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淀粉样物质刚果红染色中Highman、Bennhold、Puchtler及改良法的应用区别

        刚果红染色是组织病理和实验组织学中识别淀粉样物质的经典方法。Highman、Bennhold、Puchtler及改良刚果红法的区别不在于识别不同类型的淀粉样蛋白,而在于染液环境、分化控制、背景处理和偏振光判读稳定性不同。

 

        关键词:刚果红染色;淀粉样物质;Highman法;Bennhold法;Puchtler碱性刚果红法;改良Highman法;改良Stores法;偏振光;苹果绿色双折光;组织病理染色

 

1、刚果红染色的基本逻辑

1.1、淀粉样物质的染色基础

(1)染色对象

        刚果红染色主要用于显示组织切片中的淀粉样物质。淀粉样物质是一类具有β折叠结构特征的异常蛋白沉积物,可分布于血管壁、间质、器官实质或局部病灶周围。

(2)显微镜表现

        刚果红与淀粉样物质结合后,普通光镜下常呈红色、橙红色或砖红色沉积。该表现适合进行形态定位,但不能单独作为确认依据。

(3)偏振光判读

        偏振光下出现典型苹果绿色双折光,是刚果红法判断淀粉样物质的重要依据。若仅有普通光镜红染而缺乏典型双折光,应考虑背景染色、切片厚度、分化条件或封片状态对结果的影响。

 

1.2、刚果红法的技术差异

(1)染液体系

        不同刚果红法在染液组成、pH环境和分化体系上存在差异。Bennhold法偏向经典基础显示,Highman法强调组织定位和对比度,Puchtler碱性法则更重视选择性结合和背景控制。

(2)背景控制

        胶原、弹力纤维、坏死组织、黏液样基质和色素沉积均可能干扰普通光镜观察。背景复杂样本更适合选择Puchtler碱性刚果红法或改良刚果红法。

(3)方法选择

        明显沉积样本可采用Bennhold或Highman法进行基础显示;弱阳性、局灶性或背景复杂样本更适合Puchtler碱性法或改良Highman、改良Stores等方案。


表1 刚果红染色结果的主要判读要点

 

判读层面

观察内容

阳性特征

主要风险

普通光镜

沉积物颜色和分布

红色、橙红色或砖红色无定形沉积

胶原、坏死组织或背景红染干扰

偏振光

双折光表现

苹果绿色双折光

切片厚度、染色过深或封片影响判读

组织定位

血管壁、间质或实质沉积

与HE可疑区域对应

组织皱褶或非特异沉积误判

方法一致性

不同方法或复染结果

阳性区域稳定出现

分化不足导致假阳性倾向

 

2、Highman、Bennhold与Puchtler法的应用区别

2.1、Bennhold刚果红法

(1)方法定位

        Bennhold法属于经典刚果红染色体系,强调刚果红对淀粉样沉积物的直接着色能力。该方法适合用于明显沉积样本的基础显示和教学性观察。

(2)染色特点

        Bennhold法普通光镜下多以红色或橙红色沉积作为观察重点。其操作逻辑较清晰,但背景控制能力相对依赖分化条件和操作者经验。

(3)适用场景

        当淀粉样沉积量较多、组织背景较简单、主要目的为常规筛查或基础观察时,Bennhold法具有较好适用性。若样本存在胶原丰富、坏死明显或背景红染较强,应结合偏振光和其他改良方法复核。

 

2.2、Highman刚果红法

(1)方法定位

        Highman法在经典刚果红染色基础上更强调组织对比和形态定位,适合用于组织切片中淀粉样沉积的常规观察。

(2)染色特点

        Highman法的优势在于普通光镜下阳性沉积与周围组织结构的区分相对清楚。其结果仍需结合偏振光双折光确认,不能仅凭红色沉积判断阳性。

(3)适用场景

        Highman法适合病理组织中可疑淀粉样沉积的常规验证。对于沉积区域较小或背景组织较复杂的样本,改良Highman法或Puchtler碱性法通常更有利于提高判读可靠性。

 

2.3、Puchtler碱性刚果红法

(1)方法定位

        Puchtler碱性刚果红法是应用较广的改良型刚果红体系。其核心特点是通过碱性环境和盐-醇体系增强刚果红与淀粉样物质的选择性结合,并降低非特异性背景染色。

(2)染色特点

        Puchtler法通常具有较好的背景控制能力。阳性沉积在普通光镜下呈红色至橙红色,在偏振光下可显示较典型的苹果绿色双折光。

(3)适用场景

        Puchtler碱性刚果红法更适合临床病理确认、弱阳性沉积筛查和复杂组织背景分析。肾脏、肝脏、脾脏、心肌、胃肠道及血管壁等样本中,该方法通常具有较高应用价值。


表2 Highman、Bennhold与Puchtler法的应用区别

 

方法

技术定位

主要优势

主要局限

适用场景

Bennhold刚果红法

经典基础染色体系

操作逻辑清晰,适合明显沉积观察

背景控制依赖分化,弱阳性样本判读压力较大

明显淀粉样沉积、基础筛查、教学观察

Highman刚果红法

强调组织对比和形态定位

普通光镜下定位较清楚,组织层次较好

仍需偏振光确认,背景复杂时需控制分化

常规组织切片验证、病理形态定位

Puchtler碱性刚果红法

选择性较强的碱性刚果红体系

背景控制较好,偏振光效果较稳定

对pH、分化、切片厚度和流程一致性要求较高

弱阳性沉积、复杂组织、临床病理确认

 

3、改良刚果红法的技术特点

3.1、改良Highman法

(1)改良目的

        改良Highman法通常围绕染色稳定性、背景降低和普通光镜可读性进行优化。其目的不是改变刚果红识别淀粉样物质的原理,而是提高阳性沉积与背景组织的区分度。

(2)应用特点

        改良Highman法适合组织结构较复杂、背景红染较明显或常规Highman法对比度不足的样本。该方法可用于常规Highman法结果不清晰时的复核。

(3)判读重点

        使用改良Highman法时,应避免分化不足造成背景红染增强,也应避免过度分化导致弱阳性沉积减弱。阳性区域应与HE可疑区域和偏振光双折光结果相互印证。

 

3.2、改良Stores刚果红法

(1)方法定位

        改良Stores刚果红法属于针对淀粉样物质显示效果和背景控制进行优化的改良体系,适合与其他刚果红法形成互补。

(2)应用特点

        改良Stores法适合背景组织较多、沉积区域散在或需要提高染色一致性的样本。其优势在于改善组织背景与阳性沉积之间的区分度。

(3)质量控制

        改良Stores法应重视阳性对照、切片厚度、染色时间和分化条件。若阳性对照双折光减弱,应优先检查染液状态和脱水封片过程。

 

3.3、其他补充体系

(1)甲醇刚果红体系

        甲醇刚果红体系可用于特定组织背景下的辅助观察或方法比较。其结果应结合常规刚果红法和偏振光结果进行判断,不宜单独作为确认依据。

(2)甲紫法

        甲紫法可作为淀粉样物质染色的补充方法,用于与刚果红结果进行对照。其价值主要在于提供不同染色体系下的沉积物观察结果,而不是替代偏振光确认。

(3)基础刚果红染色

        普通刚果红染色液适合方法预实验、基础观察或自建分化体系。若用于淀粉样物质确认,应严格设置阳性对照并进行偏振光观察。


表3 改良刚果红法及补充体系的应用侧重点

 

方法

技术重点

适合样本

判读重点

改良Highman法

提高组织对比度和染色稳定性

背景较复杂、常规Highman对比不足样本

红色沉积与偏振光双折光一致

改良Stores刚果红法

改善背景控制和阳性沉积辨识度

散在沉积、组织结构复杂样本

阳性对照、切片厚度和分化条件

甲醇刚果红体系

调整染料渗透和组织脱水环境

特定实验条件或补充验证

不宜替代偏振光确认

甲紫法

淀粉样物质补充染色

方法比较或辅助观察

与刚果红法结果相互印证

 

4、方法选择与结果控制

4.1、方法选择逻辑

(1)明显沉积样本

        对于HE下已有明显无定形嗜酸性沉积、组织背景相对简单的样本,Bennhold法、Highman法或Puchtler法均可用于初步显示。正式判读仍应结合偏振光观察。

(2)弱阳性或局灶性沉积样本

        对于沉积量少、分布局灶或血管壁轻度受累样本,应优先选择Puchtler碱性刚果红法或改良刚果红法。此类样本对切片厚度、染色时间和分化条件更敏感。

(3)背景复杂样本

        胶原丰富、黏液样基质明显、坏死炎症较重或色素沉积较多的样本,不宜仅依据普通光镜红染判断。应结合背景鉴别染色、阳性对照和偏振光双折光综合分析。

 

4.2、实验条件控制

(1)切片厚度

        切片过厚可能增加背景染色和非特异性双折光,切片过薄则可能使弱阳性沉积不易显示。淀粉样物质刚果红染色应保持切片厚度一致,以提高批间可比性。

(2)分化程度

        分化不足容易造成背景红染增强,分化过度可能削弱弱阳性沉积。Puchtler及改良法对分化步骤较敏感,应通过阳性对照确定合适分化强度。

(3)封片与偏振光观察

        脱水、透明和封片过程会影响普通光镜颜色及偏振光表现。若普通光镜阳性而偏振光不典型,应优先排查制片和观察条件。


表4 不同实验需求下的刚果红法选择

 

实验需求

优先方法

辅助方法

选择理由

明显淀粉样沉积初筛

Bennhold法或Highman法

Puchtler法

操作直观,适合快速显示沉积区域

临床病理确认

Puchtler碱性刚果红法

改良Highman法

背景控制较好,偏振光判读更可靠

弱阳性或局灶性沉积

Puchtler法或改良Stores法

改良Highman法

提高沉积物与背景组织区分度

胶原丰富组织

Puchtler法

改良刚果红法、胶原背景染色

降低胶原或间质背景干扰

方法学比较

Bennhold法、Highman法、Puchtler法并行

改良法复核

便于比较染色强度、背景和偏振光效果

教学和基础观察

Bennhold法或普通刚果红染色

偏振光观察

便于理解刚果红阳性沉积的基本形态

 

5、刚果红染色相关产品与辅助鉴别试剂

表5 淀粉样物质刚果红染色及辅助鉴别产品选型

 

产品类别

货号

产品名称

方法或体系

规格/级别

适用场景

核心染色体系

A1508461

淀粉样物质染色液 (Bennhold刚果红法)

Bennhold刚果红法

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

明显淀粉样沉积的基础显示、常规筛查和教学观察

核心染色体系

A1508468

淀粉样物质染色液 (Highman刚果红法)

Highman刚果红法

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

组织切片中淀粉样物质定位、形态学观察和常规病理验证

核心染色体系

A1508466

淀粉样物质染色液 (Puchtler碱性刚果红法)

Puchtler碱性刚果红法

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

临床病理确认、弱阳性沉积、背景复杂组织和偏振光判读

改良染色体系

A1508467

淀粉样物质染色液 (改良Highman刚果红法)

改良Highman刚果红法

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

常规Highman法对比度不足、背景红染较明显或需提高阳性沉积辨识度的样本

改良染色体系

S774555

淀粉样物质染色液 (改良Stores刚果红法)

改良Stores刚果红法

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

散在沉积、背景复杂样本和不同刚果红方法复核比较

补充染色体系

A1508465

淀粉样物质染色液 (甲紫法)

甲紫法

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

淀粉样物质染色补充方法,用于与刚果红法结果对照或辅助观察

基础刚果红体系

C1516057

刚果红染色液(1%)

常规刚果红染色

BioReagent,生物染色剂,用于显微镜,1%

基础刚果红染色、方法预实验、非诊断性观察和自建分化体系

特殊刚果红体系

M1520403

甲酵刚果红染色液(0.5%)

甲醇刚果红体系

BioReagent,生物染色剂,用于显微镜,0.5%

特定实验条件下的辅助观察、方法比较或刚果红体系优化

核复染

N743376

核固红染色液

核复染

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜, 0.1%

刚果红染色后组织结构和细胞核背景显示

核复染

N1516052

核固红染色液 (0.2%)

核复染

BioReagent,生物染色剂,用于显微镜,0.2%

需要增强核背景对比的刚果红染色切片

苏木素复染

M774769

Mayer苏木素染色液

苏木素复染

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

组织结构复染,辅助观察沉积区域与组织结构关系

苏木素复染

I1507737

改良Harris苏木素染色液

苏木素复染

BioReagent,适用于微生物学,用于显微镜

刚果红染色流程中的核复染或组织结构背景显示

返蓝处理

B1194496

返蓝染色液

苏木素返蓝

BioReagent, 适用于免疫组织化学(for IHC)

苏木素复染后的返蓝处理,提高细胞核显示稳定性

组织形态对照

E489517

苏木素-伊红染色液

HE染色

 

淀粉样沉积区域的HE形态预筛和相邻切片对照

黏液背景鉴别

A1507852

阿利新蓝染色液 (pH2.5)

酸性黏液染色

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

辅助排除酸性黏多糖或黏液样基质对沉积物判读的干扰

黏液背景鉴别

A774857

阿利新蓝染色液(pH 1.0)

强酸性硫酸黏液染色

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

用于强酸性黏液背景鉴别,适合腺体或黏液丰富组织

黏液背景鉴别

I1508464

改良Hale胶体铁黏多糖染色液

黏多糖染色

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

用于黏多糖背景鉴别,避免黏液样基质与淀粉样沉积混淆

黏液背景鉴别

M1508531

黏液卡红染色液

黏液染色

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

用于黏液性物质鉴别,辅助排除黏液沉积干扰

糖原/PAS背景鉴别

G774821

糖原D-PAS染色液 (淀粉酶消化法)

PAS鉴别

BioReagent, 用于显微镜, 生物染色剂

辅助区分糖原、PAS阳性背景与非淀粉样沉积

基底膜背景鉴别

B774812

基底膜六胺银染色液 (PASM)

基底膜染色

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

肾组织基底膜背景分析,辅助肾脏淀粉样沉积定位

胶原背景鉴别

V774853

Van Gieson染色液

胶原纤维背景染色

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

辅助区分胶原红染与刚果红阳性沉积

胶原背景鉴别

I774852

改良Van Gieson染色液

胶原纤维背景染色

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

用于组织间质和胶原背景鉴别,适合背景复杂样本复核

胶原背景鉴别

I774801

改良Masson三色染色液

胶原/肌纤维鉴别

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

胶原丰富组织背景分析,辅助复杂组织中刚果红结果判读

结缔组织背景鉴别

G774552

Goldner三色染色液

结缔组织染色

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

用于结缔组织背景评价,辅助判断间质沉积区域

网状纤维背景鉴别

M774808

网状纤维染色液 (改良Gomori银氨法)

网状纤维染色

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

肝脏、脾脏、骨髓等组织中沉积物定位辅助

网状纤维背景鉴别

M774851

网状纤维染色液 (改良Gordon-Sweets法)

网状纤维染色

BioReagent, 用于显微镜, 生物染色剂

用于网状纤维支架显示,辅助判断沉积物与间质结构关系

弹力纤维背景鉴别

V1518609

Verhöeff弹力纤维染色液 (伊红复染)

弹力纤维染色

BioReagent,生物染色剂,用于显微镜

血管壁弹力纤维背景显示,辅助血管壁淀粉样沉积判读

弹力纤维背景鉴别

V1518552

Verhöeff弹力纤维染色液 (橙黄复染)

弹力纤维染色

BioReagent,生物染色剂,用于显微镜

用于血管结构和弹力纤维背景鉴别,适合血管壁沉积样本

弹力纤维背景鉴别

L1518590

地衣红弹力纤维染色液

弹力纤维染色

BioReagent,生物染色剂,用于显微镜

辅助排除血管壁弹力纤维对刚果红判读的影响

色素背景鉴别

M774546

Masson-Fontana黑色素染色液

黑色素染色

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

色素性背景组织分析,避免色素沉积影响沉积物观察

色素背景鉴别

A1508695

黑色素脂褐素染色液 (Schmorl法)

色素背景染色

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

用于黑色素或脂褐素背景鉴别,辅助排除色素干扰

钙盐背景鉴别

C774862

钙盐染色液 (Von Kossa银法)

钙盐染色

BioReagent, 生物染色剂, 用于显微镜

钙盐沉积鉴别,避免钙化灶与沉积性病变混淆

钙盐背景鉴别

C774863

钙盐染色液 (改良茜素红S法)

钙盐染色

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

用于钙盐背景鉴别,辅助复杂沉积物病变分析

铁沉积背景鉴别

P1508698

普鲁士蓝染色液 (DAB增强法)

铁染色

BioReagent,用于显微镜,生物染色剂

含铁血黄素或铁沉积鉴别,辅助排除色素性背景干扰

 

6、常见问题与判读误区

6.1、假阳性风险

(1)胶原和间质背景

        胶原纤维丰富的组织可出现背景红染或非特异性色彩干扰,尤其在分化不足时更明显。此时应重点观察沉积物形态、组织定位和偏振光表现。

(2)坏死和炎症区域

        坏死组织、炎性渗出物或组织碎片可能吸附染料,形成局灶性红染。若阳性区域缺乏典型无定形沉积形态,且偏振光下不显示典型苹果绿色双折光,应谨慎判读。

(3)切片皱褶和厚薄不均

        切片皱褶、折叠或局部过厚可造成光学假象,影响偏振光观察。出现可疑双折光时,应优先排除制片因素,并结合相邻切片复染。

 

6.2、假阴性风险

(1)沉积量少

        早期或局灶性淀粉样沉积可能染色较弱,普通光镜下不易识别。此时应根据HE可疑区域进行高倍观察,并结合偏振光和改良法复核。

(2)过度分化

        分化过强可能导致刚果红阳性沉积颜色减弱,尤其影响弱阳性样本。若阳性对照染色同时变浅,应考虑分化时间或分化液条件异常。

(3)染液状态不佳

        染液老化、pH不合适或盐-醇体系不稳定,均可能降低染色选择性和双折光表现。对于Puchtler及改良法,应定期通过阳性对照验证染液状态。


表6 刚果红染色常见问题与优化方向

 

问题表现

可能原因

影响结果

优化方向

背景红染强

分化不足、组织胶原丰富、染色过深

假阳性风险增加

优化分化时间,采用Puchtler或改良法

阳性沉积较淡

分化过度、染液活性下降、沉积量少

假阴性风险增加

使用阳性对照,缩短分化或更换染液

偏振光不典型

切片过厚、封片不良、染色过深

影响确认判断

控制切片厚度,优化封片和观察条件

不同批次差异大

染液状态、时间、温度或操作不一致

可重复性下降

统一流程,设置阳性组织对照

普通光镜阳性但偏振光阴性

非特异性红染或技术条件异常

误判风险高

复染并结合改良法和阳性对照判断

 

        Highman、Bennhold、Puchtler及改良刚果红法的差异,核心在于染色选择性、背景控制和偏振光判读稳定性。Bennhold法适合基础显示,Highman法更强调组织定位,Puchtler碱性法更适合复杂组织和确认性检测,改良法则用于提高弱阳性或背景复杂样本的判读可靠性。

 

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引用本文

阿拉丁科学.《淀粉样物质刚果红染色中Highman、Bennhold、Puchtler及改良法的应用区别》. 阿拉丁知识库,更新于 2026年5月27日。 https://www.aladdin-e.com/zh_cn/faqs/application-differences-among-highman-bennhold-puchtler.html
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