菌过滤, BioReagent, 无DNA酶和RNA酶, 即用型, 用于细胞培养, 1× | 用于细胞洗涤、免疫荧光和核酸样本处理 | |
RNase-free电泳体系 | BPTE电泳缓冲液 (10×, RNase Free) | BioReagent,分子生物学级,无RNA酶,用于核酸电泳,10× | 用于RNA或核酸样本电泳分析,降低RNase污染 | |
RNase-free杂交体系 | SSC缓冲液 (20×, pH 7.0, RNase Free) | BioReagent,分子生物学级,无RNA酶,无菌,for DNA and RNA applications,20× | 用于核酸杂交、洗涤和R-loop相关核酸检测体系 | |
RNase-free杂交体系 | SSPE(DNase, RNase & Protease free, Sterile) | 20X, pH7.4 | 用于核酸杂交和高洁净度核酸操作体系 | |
RNase-free电泳体系 | TAE缓冲液 (50×, RNase Free) | BioReagent,分子生物学级,用于核酸电泳,无RNA酶,50× | 用于核酸片段分析和DRIP样本质量评估 | |
RNase-free电泳体系 | TBE缓冲液 (5×, RNase Free) | BioReagent,分子生物学级,无RNA酶,用于核酸电泳,5× | 用于DNA/RNA相关电泳检测 | |
核酸提取体系 | CTAB 抽提液 (RNase free) | BioReagent,分子生物学级 | 用于核酸样本提取,适合需要控制RNase污染的样本前处理 | |
样本沉淀/富集 | PEG8000 (50%, RNase free) | BioReagent, 无DNA酶和RNA酶, 无蛋白酶, ≥99%, 50% | 用于核酸沉淀、富集或分子生物学反应体系优化 | |
RNase污染去除 | RNase and DNA Remover | 250ml | 用于实验台面、耗材或器具中RNase/DNA污染控制 | |
dsRNA背景控制 | 核糖核酸酶III (dsRNA-specific) | ActiBioPure™, EnzymoPure™, 生物活性, 无动物源, 无载体, 无菌, 无DNA酶, 2.0 U/µL | 用于区分S9.6信号中的dsRNA背景与RNA-DNA杂合体信号 | |
ssRNA背景控制 | 核糖核酸酶A 来源于牛胰腺(无DNase & Protease) | 生物活性,ActiBioPure™,天然,高性能,EnzymoPure™,无DNA酶,无蛋白酶,≥2,000 units/mg protein | 用于非杂合RNA去除或核酸特异性对照,需避免破坏目标检测体系 | |
ssRNA背景控制 | 核糖核酸酶A | EnzymoPure™, 无DNA酶, 无蛋白酶, 无菌, ≥90%(SDS-PAGE), 10 mg/mL | 用于RNA背景控制和核酸处理条件优化 | |
DNA背景控制 | 重组脱氧核糖核酸酶 I,无核糖核酸酶 | EnzymoPure™, ≥95%(SDS-PAGE), 1 U/μl | 用于RNA样本DNA污染去除或DNA依赖性信号控制 | |
DNA背景控制 | 脱氧核糖核酸酶 I 牛 | 重组, expressed in Pichia pastoris, buffered aqueous glycerol solution,≥5,000 units/mg protein | 用于DNA消化和核酸特异性对照实验 | |
细胞铺板/免疫检测 | 多聚赖氨酸溶液 (1×, 0.1mg/mL, RNase free, 无菌) | BioReagent,用于显微镜,用于细胞培养,无RNA酶,无菌,适用于免疫组织化学(for IHC),1×, 0.1 mg/mL | 用于S9.6免疫荧光、DNA损伤焦点检测等细胞爬片实验 |
表8 R-loop相关复制压力、DNA损伤与cGAS-STING通路产品选型
应用模块 | 货号 | 产品名称 | 级别和纯度 | 应用定位 |
DNA损伤标志研究 | H2AX Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于H2AX功能干预,辅助分析R-loop相关DNA损伤应答 | |
DNA损伤标志研究 | Recombinant Human Histone H2AX Protein | 无载体,无叠氮钠,His标签,≥90%(SDS-PAGE) | 用于H2AX相关抗体验证、阳性对照和DNA损伤检测体系开发 | |
DNA双链断裂应答 | 53BP1 Antibody | ExactAb™, Validated, 0.5 mg/mL | 用于R-loop相关DNA损伤焦点检测和双链断裂应答分析 | |
DNA双链断裂应答 | TP53BP1 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于TP53BP1敲低,验证53BP1依赖性DNA损伤修复表型 | |
DNA双链断裂应答 | TP53BP1 Mouse mAb | 敲低验证 | 用于TP53BP1蛋白表达和损伤焦点检测 | |
DNA双链断裂应答 | TP53BP1基因敲除HEK293T细胞RIPA裂解液 |
| 用于TP53BP1抗体验证和阴性对照 | |
DNA双链断裂应答 | TP53BP1基因敲除HEK293T细胞Trizol裂解液 |
| 用于TP53BP1转录检测阴性对照 | |
DNA损伤定量 | 人肿瘤蛋白p53结合蛋白1(TP53BP1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本TP53BP1水平检测,辅助评价DNA损伤应答 | |
复制压力/ssDNA暴露 | RPA32/RPA2 Mouse mAb | ExactAb™, Validated, Carrier Free, High performance, 0.5 mg/mL | 用于检测复制叉停滞、ssDNA暴露和复制压力 | |
复制压力/ssDNA暴露 | Recombinant RPA32/RPA2 Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 见COA | 用于复制压力和R-loop相关RPA焦点检测 | |
cGAS通路干预 | CGAS Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于人源细胞cGAS敲低,验证RNase H2缺陷或DNA损伤引发的胞质DNA sensing | |
cGAS通路干预 | Cgas Mouse Pre-designed siRNA Set A |
| 用于小鼠模型cGAS敲低,分析核酸代谢异常相关先天免疫激活 | |
cGAS通路干预 | Cgas Rat Pre-designed siRNA Set A |
| 用于大鼠来源细胞cGAS敲低和通路验证 | |
cGAS功能调控 | cGAS-IN-1 | Moligand™, 10 mM in DMSO | 用于抑制cGAS活性,验证胞质DNA-cGAS轴在R-loop/RNase H2缺陷表型中的作用 | |
cGAS功能调控 | cGAS-IN-2 | ≥99% | 用于cGAS通路抑制和剂量反应研究 | |
cGAS功能调控 | cGAS-IN-4 |
| 用于cGAS介导的先天免疫激活验证 | |
cGAS定量检测 | 人含Mab21域蛋白1(MB21D1/CGAS)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本cGAS/MB21D1水平检测 | |
cGAS定量检测 | 小鼠含Mab21域蛋白1(MB21D1/CGAS)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠样本cGAS/MB21D1检测 | |
STING通路验证 | Recombinant STING Antibody | ExactAb™, Validated, 重组, 0.4 mg/mL | 用于STING蛋白表达和cGAS-STING通路激活检测 | |
STING表达干预 | STING1 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于人源STING1敲低,验证R-loop/RNase H2缺陷相关免疫表型 | |
STING表达干预 | Sting1 Mouse Pre-designed siRNA Set A |
| 用于小鼠Sting1敲低和先天免疫通路验证 | |
STING表达干预 | Sting1 Rat Pre-designed siRNA Set A |
| 用于大鼠来源模型中STING通路干预 | |
STING抑制 | C-176 (STING inhibitor) | 10mM in DMSO | 用于抑制STING通路,验证DNA损伤或胞质DNA积累后的免疫激活依赖性 | |
STING抑制 | H 151,STING拮抗剂 | Moligand™, ≥98%(HPLC) | 用于STING通路抑制和先天免疫反应救援实验 | |
STING激活 | cGAMP 钠盐,STING激动剂 | ≥99% | 用于STING通路阳性激活对照 | |
STING激活 | diABZI STING agonist-1 | ≥99% | 用于STING通路激活阳性对照和通路敏感性验证 | |
STING激活 | MSA 2,非核苷酸STING激动剂 | Moligand™,≥98%(HPLC) | 用于非核苷酸类STING激活研究 | |
STING定量检测 | 人干扰素基因刺激蛋白(STING)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本STING水平检测 | |
干扰素刺激基因检测 | ISG15 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 用于ISG15敲低,分析RNase H2缺陷或cGAS-STING激活后的ISG反应 | |
干扰素刺激基因检测 | Recombinant ISG15 Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 高性能, 见COA | 用于ISG15蛋白表达检测和干扰素反应验证 | |
干扰素刺激基因检测 | Recombinant ISG15 Antibody | 敲低验证 | 用于ISG15表达验证和免疫检测 | |
干扰素刺激基因检测 | 人类泛素蛋白(ISG15)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于人源样本ISG15定量,评价先天免疫激活 | |
干扰素刺激基因检测 | 小鼠泛素交叉反应蛋白(ISG15)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 用于小鼠模型ISG15检测和干扰素反应分析 |
9 常见问题
9.1 RNA-DNA杂合体和R-loop是同一个概念吗?
不是完全相同。RNA-DNA杂合体泛指RNA链与DNA链配对形成的结构;R-loop通常指RNA-DNA杂合体伴随一条DNA链被排出的三链核酸结构。所有R-loop包含RNA-DNA杂合体,但并非所有RNA-DNA杂合体都构成典型R-loop。
9.2 RNase H1和RNase H2哪个更适合清除R-loop?
RNase H1更常用于清除较长RNA-DNA杂合体和验证R-loop信号;RNase H2也能处理部分杂合体,但其关键功能还包括识别并切除DNA中单个核糖核苷酸。两者不能简单互相替代。
9.3 为什么RNase H2缺陷会影响基因组稳定性?
RNase H2缺陷会导致DNA中嵌入的核糖核苷酸不能正常切除,并可能伴随复制压力、DNA断裂、R-loop异常和先天免疫激活。其表型通常比单纯R-loop积累更复杂。
9.4 S9.6抗体检测R-loop可靠吗?
S9.6是常用工具,但必须设置RNase H处理对照。若信号对RNase H敏感,说明更可能来自RNA-DNA杂合体;若不敏感,则需要警惕双链RNA或非特异背景。
9.5 R-loop一定会导致DNA损伤吗?
不一定。部分R-loop具有正常调控功能,只有在形成过量、清除不足、位置异常或与复制叉冲突时,才更容易导致复制压力和DNA损伤。判读时应结合DNA损伤和复制指标。
9.6 如何证明某个DNA损伤表型由R-loop引起?
需要证明R-loop增加、损伤指标升高和RNase H依赖性救援之间存在一致关系。常用设计包括DRIP-qPCR定位、RNase H1过表达救援、催化失活对照、DNA fiber检测复制压力和γH2AX/53BP1损伤验证。
9.7 线粒体R-loop研究需要注意什么?
线粒体RNA-DNA杂合体与mtDNA复制和转录密切相关。研究时应检测RNase H1、mtDNA拷贝数、线粒体转录、呼吸链功能和线粒体DNA损伤,不能只用核内R-loop检测方法直接替代。
RNA-DNA杂合体是基因表达、复制和修复交汇处的重要结构。RNase H1偏向较长杂合体和线粒体相关处理,RNase H2则连接rNMP切除修复、复制成熟和免疫稳态。只有将R-loop定位、RNase H功能、复制压力和DNA损伤读数联合分析,才能准确判断RNA-DNA杂合体在基因组稳定性中的作用。
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