麦角硫因的结构特性、OCTN1介导的皮肤细胞摄取与抗氧化机制
麦角硫因的结构特性、OCTN1介导的皮肤细胞摄取与抗氧化机制
导语
麦角硫因(L-ergothioneine,EGT)是一种含硫的L-组氨酸衍生物。目前已知的麦角硫因生物合成系统主要存在于部分细菌和真菌中,人体尚未发现相应的完整从头合成途径,体内的麦角硫因主要通过膳食获得。[2-4]
人体虽然不能自行合成麦角硫因,却表达能够摄取这种分子的转运蛋白。该蛋白由溶质载体家族22成员4基因(solute carrier family 22 member 4,SLC22A4)编码,通常称为新型有机阳离子转运体1(organic cation transporter novel type 1,OCTN1)。OCTN1能够介导麦角硫因的高亲和力、可饱和跨膜摄取。人表皮角质形成细胞也表达OCTN1,可摄取并积累细胞外的麦角硫因。[5,6]
这种转运需求与麦角硫因的结构有关。麦角硫因同时含有带正电荷的三甲基铵基和带负电荷的羧酸根,在生理环境中呈两性离子状态,水溶性较高,却不容易通过被动扩散进入细胞膜的疏水区域。其含硫咪唑环主要以硫酮形式存在,使分子较普通游离硫醇耐自发氧化。[1,3]
进入细胞后,麦角硫因可参与部分高反应性自由基的电子转移反应;体外化学研究还显示,它能够结合一价铜并减弱铜催化氧化。在长波紫外线(ultraviolet A,UVA)处理的皮肤细胞模型中,麦角硫因与核因子红系2相关因子2(nuclear factor erythroid 2-related factor 2,Nrf2)介导的抗氧化反应及谷胱甘肽防御能力增强相关。[7-10]
1. 麦角硫因的来源和结构
1.1 基本化学身份
麦角硫因的CAS号为497-30-3,分子式为C₉H₁₅N₃O₂S,相对分子质量为229.30。其结构由L-组氨酸来源的碳骨架、三甲基铵基、羧酸根和含硫咪唑环组成。[1]
从化学分类看,麦角硫因属于含硫组氨酸甜菜碱,也可称为2-巯基组氨酸三甲基甜菜碱。它不是构成蛋白质的常规氨基酸,也尚未被正式列为人体必需维生素。[1,4]
麦角硫因结构中的主要带电基团包括:
①三甲基铵基:N⁺(CH₃)₃;
②羧酸根:COO⁻;
③含硫咪唑环:生理条件下主要呈硫酮结构。
正、负电荷同时存在,使麦角硫因在水溶液中主要呈两性离子状态。

1.2 生物来源与合成途径
部分细菌和真菌能够从头合成麦角硫因。以分枝杆菌的经典途径为例,L-组氨酸首先经过连续甲基化形成组氨酸甜菜碱,即海西宁(hercynine),随后引入含硫基团,并经过进一步酶促转化生成麦角硫因。不同微生物使用的含硫底物和具体酶系并不完全相同。[2,3,14]
人体基因组中尚未发现与这些微生物合成系统相对应的完整途径。人体内的麦角硫因主要来自食物,蘑菇是常见食物中较受关注的来源。麦角硫因被摄取后,可通过OCTN1进入细胞,并在部分组织中积累和保留。[4,5]
1.3 硫醇—硫酮互变与化学稳定性
麦角硫因的含硫咪唑环存在硫醇—硫酮互变异构:
硫醇形式:咪唑环—SH
硫酮形式:咪唑环C=S
在接近生理pH的环境中,平衡主要偏向硫酮形式。与半胱氨酸、还原型谷胱甘肽等含有游离巯基的分子相比,硫酮结构降低了麦角硫因发生快速自氧化和形成二硫键的倾向。[3]
这种稳定性使麦角硫因在一般水相环境中不容易持续消耗,同时仍能在较强氧化条件下参与电子转移。
1.4 两性离子结构与跨膜摄取
细胞膜内部由疏水性脂质链构成。中性且具有一定脂溶性的小分子较容易通过被动扩散进入细胞;带电且水合程度较高的分子通常需要转运蛋白协助。
麦角硫因同时含有稳定的正、负电荷,水合能力较强,不容易自由进入细胞膜的疏水区域。OCTN1异源表达实验显示,表达该转运蛋白的细胞能够明显积累麦角硫因,而缺少相应转运能力的细胞摄取量很低。[5]
2. OCTN1如何介导皮肤细胞摄取麦角硫因
2.1 高亲和力、可饱和的跨膜摄取
OCTN1属于溶质载体22家族。2005年的异源表达研究发现,麦角硫因是OCTN1的高亲和力底物,转运过程具有浓度依赖性和饱和性,测得的米氏常数约为21 μmol/L。[5]
OCTN1的主要作用是提高细胞内可利用的麦角硫因浓度。它并不直接产生抗氧化反应,而是决定麦角硫因能否有效到达细胞内部。
2.2 人表皮角质形成细胞表达OCTN1
人皮肤组织和培养的人表皮角质形成细胞均可表达OCTN1。细胞外麦角硫因经OCTN1摄取后,可在角质形成细胞内积累。[6]
在模拟太阳紫外线氧化应激的实验中,麦角硫因积累与以下变化相关:
观察指标 | 实验结果 |
细胞内活性氧相关信号 | 下降 |
DNA氧化损伤 | 减少 |
蛋白质氧化损伤 | 减少 |
脂质氧化损伤 | 减少 |
细胞凋亡和死亡 | 减少 |
这些结果表明,OCTN1介导的跨膜摄取使角质形成细胞能够积累并利用外源麦角硫因。[6]
3. 麦角硫因如何参与细胞抗氧化网络
活性氧(reactive oxygen species,ROS)是一组具有不同化学性质的氧化物种。超氧阴离子和羟基自由基属于自由基,过氧化氢属于非自由基ROS。低水平ROS参与细胞信号传递;当氧化物种的生成持续超过细胞的清除和修复能力时,会形成氧化应激。
麦角硫因参与氧化还原调节的主要机制包括:
作用层面 | 主要过程 | 证据类型 |
自由基相关电子转移 | 麦角硫因可被部分高反应性自由基一电子氧化,形成短寿命氧化中间体 | 体外脉冲辐解研究 |
金属催化氧化控制 | 麦角硫因与Cu⁺配位,降低铜参与氧化还原循环的能力 | 体外化学研究 |
细胞内源防御调节 | 在UVA处理的皮肤细胞模型中,麦角硫因与Nrf2—ARE活化、GCLC表达增加及GSH水平升高相关 | 皮肤细胞研究 |
3.1 与部分高反应性自由基发生电子转移
脉冲辐解实验显示,羟基自由基、叠氮自由基和三氯甲基过氧自由基可使麦角硫因发生一电子氧化,即麦角硫因净失去一个电子并形成短寿命氧化中间体。[9]
该结果表明,麦角硫因能够参与特定自由基引发的电子转移反应。其作用具有选择性,但不是清除全部活性氧,也不能替代过氧化氢酶、谷胱甘肽过氧化物酶和过氧化还原蛋白等内源抗氧化酶。
3.2 与Cu⁺配位并降低铜催化氧化
铜离子可在Cu²⁺和Cu⁺之间循环,并在抗坏血酸或过氧化物存在时促进氧化反应。体外实验显示,麦角硫因可与Cu⁺形成氧化还原活性较低的配位复合物,从而减少铜催化的抗坏血酸氧化、DNA链断裂和蛋白质羰基形成。[10]
其作用过程可概括为:
麦角硫因与Cu⁺配位
→ 铜参与氧化还原循环的能力下降 → 铜催化氧化减弱
该机制来自体外化学研究,尚不能据此确定麦角硫因—铜复合物在人体皮肤细胞内的实际含量和生理作用。
3.3 激活Nrf2—ARE相关防御并支持谷胱甘肽合成
核因子红系2相关因子2(nuclear factor erythroid 2-related factor 2,Nrf2)进入细胞核后,可与抗氧化反应元件(antioxidant response element,ARE)结合,促进抗氧化和解毒相关基因表达。
在UVA处理的HaCaT角质形成细胞中,125~500 nmol/L麦角硫因处理与以下变化相关:[7]
①Nrf2核内积累和ARE转录活性增加;
②血红素加氧酶1(heme oxygenase-1,HO-1)表达增加;
③NAD(P)H醌氧化还原酶1(NAD(P)H quinone oxidoreductase 1,NQO1)表达增加;
④谷氨酸—半胱氨酸连接酶催化亚基(glutamate-cysteine ligase catalytic subunit,GCLC)表达增加;
⑤细胞内还原型谷胱甘肽(reduced glutathione,GSH)水平升高。
主要关系为:
Nrf2核转位 → ARE激活 → HO-1、NQO1和GCLC表达增加
其中:
GCLC表达增加 → 谷胱甘肽合成能力提高 → 细胞还原防御增强
HO-1和NQO1属于Nrf2调控的其他防御分支,不直接参与谷胱甘肽合成。敲低Nrf2或OCTN1后,麦角硫因对UVA诱导ROS升高、细胞凋亡和细胞死亡的抑制作用减弱,表明OCTN1介导的细胞摄取和Nrf2相关信号均参与该细胞模型中的保护作用。[7]
4. 抗氧化网络对皮肤细胞的影响
4.1 角质形成细胞:氧化损伤和凋亡信号下降
角质形成细胞位于活表皮,是紫外线和环境氧化刺激首先接触的皮肤活细胞。UVA可增加细胞内ROS,损伤DNA、蛋白质和脂质,并影响线粒体膜功能和凋亡通路。
在HaCaT角质形成细胞实验中,麦角硫因预处理减轻了15 J/cm² UVA造成的损伤。研究观察到ROS生成减少,彗星试验所示的DNA损伤减轻,线粒体功能异常减轻,caspase-9和caspase-3活化下降,Bcl-2/Bax失衡得到缓解,细胞存活率提高。[7]
这些结果来自培养细胞模型,不能直接等同于外用产品在人体皮肤中的功效。
4.2 成纤维细胞:AP-1、MMP-1与Ⅰ型前胶原
UVA诱导的ROS可激活多条蛋白激酶通路,并促进激活蛋白1(activator protein 1,AP-1)中的c-Fos和c-Jun活化。AP-1可促进基质金属蛋白酶1(matrix metalloproteinase 1,MMP-1)表达。MMP-1参与Ⅰ型和Ⅲ型纤维状胶原的初始切割,是紫外线相关细胞外基质降解的重要环节。
在UVA处理的人皮肤成纤维细胞实验中,0.125~0.5 μmol/L麦角硫因处理与以下变化相关:
观察指标 | 实验结果 |
UVA诱导的ROS | 下降 |
c-Fos和c-Jun核转位 | 减弱 |
AP-1活化 | 减弱 |
MMP-1活化 | 下降 |
Ⅰ型前胶原降解 | 减少 |
Nrf2相关抗氧化蛋白 | 增加 |
细胞内GSH | 升高 |
这些结果表明,麦角硫因在该细胞模型中可通过降低氧化压力和AP-1—MMP-1信号,减少Ⅰ型前胶原降解。[8]
4.3 mtDNA 4977 bp常见缺失的初步证据
线粒体DNA(mitochondrial DNA,mtDNA)位于线粒体基质中,邻近内膜电子传递链。持续氧化压力可增加mtDNA碱基和链结构损伤。4977 bp缺失通常称为mtDNA“常见缺失”,可作为部分光老化研究中的线粒体损伤指标。
2014年的一项初步研究使用来自4名供体的原代人皮肤成纤维细胞,在3周内反复进行UVA照射,并以聚合酶链式反应检测mtDNA 4977 bp缺失。实验使用20 μmol/L麦角硫因,同时检测细胞GSH水平。[12]
研究观察到,部分未处理的UVA样本出现4977 bp缺失,而相应的麦角硫因处理样本中未检测到该缺失;麦角硫因处理还伴随GSH水平升高。[12]
该研究样本数量较少,且常见缺失仅在部分未处理样本中成功诱导。现有结果支持麦角硫因可能减少特定UVA模型中mtDNA 4977 bp常见缺失的形成,不支持其补回已经缺失的DNA片段或修复既有mtDNA突变。
4.4 动物实验提供的补充证据
2024年的紫外线暴露小鼠研究和细胞研究观察到,麦角硫因处理与皮肤氧化损伤指标下降、抗氧化酶活性改善、基质金属蛋白酶减少以及PI3K/Akt/Nrf2相关信号变化有关。[13]
5. 麦角硫因与维生素C的氧化还原相互作用
麦角硫因和维生素C都能参与水相氧化还原反应,但二者承担的作用不同。维生素C在生理环境中主要以抗坏血酸形式存在,能够快速提供电子;麦角硫因具有较稳定的硫酮结构、OCTN1介导的细胞摄取能力和Cu⁺配位能力。
5.1 维生素C还原麦角硫因的一电子氧化中间体
麦角硫因(EGT)与某些强氧化性自由基反应后,可形成一电子氧化中间体。体外脉冲辐解研究显示,抗坏血酸能够向该中间体提供电子,使麦角硫因恢复还原状态,同时形成抗坏血酸自由基。[9]
该过程可简化表示为:
氧化物种 + EGT
→ EGT一电子氧化中间体
EGT一电子氧化中间体 + 抗坏血酸
→ EGT还原态再生 + 抗坏血酸自由基
该反应的二级速率常数约为6.3×10⁸ L·mol⁻¹·s⁻¹,说明在相应体外条件下反应速度较快。[9]
5.2 GSH、NADPH和NADH支持维生素C再生
抗坏血酸提供电子后,可形成抗坏血酸自由基,并进一步生成脱氢抗坏血酸(dehydroascorbic acid,DHA)。这些氧化形式需要通过细胞还原体系重新转化为抗坏血酸。
人内皮细胞研究显示:
①抗坏血酸自由基可通过还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(reduced nicotinamide adenine dinucleotide,NADH)和还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate,NADPH)依赖的机制还原;
②DHA的还原需要GSH,可通过直接反应和酶促反应完成;
③氧化型谷胱甘肽(oxidized glutathione,GSSG)可由谷胱甘肽还原酶利用NADPH还原为GSH。[11]
主要电子流可表示为:
DHA
—GSH及相关还原酶→ 抗坏血酸
GSSG
—谷胱甘肽还原酶、NADPH→ GSH
上述机制来自人内皮细胞及其细胞裂解物研究,说明维生素C再生所需的基本细胞还原过程,但不是在皮肤细胞中对麦角硫因—维生素C复配进行的直接验证。
5.3 二者的氧化还原联系属于多组分还原网络
麦角硫因与维生素C之间已有实验支持的联系包括两个方向:
维生素C提供电子
→ 麦角硫因一电子氧化中间体再生
麦角硫因结合Cu⁺
→ 铜催化的维生素C氧化减少
维生素C自身还需要GSH、NADPH、NADH和相关还原酶支持再生。相关的电子传递关系可概括为相互连接的还原过程:
NADPH可通过谷胱甘肽还原酶支持GSH再生;NADH或NADPH依赖机制可参与抗坏血酸自由基的还原;GSH及相关还原机制可将脱氢抗坏 血酸还原为抗坏血酸;再生的抗坏血酸可在体外向麦角硫因的一电子氧化中间体提供电子。麦角硫因与维生素C共同参与的是多组分氧化还原网络。[9-11]:
6. 从作用机制到外用配方
6.1 原料身份与质量
天然提取、微生物发酵、酶催化和化学合成可能形成不同的杂质组成。原料来源不能单独决定功效,化学身份、纯度、稳定性和实际添加量更直接影响研究和配方结果。
6.2 添加量不等于细胞内浓度
外用麦角硫因需要经过以下步骤:
从配方中释放 → 进入角质层 → 到达活表皮 → 经OCTN1进入细胞 → 在细胞内积累
配方标示浓度不能直接换算为活表皮细胞内浓度。离体皮肤分布、皮肤渗透或其他适当的递送研究,可用于确认麦角硫因是否到达OCTN1所在的活细胞环境。
6.3 与维生素C复配需要验证稳定性
麦角硫因与抗坏血酸具有体外氧化还原相互作用依据,但成品稳定性还会受到以下因素影响:
①使用L-抗坏血酸还是维生素C衍生物;
②配方pH;
③铁、铜等痕量金属;
④溶解氧和灌装条件;
⑤光照与储存温度;
⑥包装的避光性和阻氧性;
⑦开封后的含量、颜色、气味和pH变化。
维生素C衍生物需要经过相应转化,释放具有还原活性的抗坏血酸后,才可能直接参与麦角硫因一电子氧化中间体的还原。
6.4 不同实验回答不同问题
研究层级 | 主要回答的问题 |
化学反应实验 | 是否与特定自由基、氧化中间体或金属离子反应 |
转运实验 | OCTN1是否介导麦角硫因进入细胞 |
皮肤细胞实验 | 是否影响ROS、Nrf2、GSH、AP-1或MMP-1 |
离体皮肤实验 | 成分是否进入角质层或到达活表皮 |
成品稳定性实验 | 活性成分在储存和使用期间能否保持 |
人体功效试验 | 实际使用后是否改善目标皮肤指标 |
原料化学实验和培养细胞实验不能替代最终配方的人体功效研究。配方组成、浓度、递送方式和使用周期发生变化后,需要对成品重新进行验证。
7. 麦角硫因结构、生物合成、OCTN1转运、抗氧化网络与线粒体光损伤研究相关代表化学品分类及科研应用
表1 麦角硫因核心化合物、生物合成前体与含硫代谢相关产品
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
核心麦角硫因 | 497-30-3 | L-(+)-麦角硫因 | Moligand™, ≥98% | 用于麦角硫因结构性质、OCTN1介导摄取、细胞内积累、紫外线氧化应激及皮肤细胞保护研究。 | |
麦角硫因直接生物合成前体 | 534-30-5 | 组氨酸甜菜碱 | Moligand™, ≥97% | 用于麦角硫因生物合成、组氨酸三甲基化、前体转化、代谢物鉴定及结构对照研究。 | |
麦角硫因组氨酸骨架前体 | 71-00-1 | L-组氨酸 | 无动物源, USP, Moligand™, 欧洲药典(Ph.Eur), 用于细胞培养 | 用于麦角硫因组氨酸骨架来源、组氨酸甜菜碱生成、发酵底物供给及生物合成通路研究。 | |
生物合成甲基供体 | 29908-03-0 | S-腺苷蛋氨酸(SAM) | Moligand™, ≥98% | 用于麦角硫因生物合成中的组氨酸三甲基化、甲基转移酶反应及发酵途径评价。 | |
甲基供体循环前体 | 63-68-3 | L-甲硫氨酸(H-Met-OH) | 无动物源, USP, JP, Moligand™, 欧洲药典(Ph.Eur), 用于细胞培养, ≥99% | 用于S-腺苷蛋氨酸供给、甲基循环调节、麦角硫因发酵培养基及代谢流研究。 | |
含硫前体与谷胱甘肽底物 | 52-90-4 | L-半胱氨酸 | 无动物源, Moligand™, 用于细胞培养, ≥98% | 用于含硫前体供给、谷胱甘肽合成、麦角硫因生物合成条件筛选及氧化还原对照研究。 | |
谷胱甘肽合成底物 | 56-86-0 | L-谷氨酸 | ≥99% | 用于γ-谷氨酰代谢、谷胱甘肽合成及麦角硫因相关细胞还原体系研究。 | |
谷胱甘肽合成底物 | 56-40-6 | 甘氨酸 | PharmPure™, USP, BP, 欧洲药典(Ph.Eur), ≥99% | 用于谷胱甘肽合成、培养基氨基酸组成及皮肤细胞抗氧化能力评价。 | |
半胱氨酸供体与抗氧化对照 | 616-91-1 | N-乙酰-L-半胱氨酸( NAC) | PharmPure™, USP, Moligand™, 欧洲药典(Ph.Eur), ≥98.5% | 用于补充半胱氨酸、支持谷胱甘肽合成、建立抗氧化阳性对照及紫外线氧化应激研究。 |
表2 维生素C—谷胱甘肽—细胞还原当量网络相关产品
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
维生素C电子供体 | 50-81-7 | L -抗坏血酸 | 无水级, Moligand™, ACS, ≥99% | 用于麦角硫因一电子氧化中间体还原、维生素C协同抗氧化、胶原羟化及紫外线损伤对照研究。 | |
维生素C盐型与细胞培养对照 | 134-03-2 | 抗坏血酸钠 | 用于细胞培养, ≥99% | 用于水相维生素C供给、细胞培养抗氧化对照及麦角硫因—抗坏血酸协同评价。 | |
维生素C氧化产物 | 490-83-5 | (L)-脱氢抗坏血酸 | Moligand™, ≥95% | 用于维生素C氧化、谷胱甘肽依赖性再生、细胞摄取及氧化还原循环研究。 | |
还原型谷胱甘肽 | 70-18-8 | 谷胱甘肽(还原型) | PharmPure™, 欧洲药典(Ph.Eur) | 用于脱氢抗坏血酸还原、过氧化物处理、细胞巯基保护及麦角硫因抗氧化网络研究。 | |
氧化型谷胱甘肽 | 27025-41-8 | L-谷胱甘肽(氧化型) | 无动物源, 低内毒素, 用于细胞培养, ≥98% | 用于谷胱甘肽氧化还原对、谷胱甘肽还原酶反应、细胞还原状态及氧化应激评价。 | |
谷胱甘肽再生还原当量 | 2646-71-1 | 还原辅酶Ⅱ四钠盐 水合物(β-NADPH四钠盐水合物) | ≥99% | 用于氧化型谷胱甘肽还原、维生素C间接再生、还原酶体系及细胞抗氧化电子流研究。 | |
细胞还原当量 | 606-68-8 | 还原型辅酶I 二钠(β-NADH) | ≥98% | 用于还原酶电子供给、抗坏血酸自由基还原及细胞氧化还原代谢研究。 |
表3 金属催化氧化、抗氧化能力评价与氧化损伤检测相关产品
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
二价铜氧化反应模型 | 7758-99-8 | 硫酸铜,五水 | 用于细胞培养, ≥98% | 用于铜—抗坏血酸氧化体系、麦角硫因铜配位、金属催化活性氧生成及细胞氧化应激研究。 | |
一价铜配位模型 | 7758-89-6 | 氯化亚铜 | PrimorTrace™, ≥99.999% metals basis | 用于麦角硫因与Cu⁺配位、铜催化维生素C氧化及金属氧化还原活性研究。 | |
二价铁氧化反应模型 | 7782-63-0 | 硫酸亚铁七水合物 | 适用于植物细胞培养, ≥99% | 用于芬顿反应、羟基自由基生成、铁催化氧化损伤及麦角硫因金属控制对照研究。 | |
金属螯合对照 | 6381-92-6 | 乙二胺四乙酸 二钠盐 二水合物 | UltraBio™, 超纯级, ≥98.5% | 用于过渡金属螯合、金属催化氧化抑制及麦角硫因金属配位作用对照研究。 | |
高亲和力金属螯合对照 | 67-43-6 | 二乙烯三胺五乙酸(DTPA) | AR, ≥99%(T) | 用于铁、铜离子控制、金属依赖性氧化反应及抗氧化实验背景干扰排除。 | |
过氧化物氧化应激模型 | 7722-84-1 | 过氧化氢 溶液 | 适用于微生物学, 3% | 用于建立皮肤细胞氧化应激、Nrf2防御、线粒体损伤及抗氧化保护模型。 | |
氧化还原循环诱导剂 | 58-27-5 | 甲萘醌 | 结晶 | 用于诱导细胞内氧化还原循环、活性氧升高、谷胱甘肽消耗及线粒体应激研究。 | |
过氧自由基发生剂 | 2997-92-4 | 2,2′-偶氮双(2-甲基丙脒)二盐酸盐(AAPH) | ≥97% | 用于持续产生过氧自由基、评价麦角硫因自由基反应能力及脂质氧化保护作用。 | |
自由基阳离子抗氧化评价 | 30931-67-0 | 2,2′-联氮双(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸) 二铵盐[AzBTS-(NH4)2] | ≥98% | 用于自由基阳离子清除、总抗氧化能力测定及麦角硫因与维生素C比较研究。 | |
稳定自由基抗氧化评价 | 1898-66-4 | 2,2-联苯基-1-苦基肼基(含10-20%苯) | ≥97%(HPLC) | 用于稳定自由基清除、电子或氢供体能力评价及麦角硫因化学抗氧化筛选。 | |
铁离子还原能力评价 | 3682-35-7 | 2,4,6-三(2-吡啶基)三嗪(TPTZ) | ≥99% | 用于三价铁还原抗氧化能力测定、标准曲线建立及不同抗氧化成分比较。 | |
水溶性维生素E类似物参照 | 53188-07-1 | 奎诺二甲基丙烯酸酯 | ≥98%, white | 用于总抗氧化能力标准曲线、自由基清除参照及不同检测方法结果换算。 | |
细胞内氧化反应荧光探针 | 4091-99-0 | 2,7-二氯二氢荧光素二乙酸酯 (DCFH-DA) | ≥97% | 用于细胞内总体氧化反应信号、紫外线诱导氧化应激及麦角硫因保护作用评价。 | |
超氧阴离子相关荧光探针 | 104821-25-2 | 二氢乙锭 | ≥95% | 用于细胞内超氧阴离子相关信号、氧化应激定位及麦角硫因抗氧化作用研究。 | |
氧化性DNA损伤标志物 | 88847-89-6 | 2'-脱氧-7,8-二氢-8-氧代鸟苷 | ≥95%(HPLC) | 用于氧化性DNA损伤标准品、色谱或免疫检测方法建立及紫外线损伤评价。 | |
蛋白质羰基检测试剂 | 119-26-6 | 2,4-二硝基苯肼 | 试剂级, ≥97% | 用于蛋白质羰基衍生化、氧化蛋白检测及麦角硫因蛋白保护作用评价。 | |
脂质过氧化检测试剂 | 504-17-6 | 2-硫代巴比妥酸 | Moligand™, ≥98% | 用于硫代巴比妥酸反应物测定、丙二醛相关脂质过氧化分析及抗氧化评价。 | |
丙二醛标准物前体 | 122-31-6 | 1,1,3,3-四乙氧基丙烷 | ≥97% | 用于制备丙二醛标准溶液、脂质过氧化标准曲线及紫外线氧化损伤定量。 | |
巯基与谷胱甘肽检测试剂 | 69-78-3 | 5,5'二硫代双(2-硝基苯甲酸)(DTNB) | ≥98% | 用于游离巯基、总巯基及谷胱甘肽相关测定,评价麦角硫因处理后的细胞还原状态。 |
表4 Nrf2—MAPK/AP-1—MMP信号通路研究相关产品
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
Nrf2功能抑制对照 | 846557-71-9 | ML385,Nrf2抑制剂 | Moligand™, ≥99% | 用于验证麦角硫因抗氧化作用对Nrf2的依赖性,并检测HO-1、NQO1、GCLC和谷胱甘肽变化。 | |
Nrf2激活阳性对照 | 4478-93-7 | 萝卜硫素 | Moligand™, ≥95% | 用于Nrf2核转位、抗氧化反应元件激活及内源抗氧化基因表达阳性对照研究。 | |
Nrf2/ARE诱导对照 | 1948-33-0 | 叔丁基对苯二酚(TBHQ) | ≥98% | 用于Nrf2/ARE通路诱导、抗氧化酶表达及麦角硫因细胞防御效应比较研究。 | |
JNK/AP-1通路抑制剂 | 129-56-6 | 蒽[1,9-cd]吡唑-6(2H)-酮 | Moligand™, ≥98% | 用于抑制JNK及c-Jun活化,研究紫外线诱导AP-1、MMP-1和胶原降解信号。 | |
p38 MAPK通路抑制剂 | 152121-47-6 | SB-203580,p38 MAPK抑制剂 | Moligand™, ≥98%(HPLC) | 用于研究p38 MAPK介导的氧化应激、AP-1活化、炎症反应及MMP-1表达。 | |
基质金属蛋白酶抑制对照 | 142880-36-2 | GM 6001,广谱MMP抑制剂 | Moligand™, ≥98% | 用于抑制基质金属蛋白酶活性、评价胶原降解及区分上游抗氧化作用与下游酶活变化。 |
表5 线粒体氧化应激、呼吸功能与膜电位评价相关产品
分类 | Cas编号 | 阿拉丁货号 | 名称 | 规格或纯度 | 产品特色与应用 |
线粒体靶向抗氧化对照 | 1334850-99-5 | Mito-TEMPO | Moligand™, ≥98% | 用于线粒体氧化应激抑制对照、超氧阴离子清除及麦角硫因线粒体保护作用比较研究。 | |
线粒体复合物Ⅰ抑制模型 | 83-79-4 | 鱼藤酮 | Moligand™, ≥95% | 用于抑制线粒体复合物Ⅰ、诱导呼吸链电子泄漏、超氧阴离子生成及膜电位异常。 | |
ATP合酶抑制模型 | 579-13-5 | 寡霉素A 来源于 淀粉酶产色链霉菌 | EnzymoPure™, ≥97% | 用于抑制线粒体ATP合酶、评价ATP相关呼吸、质子回流及麦角硫因能量稳态保护作用。 | |
氧化磷酸化解偶联剂 | 370-86-5 | 碳酰氰 4-(三氟甲氧基)苯腙(FCCP) | Moligand™, ≥98%(TLC) | 用于线粒体膜电位去极化、最大呼吸能力测定及膜电位探针阳性对照。 | |
线粒体膜电位荧光探针 | 115532-50-8 | 四甲基罗丹明甲酯高氯酸盐 (TMRM Perchlorate) | BioReagent, 生物染色剂, 适用于荧光分析, 用于显微镜, ≥95% | 用于线粒体膜电位动态检测、紫外线诱导去极化及麦角硫因线粒体功能保护评价。 | |
线粒体膜电位比率探针 | 3520-43-2 | JC-1,线粒体膜电位染料 | ≥95% | 用于线粒体膜电位变化、聚集态与单体态荧光比值及线粒体途径凋亡研究。 | |
线粒体超氧化物荧光探针 | 1003197-00-9 | MitoSOX Red(线粒体超氧化物红色荧光探针) | ≥95% | 用于线粒体超氧阴离子相关信号检测、呼吸链氧化应激及麦角硫因保护作用评价。 |
注:以上为阿拉丁代表性科研相关产品,具体用途应结合产品规格、批次COA及目标反应或评价体系确定。更多产品规格、级别和COA信息可用“品名/CAS/货号”在阿拉丁官网检索。
参考文献
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