自噬的分子机制、选择性降解与疾病调控
自噬的分子机制、选择性降解与疾病调控
自噬(autophagy)是细胞依赖溶酶体完成胞内物质降解与再利用的重要质量控制过程。根据底物进入降解区室的方式,自噬主要包括巨自噬、微自噬和分子伴侣介导的自噬。三者分别通过自噬体包裹、内体或溶酶体膜直接摄取以及分子伴侣介导的跨膜转运完成底物清除,并共同参与蛋白质稳态、细胞器更新、营养适应及疾病相关细胞状态调控。
关键词:自噬;巨自噬;微自噬;分子伴侣介导的自噬;选择性自噬;LC3;LAMP2A;线粒体自噬;溶酶体
1 自噬的基本概念
1.1 自噬的生物学基础
自噬是一类将胞内蛋白质、蛋白聚集物、细胞质成分或细胞器递送至溶酶体进行降解的分解代谢过程。底物进入溶酶体后,由Cathepsin等酸性水解酶分解为氨基酸、脂肪酸及其他小分子,并重新进入细胞代谢网络。自噬因此兼具物质回收和质量控制功能,其活性受到营养缺乏、能量压力、氧化应激、蛋白质折叠异常、细胞器损伤和感染等多种因素调节。
1.2 自噬与泛素—蛋白酶体系统
泛素—蛋白酶体系统主要处理短寿命调控蛋白及能够展开并进入蛋白酶体腔的异常蛋白,自噬—溶酶体系统则能够处理蛋白聚集物以及线粒体、内质网等更大尺度的胞内结构。两套降解系统在底物范围和递送机制上存在差异,同时又通过泛素化、分子伴侣和选择性自噬受体发生交叉,共同维持蛋白质与细胞器稳态。
2 自噬的三种主要形式
根据底物进入溶酶体或相关降解区室的方式,哺乳动物自噬主要分为巨自噬(macroautophagy)、微自噬(microautophagy)和分子伴侣介导的自噬(chaperone-mediated autophagy,CMA)。三者最终均利用溶酶体完成底物降解,但在膜结构、底物选择方式和核心分子机器方面存在明显差异。
2.1 巨自噬
(1)自噬体形成与底物递送
巨自噬是目前研究最充分的自噬形式,其标志性结构是双层膜自噬体。自噬启动后,细胞首先形成杯状隔离膜,随后隔离膜持续延伸并包围胞质成分,最终闭合形成完整自噬体。成熟自噬体进一步与溶酶体融合,形成具有酸性降解环境的自噬溶酶体,其中的蛋白质、脂质和细胞器成分被水解并重新进入细胞代谢。
(2)非选择性巨自噬
营养缺乏或能量压力可诱导较广泛的胞质物质进入巨自噬过程,通过降解胞质蛋白和其他细胞成分释放氨基酸、脂肪酸等代谢底物,从而帮助细胞在营养不足条件下维持基本代谢需求。该过程使巨自噬成为连接营养感知、物质回收和代谢适应的重要机制。
(3)选择性巨自噬
巨自噬也能够针对特定底物进行选择性清除。受损线粒体、异常蛋白聚集物、过量内质网、受损溶酶体以及胞内病原体等可通过特异性自噬受体与自噬膜连接,从而被优先包裹和降解。Mitophagy、aggrephagy、ER-phagy、lysophagy和xenophagy等均属于选择性巨自噬。
(4)巨自噬的主要分子特征
巨自噬依赖ULK1复合物、Beclin 1–VPS34复合物、ATG共轭系统以及LC3/GABARAP家族蛋白完成启动、膜成核、膜延伸和自噬体成熟。LC3脂化和双层膜自噬体形成是经典巨自噬的重要分子和结构特征,但LC3-II增加既可能来自自噬体形成增加,也可能来自下游降解受阻,因此需要结合动态自噬流进行判断。
2.2 微自噬
(1)溶酶体膜直接摄取胞质成分
微自噬不需要形成独立的双层膜自噬体,而是由晚期内体或溶酶体自身限制膜发生内陷、突出或其他膜重塑,将邻近胞质成分直接摄入降解区室。与巨自噬相比,该过程省略了独立自噬体形成及其与溶酶体融合的步骤。
(2)内体微自噬
内体微自噬(endosomal microautophagy,eMI)主要发生于晚期内体或多囊泡体。内体限制膜向腔内发生出芽并形成内腔囊泡,使胞质底物进入内体腔并进一步进入溶酶体降解。TSG101、VPS4及CHMP家族等ESCRT相关蛋白参与部分内体微自噬过程中的膜变形、出芽和膜切割。
(3)微自噬的选择性底物识别
部分内体微自噬并非完全随机摄取胞质成分。HSC70/HSPA8能够识别部分具有KFERQ样基序的胞质蛋白并促进其进入晚期内体,因此在底物选择层面与CMA存在一定交叉。不过,内体微自噬依赖内体限制膜内陷形成囊泡,而CMA依赖LAMP2A介导底物直接跨越溶酶体膜,两者属于不同的膜运输过程。
(4)微自噬的研究特点
哺乳动物微自噬包含多种分子形式,目前尚不存在能够覆盖全部类型的单一核心标志物。相关研究通常需要结合内体或溶酶体膜重塑、ESCRT依赖性、底物进入降解区室的方式及最终降解结果进行判断。
2.3 分子伴侣介导的自噬
(1)KFERQ样基序决定底物选择
分子伴侣介导的自噬是一种高度选择性的溶酶体蛋白降解途径。经典CMA底物具有KFERQ样识别基序,但并不要求蛋白序列中存在完全相同的KFERQ五肽,而是由具有特定电荷、极性和疏水性质组合的氨基酸构成。蛋白构象变化以及磷酸化、乙酰化等翻译后修饰还可能形成或暴露潜在识别基序,从而改变其进入CMA的能力。
(2)HSC70识别并递送底物
胞质HSC70/HSPA8识别暴露的KFERQ样基序,并与辅助分子伴侣共同维持底物处于适合递送和展开的状态。该过程使CMA能够优先识别特定可溶性胞质蛋白,而不是随机摄取胞质成分。
(3)LAMP2A介导跨溶酶体膜转运
底物-HSC70复合物到达溶酶体表面后,与LAMP2A胞质侧区域结合。LAMP2A是LAMP2基因形成的特定剪接亚型,是经典CMA底物跨膜转运的关键受体。底物结合后,LAMP2A动态组装形成转运复合体,使展开的底物能够跨越溶酶体膜。
(4)底物展开与溶酶体降解
完整折叠蛋白不能直接通过CMA转运体系,因此底物需要在分子伴侣参与下发生展开。溶酶体腔内HSC70进一步参与底物内化,进入腔内的蛋白最终由酸性水解酶降解。CMA主要处理能够展开的可溶性胞质蛋白,不能直接清除完整线粒体、内质网或大型不可溶蛋白聚集物。
2.4 三种自噬形式的主要差异
特征 | 巨自噬 | 微自噬 | 分子伴侣介导的自噬(CMA) |
底物进入方式 | 自噬体包裹后与溶酶体融合 | 内体或溶酶体限制膜直接摄取 | 单个蛋白直接跨越溶酶体膜 |
独立双层膜自噬体 | 形成 | 不形成 | 不形成 |
主要底物 | 蛋白、聚集物、胞质及完整细胞器等 | 胞质成分及部分选择性蛋白 | 可溶性胞质蛋白 |
选择性 | 可选择性或非选择性 | 类型依赖 | 高度选择性 |
代表分子 | ULK1、Beclin 1、ATG5、ATG7、LC3/GABARAP | ESCRT、TSG101、VPS4等 | HSC70/HSPA8、LAMP2A |
KFERQ样基序 | 通常不是核心机制 | 部分内体微自噬涉及 | 经典底物识别基础 |
LC3脂化 | 经典巨自噬的重要过程 | 通常不是核心特征 | 不依赖 |
完整细胞器降解 | 可以 | 部分形式可处理局部细胞器成分 | 不可以 |
主要研究重点 | 自噬体形成、自噬流、选择性底物清除 | 膜重塑、ESCRT依赖和底物摄取 | HSC70识别、LAMP2A依赖和底物跨膜转运 |
3 巨自噬的关键调控机制
3.1 mTORC1–AMPK–ULK1轴调控自噬启动
mTORC1和AMPK构成连接营养、能量状态与巨自噬启动的重要调控轴。营养、生长因子和能量供应充足时,mTORC1维持活化并抑制ULK1复合物,使细胞偏向合成代谢;能量不足时,AMPK活化,可抑制mTORC1并直接调节ULK1,促进自噬启动。
其基本调控关系可概括为:营养充足→mTORC1活化→ULK1受抑→自噬降低;能量压力→AMPK活化/mTORC1降低→ULK1活化→自噬启动。
3.2 Beclin 1–VPS34复合物控制自噬膜成核
ULK1复合物活化后促进含VPS34、Beclin 1和ATG14等组分的Ⅲ类PI3K复合物在自噬形成位点募集和活化。VPS34产生磷脂酰肌醇3-磷酸(PI3P),局部PI3P进一步募集WIPI等效应蛋白,为隔离膜形成和扩展建立膜平台。Beclin 1–VPS34轴由此将上游自噬启动信号转换为自噬膜生物发生过程。
3.3 ATG共轭系统与LC3/GABARAP脂化
ATG12与ATG5结合后形成ATG12–ATG5–ATG16L1复合物,并促进LC3/GABARAP家族蛋白脂化。LC3经ATG4加工形成LC3-I,随后在ATG7和ATG3参与下与磷脂酰乙醇胺结合形成膜结合型LC3-II。
LC3/GABARAP家族蛋白既参与自噬膜动态调节,也为选择性自噬受体提供结合平台,是连接自噬膜形成与底物选择的重要节点。
3.4 自噬体—溶酶体融合与底物降解
成熟自噬体需要与溶酶体顺利融合才能完成底物清除。Rab7、HOPS复合物以及STX17–SNAP29–VAMP8等膜运输和SNARE体系参与自噬体与溶酶体的接触和融合。随后,溶酶体酸性环境及Cathepsin等水解酶降解自噬体内膜和所包裹底物。因此,自噬体形成增加并不必然代表整体自噬降解能力提高,自噬体生成和溶酶体降解需要作为连续过程评价。
4 选择性巨自噬
4.1 选择性自噬受体连接底物与自噬膜
p62/SQSTM1、NBR1、OPTN和NDP52等选择性自噬受体能够识别特定底物,并通过LC3-interacting region(LIR)连接LC3/GABARAP阳性自噬膜。许多受体可同时结合泛素化底物和自噬膜,使被泛素标记的异常结构优先进入自噬体。选择性巨自噬由此将广泛物质回收扩展为具有底物特异性的细胞质量控制系统。
4.2 PINK1–Parkin介导的线粒体自噬
(1)PINK1建立线粒体损伤信号
在线粒体膜电位和蛋白导入正常时,PINK1持续进入线粒体并快速周转;严重去极化或蛋白导入障碍使PINK1稳定积累于线粒体外膜,从而将线粒体损伤转换为可进一步放大的分子信号。
(2)Parkin放大泛素化信号
外膜PINK1磷酸化泛素并促进E3泛素连接酶Parkin活化。活化Parkin进一步泛素化多种线粒体外膜蛋白,由此形成放大型泛素信号,使受损线粒体能够被选择性自噬机器识别。
(3)选择性自噬受体完成线粒体递送
OPTN、NDP52等受体识别线粒体表面的泛素信号,并连接LC3/GABARAP相关自噬机器,使受损线粒体被隔离膜包裹并递送至溶酶体。该过程可概括为:线粒体损伤→PINK1积累→Parkin活化→外膜蛋白泛素化→OPTN/NDP52募集→自噬体包裹→溶酶体清除。
4.3 聚集体自噬
聚集体自噬(aggrephagy)主要处理难以由蛋白酶体直接降解的大型异常蛋白聚集结构。p62/SQSTM1、NBR1等受体能够识别泛素化蛋白聚集物并连接LC3/GABARAP阳性自噬膜,使其进入自噬体。该过程对神经元等长寿命细胞维持蛋白质稳态尤为重要。
4.4 内质网自噬
内质网自噬(ER-phagy)通过FAM134B、TEX264、CCPG1等受体连接特定内质网区域与自噬膜,参与过量或受损内质网清除以及内质网形态重塑。ER-phagy与内质网应激恢复、分泌蛋白质量控制及细胞器数量调节密切相关。
4.5 其他选择性巨自噬类型
类型 | 主要底物 | 主要生物学功能 |
Mitophagy | 受损或多余线粒体 | 线粒体质量控制 |
Aggrephagy | 异常蛋白聚集体 | 蛋白质稳态 |
ER-phagy | 受损或过量内质网 | 内质网质量控制 |
Pexophagy | 过氧化物酶体 | 细胞器数量与氧化代谢调节 |
Lipophagy | 脂滴 | 脂质动员和脂肪酸利用 |
Lysophagy | 受损溶酶体 | 溶酶体质量控制 |
Ribophagy | 核糖体 | 核糖体质量与数量调节 |
Xenophagy | 胞内病原体 | 细胞自主免疫 |
Nucleophagy | 特定核成分 | 核结构质量控制 |
5 自噬的细胞稳态调控功能
5.1 营养感知与代谢适应
营养和能量供应降低时,mTORC1–AMPK–ULK1等通路促进巨自噬调整,使胞质蛋白、脂质和其他细胞成分进入降解和再利用过程,为细胞提供氨基酸、脂肪酸等代谢底物。CMA则可通过选择性调节代谢酶和调控蛋白稳定性重新配置代谢网络。因此,自噬不仅承担物质回收功能,也参与细胞代谢状态重塑。
5.2 蛋白质与细胞器质量控制
聚集体自噬、CMA和泛素—蛋白酶体系统分别处理具有不同物理状态和分子特征的蛋白底物;线粒体自噬、ER-phagy、pexophagy和lysophagy则通过选择性清除功能异常细胞器维持细胞器稳态。及时去除受损结构能够限制ROS、异常蛋白折叠及细胞器来源应激信号持续积累,是自噬维持长期细胞稳态的重要基础。
5.3 免疫与炎症调控
选择性自噬可通过xenophagy清除部分胞内病原体,同时通过线粒体质量控制、炎症小体调节以及先天免疫信号蛋白周转影响炎症反应。受损线粒体持续积累可增加ROS及线粒体核酸释放,而有效的线粒体自噬能够限制这些免疫刺激信号,使自噬成为连接细胞器质量控制与固有免疫稳态的重要过程。
6 自噬与疾病
6.1 自噬与衰老
衰老过程中可出现溶酶体功能下降、蛋白质质量控制能力降低以及多种自噬途径效率改变,使异常蛋白和受损细胞器逐渐积累,并进一步影响氧化还原稳态、炎症和代谢。巨自噬、线粒体自噬和CMA分别作用于不同质量控制层级,其中LAMP2A稳定性和CMA功能的年龄相关下降是衰老研究中的重要方向。
6.2 自噬与神经退行性疾病
阿尔茨海默病、帕金森病等神经退行性疾病常伴随异常蛋白聚集、线粒体功能障碍和溶酶体降解异常。聚集体自噬参与大型异常蛋白结构清除,CMA能够调节包括α-Synuclein在内的部分可溶性蛋白周转,而PINK1–Parkin相关线粒体质量控制异常与遗传性帕金森病密切相关。不同自噬途径失衡可从蛋白质稳态和细胞器稳态两个层面增加神经元长期应激负荷。
6.3 自噬与肿瘤
自噬在肿瘤中的作用具有明显的阶段和遗传背景依赖性。在正常细胞及肿瘤发生早期,自噬通过清除受损线粒体和异常蛋白、限制ROS及慢性炎症维持细胞稳态;在已经形成的部分肿瘤中,自噬则能够支持缺氧和营养限制环境下的代谢适应,并缓解治疗产生的蛋白毒性和细胞器压力。因此,自噬不能简单归类为促癌或抑癌机制,其功能取决于肿瘤类型、驱动基因、代谢状态及治疗背景。
6.4 自噬与代谢疾病
肝脏、脂肪组织、骨骼肌及胰岛β细胞均依赖自噬维持代谢稳态。脂滴自噬参与脂质动员,线粒体自噬维持线粒体质量和氧化代谢能力,CMA则可通过选择性调节代谢酶和转录调控蛋白周转改变代谢网络。自噬异常与脂质积累、线粒体功能障碍、内质网应激和胰岛素反应改变之间可形成相互促进的病理网络。
7 自噬研究进展
7.1 PINK1–Parkin介导的线粒体损伤识别
PINK1–Parkin研究逐步建立了线粒体蛋白导入状态、膜电位变化、泛素磷酸化和选择性自噬受体募集之间的连续分子联系。PINK1在线粒体外膜稳定后,通过磷酸化泛素并激活Parkin形成放大的泛素信号,使线粒体功能异常能够被OPTN、NDP52等自噬受体识别。这一机制将线粒体损伤感知与自噬清除直接连接,并持续推动帕金森病及线粒体质量控制研究。
7.2 HSC70与ESCRT参与的内体微自噬
哺乳动物微自噬研究正在由形态学观察逐渐转向底物选择和膜转运机制。部分内体微自噬可利用HSC70识别具有KFERQ样特征的蛋白,同时依赖ESCRT相关膜重塑将底物送入晚期内体腔内。这些研究表明,微自噬并非完全随机的胞质摄取过程,部分形式可实现选择性蛋白降解。
7.3 LAMP2A介导的CMA与衰老相关蛋白稳态
维持老龄组织中的LAMP2A水平和CMA功能能够改善异常蛋白积累和组织稳态,提示CMA功能衰减可能参与年龄相关细胞功能下降。进一步研究发现,CMA还可通过调节代谢酶、转录调控蛋白及疾病相关底物稳定性影响代谢和细胞状态,使其成为连接蛋白稳态、衰老和代谢调节的重要机制。
7.4 肿瘤自噬依赖与自噬—溶酶体靶向策略
肿瘤自噬研究正在由整体诱导或抑制自噬转向识别特定遗传和代谢背景下的自噬依赖。部分肿瘤在RAS/MAPK异常、营养限制、线粒体压力或药物治疗条件下表现出较高的自噬—溶酶体依赖性。当前研究进一步关注肿瘤基因型、组织来源、代谢状态和治疗压力对自噬依赖性的影响,并探索自噬调控与其他抗肿瘤治疗的联合干预。
8 产品
8.1 巨自噬研究产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品特征与研究定位 |
Earle's Balanced Salt Solution (with Ca2+ & Mg2+, 自噬诱导试剂) | — | 用于建立氨基酸和血清缺乏等营养饥饿条件,诱导营养缺乏相关巨自噬,可作为饥饿模型的基础处理体系 | |
自噬化合物库 | — | 收录多类自噬相关小分子,可用于自噬诱导剂、抑制剂及调控分子的筛选和机制研究 | |
雷帕霉素 | Moligand™, 10mM in DMSO | mTORC1变构抑制剂,通过解除mTORC1对ULK1复合物的抑制促进巨自噬启动,适用于mTOR依赖性自噬诱导研究 | |
雷帕霉素 | Moligand™, ≥98%(HPLC) | mTORC1抑制剂,用于营养感知、mTOR–ULK1轴及巨自噬诱导机制研究 | |
Everolimus (RAD001) | Moligand™, 10mM in DMSO | Rapalog类mTORC1抑制剂,用于研究mTORC1抑制对巨自噬启动及相关细胞表型的影响 | |
AZD8055 | Moligand™, 10mM in DMSO | ATP竞争性mTOR激酶抑制剂,可同时抑制mTORC1/2,用于比较催化型mTOR抑制与巨自噬启动的关系 | |
Torin 1 | Moligand™, 2mM in DMSO | ATP竞争性mTOR激酶抑制剂,用于强效抑制mTOR信号并研究mTOR依赖的巨自噬启动 | |
Torin 2 | Moligand™, 10mM in DMSO | ATP竞争性mTOR抑制剂,用于mTORC1/2调控及巨自噬诱导研究 | |
3-甲基腺嘌呤 | 10mM in DMSO | PI3K相关自噬干预工具,常用于抑制早期自噬体形成;其作用受处理时间和细胞状态影响,不宜作为VPS34特异性抑制剂解释 | |
3-甲基腺嘌呤 | ≥98% | 用于PI3K相关自噬起始和自噬体形成干预,可作为巨自噬早期阶段的药理学对照工具 | |
渥曼青霉素 | Moligand™, ≥98% | 广谱PI3K抑制剂,可降低PI3P生成并干预自噬膜成核,用于PI3K依赖的巨自噬早期过程研究 | |
ATG7-IN-1 | ≥99% | ATG7抑制剂,用于干预ATG7依赖的LC3/GABARAP脂化及经典巨自噬体形成 | |
ATG7-IN-2 | Moligand™, 10 mM in DMSO | ATG7药理学干预工具,用于验证ATG7依赖的LC3脂化和巨自噬过程 | |
Beclin1-ATG14L interaction inhibitor 1 | ≥99% | 干预Beclin 1–ATG14L相互作用,用于研究Ⅲ类PI3K复合物、自噬膜成核及早期巨自噬机制 | |
Tat-beclin 1 | ≥99% | Beclin 1来源的自噬诱导肽,可促进自噬过程,用于Beclin 1相关自噬诱导及蛋白聚集物清除研究 | |
Tat-beclin 1 scrambled | ≥99% | Tat-beclin 1的乱序肽对照,用于评价Tat-beclin 1处理中的序列特异性效应 | |
Beclin 1 Mouse mAb | 无载体, ExactAb™, 无叠氮钠, 已验证, 高性能, PBS Only, ≥95%(SDS-PAGE), 1.0 mg/mL | 检测Beclin 1蛋白,用于自噬启动、VPS34复合物相关膜成核及Beclin 1表达变化研究 | |
Recombinant Beclin 1 Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 见COA | 用于Beclin 1蛋白表达检测,可辅助评价巨自噬膜成核相关通路变化 | |
ATG5 Antibody | 敲低验证 | 检测ATG5,用于ATG12–ATG5共轭体系及经典自噬体形成机制研究 | |
ATG5 Human Pre-designed siRNA Set A | — | 下调ATG5表达,用于验证细胞表型对ATG5依赖性经典巨自噬的依赖 | |
ATG7 Antibody | ExactAb™, 已验证, 0.6 mg/mL | 检测ATG7蛋白,用于LC3/GABARAP脂化及ATG依赖性巨自噬机制研究 | |
ATG7 Human Pre-designed siRNA Set A | — | 下调ATG7表达,用于验证LC3脂化和经典巨自噬过程的ATG7依赖性 | |
LC3B Mouse mAb | 无载体, ExactAb™, 无叠氮钠, 已验证, 高性能, PBS Only, ≥95%(SDS-PAGE), 1.0 mg/mL | 检测LC3B及LC3-I/LC3-II相关变化,用于评价自噬体相关过程;应结合自噬流指标综合判读 | |
Recombinant LC3B Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 见COA | 用于LC3B蛋白表达及自噬体相关检测,可与p62或溶酶体阶段干预联合评价巨自噬 | |
MAP1LC3B Human Pre-designed siRNA Set A | — | 下调MAP1LC3B表达,用于验证LC3B依赖的自噬体形成和相关表型 | |
AAV-mCherry-GFP-LC3B(AAV9) | 10^13vp/ml | 双荧光LC3B自噬流报告系统,可利用GFP酸敏感性区分自噬体与酸性自噬溶酶体,适用于细胞及动物模型 | |
Ad-mCherry-GFP-LC3B | — | 腺病毒双荧光LC3B报告工具,用于动态观察自噬体形成及向酸性自噬溶酶体转化 | |
Lenti-mCherry-EGFP-LC3B | 10^9TU/ml | 慢病毒双荧光LC3B报告系统,可建立稳定表达体系,用于长期或动态自噬流研究 | |
pCMV-mCherry-GFP-LC3B | — | 双荧光LC3B质粒表达工具,用于瞬时转染体系中的自噬体成熟和自噬流成像 | |
SQSTM1 Mouse mAb | 无载体, ExactAb™, 已验证, 高性能, 见COA | 检测p62/SQSTM1,用于选择性自噬受体及自噬底物周转研究;需结合LC3和自噬流共同解释 | |
SQSTM1 Human Pre-designed siRNA Set A | — | 下调SQSTM1/p62表达,用于验证p62介导的底物识别、聚集体自噬及其他选择性巨自噬过程 | |
巴佛洛霉素A1 | ≥95% | V-ATPase抑制剂,抑制溶酶体酸化并阻断晚期自噬降解,常与LC3-II等指标联合用于动态自噬流测定 | |
磷酸氯喹 | ≥99% | 弱碱性溶酶体干预剂,可扰乱溶酶体酸性环境和晚期自噬降解,用于自噬流阻断对照 | |
羟基氯喹 | Moligand™, ≥98% | 溶酶体功能干预工具,用于抑制晚期自噬降解及研究自噬—溶酶体依赖性;处理后LC3-II积累不能单独解释为自噬诱导 |
8.2 选择性巨自噬与线粒体自噬研究产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品特征与研究定位 |
PINK1 Human Pre-designed siRNA Set A | — | 下调PINK1表达,用于验证线粒体损伤后PINK1积累及PINK1依赖性线粒体自噬 | |
人PTEN诱导假定激酶1(PINK1)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测PINK1蛋白水平,用于线粒体损伤和PINK1–Parkin体系的表达层面辅助评价,不能单独反映mitophagy通量 | |
Recombinant Parkin Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 见COA | 检测Parkin蛋白,用于PINK1–Parkin泛素化轴及线粒体质量控制机制研究 | |
人Parkin蛋白(PP)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测Parkin蛋白水平,用于PINK1–Parkin体系表达评价;需结合线粒体清除和自噬指标判断mitophagy | |
CCCP溶液 (10 mmol/L) | BioReagent, 10 mmol/L | 线粒体解偶联处理工具,可诱导膜电位下降并促进PINK1在线粒体外膜积累,常用于建立PINK1–Parkin线粒体自噬模型 | |
羰基氰酯-3-氯苯基腙 | 10mM in DMSO | 线粒体质子载体/解偶联剂,用于诱导线粒体去极化并建立线粒体损伤和mitophagy研究模型 | |
羰基氰酯-3-氯苯基腙(CCCP) | Moligand™, ≥98% | 用于线粒体去极化、PINK1–Parkin通路激活及受损线粒体清除机制研究 | |
线粒体膜电位检测试剂盒(JC-1) | — | 检测线粒体膜电位变化,用于确认CCCP等处理引起的线粒体去极化,为mitophagy模型提供线粒体损伤依据 |
8.3 微自噬相关研究产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品特征与研究定位 |
Recombinant TSG101 Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 见COA | 检测ESCRT-I组分TSG101,用于研究内体微自噬中的ESCRT依赖性膜内陷和内腔囊泡形成;TSG101同时参与其他内体分选过程,并非微自噬特异性标志物 | |
MSC1094308 | 10mM in DMSO | VPS4B/p97相关AAA ATPase抑制工具,可用于药理学干预VPS4B依赖的ESCRT膜重塑过程;因同时作用于p97,不属于微自噬特异性抑制剂 | |
LAMP1 Human Pre-designed siRNA Set A | — | 下调LAMP1表达,用于研究晚期内体/溶酶体膜区室及降解环境变化,可辅助分析微自噬底物进入降解区室后的过程 | |
LAMP1 /CD107a Antibody | 敲低验证 | 检测LAMP1,用于晚期内体/溶酶体区室定位及微自噬相关底物转运研究;不能单独用于判定微自噬活性 |
8.4 分子伴侣介导的自噬相关研究产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品特征与研究定位 |
Recombinant LAMP2 Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 0.8 mg/mL | 检测总LAMP2蛋白,可用于CMA相关溶酶体膜背景研究;由于不能区分LAMP2A等剪接亚型,不能替代LAMP2A特异性检测 | |
Recombinant LAMP2 Antibody | 敲低验证 | 检测总LAMP2并用于敲低体系验证,可辅助研究LAMP2相关溶酶体功能;CMA归因需进一步证明LAMP2A依赖性 | |
LAMP2 Human Pre-designed siRNA Set A | — | 下调总LAMP2表达,用于研究LAMP2依赖的溶酶体过程;由于同时影响不同LAMP2剪接亚型,不属于LAMP2A特异性CMA干预工具 | |
人溶酶体关联膜蛋白2(LAMP2)酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioReagent | 定量检测总LAMP2水平,可用于LAMP2表达变化评价;不能单独代表LAMP2A水平或CMA活性 | |
VER-155008,Hsp70抑制剂 | Moligand™, ≥98%(HPLC) | Hsp70家族ATPase抑制剂,同时可结合Hsc70/HSPA8,用于干预HSC70相关分子伴侣功能;作用并非CMA特异,CMA研究需结合LAMP2A及特定底物降解验证 |
8.5 溶酶体功能与自噬末端降解研究产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 产品特征与研究定位 |
LAMP1 Mouse mAb | 无载体, ExactAb™, 无叠氮钠, 已验证, ≥95%(SDS-PAGE), 1.0 mg/mL | 检测LAMP1蛋白,用于溶酶体定位、数量及自噬体/底物与溶酶体共定位研究 | |
LAMP1/CD107a Mouse mAb | 见COA | 用于LAMP1检测和溶酶体膜区室定位,可辅助评价自噬底物向溶酶体递送的空间关系 | |
Cathepsin D LC Antibody | 敲低验证 | 检测Cathepsin D,用于评价溶酶体蛋白水解系统及其成熟/表达变化,适用于自噬末端降解能力研究 | |
Cathepsin D Mouse mAb | 无载体, ExactAb™, 无叠氮钠, 已验证, 高性能, PBS Only, ≥95%(SDS-PAGE), 1.0 mg/mL | 检测Cathepsin D,用于溶酶体蛋白酶表达及自噬末端蛋白水解能力相关研究 | |
Cathepsin D and E FRET Substrate acetate | ≥98% | Cathepsin D/E荧光底物,用于检测相关酸性蛋白酶活性,辅助评价溶酶体蛋白水解功能 | |
Cathepsin D/E Substrate, Fluorogenic | — | Cathepsin D/E荧光底物,用于酶活性检测及溶酶体降解能力研究 |
巨自噬、微自噬和CMA通过不同的底物识别与递送方式连接至溶酶体降解系统。准确区分三类自噬的分子机制和实验边界,是解析其生理功能及疾病作用的基础。
参考文献
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[1] 细胞自噬过程的观察和检测方法
[2] 自噬诱导剂
[3] 自噬信号通路与选择性自噬研究
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