HRX215如何增强肝脏再生?
HRX215如何增强肝脏再生?
肝脏具有显著但并非无限的再生能力。大范围肝切除、严重脂肪变性、慢性炎症或纤维化可使残余肝组织无法及时恢复功能,增加肝切除术后肝衰竭风险。Cell发表的研究开发出首创MKK4抑制剂HRX215,可通过重塑MKK4–MKK7/JNK1信号网络增强肝细胞增殖,为促进肝脏再生提供新的药物干预策略。
关键词:HRX215;MKK4;肝脏再生;MKK7;JNK1;ATF2;ELK1;肝切除术后肝衰竭
1 肝脏再生的生物学基础
1.1 肝脏再生属于补偿性生长
成年肝脏约占人体体重的2%,正常情况下多数肝细胞处于有丝分裂静息状态。肝脏受到毒性损伤或部分切除后,残余肝细胞可重新进入细胞周期,通过细胞数量增加和细胞体积变化恢复适宜的肝脏—体重比。该过程主要表现为残余肝组织的补偿性生长,并非被切除肝叶的原位重建。
1.2 多种细胞共同调控再生反应
肝细胞是大多数急性损伤和部分肝切除后再生的主要执行细胞,胆道上皮细胞在特定损伤背景下可扩增并参与组织修复。肝窦内皮细胞、Kupffer细胞、浸润性免疫细胞和肝星状细胞则通过细胞因子、生长因子、细胞外基质及血流动力学信号调节肝细胞增殖。
1.3 急性损伤与慢性损伤的再生结局不同
急性损伤时,巨噬细胞清除细胞碎片并逐渐转向促修复表型,残余肝细胞和胆道上皮细胞增殖可重建组织。慢性损伤会造成肝细胞衰老、炎症持续和肝星状细胞活化,过量细胞外基质沉积又会限制细胞增殖和组织重塑,使肝脏由有效修复转向纤维化。
表1 肝脏不同状态下的再生特征
肝脏状态 | 肝细胞和胆道细胞 | 免疫与间质反应 | 主要结局 |
生理稳态 | 低水平自我更新 | Kupffer细胞维持免疫监视,肝星状细胞保持静息 | 维持组织稳态 |
急性损伤 | 肝细胞快速进入细胞周期,胆道细胞适度扩增 | 巨噬细胞清除碎片并释放促修复信号 | 组织结构和功能恢复 |
慢性损伤 | 肝细胞衰老或死亡,再生能力下降 | 促炎巨噬细胞积聚,肝星状细胞活化 | 炎症持续、纤维化和功能减退 |
大范围肝切除 | 残余肝细胞承担高强度增殖和代谢负荷 | 门静脉血流及炎症信号明显改变 | 再生充分或发生肝切除术后肝衰竭 |
2 MKK4为何成为肝脏再生靶点
2.1 MKK4位于应激激活的MAPK网络
丝裂原活化蛋白激酶激酶4(mitogen-activated protein kinase kinase 4,MKK4,又称MAP2K4)是一种双特异性蛋白激酶,参与应激激活蛋白激酶和MAPK信号调控。MKK4可响应炎症、氧化应激、DNA损伤和代谢压力,并调节JNK及部分p38 MAPK亚型。
2.2 MKK4与MKK7并非简单的功能重复
MKK4和MKK7均可参与JNK激活,但二者在刺激响应和底物偏好方面存在差异。MKK7更偏向激活JNK,MKK4则同时连接JNK和p38相关应激反应。抑制MKK4并不等于关闭全部JNK信号,而是改变两条上游激酶之间的信号平衡。
2.3 RNA干扰筛选发现MKK4的再生限制作用
体内RNA干扰筛选发现,降低肝细胞MKK4表达能够增强急性和慢性损伤肝脏的再生能力。遗传学研究显示,MKK4沉默可使信号网络转向MKK7–JNK1轴,并激活ATF2、ELK1等促再生转录因子,提示MKK4是限制损伤肝细胞重新进入细胞周期的重要调节节点。
3 HRX215的发现与药理学特征
3.1 从遗传学靶点转向小分子药物
RNA干扰能够验证MKK4的靶点价值,但其组织递送、剂量控制和临床应用仍面临限制。研究人员以已知激酶抑制剂骨架为化学起点,并结合激酶活性、细胞通透性、选择性和药代动力学进行多轮结构优化,最终获得临床候选化合物HRX215。
3.2 激酶选择性是候选物筛选的核心
MKK4与其他MAPK通路激酶具有相似的ATP结合区域,候选化合物需要避免直接抑制MKK7、JNK1和BRAF等相关激酶。HRX215相对于JNK1、BRAF和MKK7表现出超过100倍的选择性,可用于较为特异地评价MKK4抑制产生的信号重塑效应。
3.3 HRX215具有可开发的暴露特征
HRX215兼具细胞膜通透性、口服活性和适合体内研究的药代动力学特征。动物实验和首次人体研究显示,其暴露量随剂量增加,并具有支持重复给药的半衰期,为围手术期干预和后续临床评价提供了药理学基础。
4 HRX215增强肝脏再生的作用机制
4.1 抑制MKK4减弱应激性再生限制
严重肝损伤会持续激活应激信号,使肝细胞进入死亡、衰老或增殖停滞状态。HRX215抑制MKK4激酶活性后,可减弱MKK4相关应激限制,使存活肝细胞重新获得进入细胞周期的能力。
4.2 MKK7–JNK1形成补偿性促再生信号
MKK4受到抑制后,MKK7–JNK1信号增强,说明HRX215的作用并非简单降低整个应激激活蛋白激酶通路活性,而是重新分配通路中的信号输出。该变化有利于将JNK1活性导向肝细胞存活、增殖和组织修复相关程序。
4.3 ATF2和ELK1启动促再生转录程序
JNK1活化可调节ATF2和ELK1等转录因子,促进细胞周期、应激适应及组织修复相关基因表达。MKK7或JNK1受到抑制时,MKK4抑制产生的促再生效应明显减弱,支持MKK7–JNK1–ATF2/ELK1轴在HRX215作用中的关键地位。
4.4 HRX215同时影响增殖与细胞死亡
HRX215不仅增加Ki67、PCNA或核苷类似物掺入标记的增殖肝细胞,还可减少肝细胞凋亡。再生组织中的净细胞增加取决于增殖速率与死亡速率之间的平衡,需要同时评价细胞周期进入、细胞存活和肝功能恢复。
表2 HRX215促肝再生的主要信号事件
信号层级 | HRX215处理后的变化 | 主要评价指标 |
靶点层 | MKK4激酶活性受到抑制 | MKK4酶活、靶点结合、选择性激酶谱 |
通路层 | MKK7–JNK1信号增强 | MKK7活性、p-JNK1、JNK底物磷酸化 |
转录层 | ATF2和ELK1相关转录增强 | p-ATF2、p-ELK1、报告基因及转录组 |
细胞层 | 肝细胞增殖增加、凋亡减少 | Ki67、PCNA、EdU、Caspase-3、TUNEL |
组织层 | 肝质量和组织结构恢复 | 肝脏—体重比、组织学、影像学体积 |
功能层 | 合成、代谢和解毒功能改善 | ALT、AST、胆红素、白蛋白、凝血功能 |
5 HRX215的临床前与人体研究证据
5.1 小鼠肝损伤与部分肝切除模型
在四氯化碳诱导的肝损伤背景下,HRX215可增加部分肝切除后的肝细胞增殖并减少细胞凋亡。实验结果支持MKK4抑制能够在肝脏已经受到损伤的条件下增强残余肝细胞的再生反应,而非仅对健康肝脏产生作用。
5.2 脂肪性肝炎与慢性纤维化模型
在酒精相关脂肪性肝炎和慢性四氯化碳诱导的肝纤维化模型中,MKK4抑制表现出减轻脂肪变性和纤维化的作用。此类变化可能同时涉及肝细胞存活、炎症反应、代谢状态和细胞外基质重塑,不能仅用肝细胞增殖增加解释。
5.3 猪大范围肝切除模型
猪肝脏的体积、结构和围手术期生理变化更接近人类。研究人员在80%和85%肝切除模型中评价HRX215,结果显示MKK4抑制可提高肝细胞增殖和残余肝组织恢复速度,并改善致死性85%肝切除后的生存结局。
5.4 肝切除术后肝衰竭的预防潜力
肝切除术后肝衰竭(post-hepatectomy liver failure,PHLF)与未来肝余量不足、残余肝质量较差和再生速度不足密切相关。HRX215通过提高残余肝细胞的再生能力,可能扩大部分患者接受大范围肝切除的安全边界,但不能替代术前肝体积、肝功能及手术风险评估。
5.5 安全性与首次人体研究
长期MKK4沉默研究未观察到肝脏肿瘤发生风险明显增加,HRX215在大鼠和犬的重复给药毒性评价中也表现出较好的耐受性。首次人体Ⅰ期研究显示HRX215具有良好的安全性、耐受性和药代动力学特征。目前HRX215(darizmetinib)已进入肝切除患者的Ⅰb/Ⅱa期临床研究,并进一步开展门静脉栓塞后促进未来肝余量增长的Ⅱ期研究。
6 HRX215与肝脏再生研究相关产品
6.1 MKK4–MKK7/JNK通路研究产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 作用机制与研究定位 |
维罗非尼(PLX4032,RG7204) | Moligand™, ≥98% | BRAF抑制剂,其化学骨架与HRX215的先导发现过程相关,可用于激酶选择性和结构优化参照 | |
蒽[1,9-cd]吡唑-6(2H)-酮 | Moligand™, 10mM in DMSO | 又称SP600125,可抑制JNK1、JNK2和JNK3,用于判断MKK4抑制产生的促再生效应是否依赖JNK信号 | |
蒽[1,9-cd]吡唑-6(2H)-酮 | Moligand™, ≥98% | 粉末型SP600125,适用于浓度梯度、联合干预及动物实验制剂研究 | |
JNK-IN-8 | Moligand™, 10mM in DMSO | 共价抑制JNK1、JNK2和JNK3,可与SP600125组成正交通路验证体系 | |
MAP2K4 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 降低人源细胞MAP2K4表达,用于比较遗传性MKK4沉默与HRX215药理抑制的效应 | |
Map2k4 Mouse Pre-designed siRNA Set A |
| 用于小鼠细胞或动物来源样本中的Map2k4基因沉默和靶点依赖性研究 | |
MAP2K7 Human Pre-designed siRNA Set A |
| 降低MAP2K7表达,用于验证MKK7是否介导MKK4抑制后的补偿性JNK1激活 | |
MEK4/MKK4 Antibody | 无载体, ExactAb™, 已验证, 1.0 mg/mL | 检测MKK4蛋白表达,用于评价基因沉默、组织表达和蛋白水平变化 | |
Recombinant JNK1/JNK2/JNK3 Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 见COA | 检测JNK家族蛋白,用于分析MKK4–MKK7信号重塑及JNK表达变化 | |
Recombinant JNK2 Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 0.3 mg/mL | 特异检测JNK2,辅助区分JNK1与JNK2在肝细胞应激和再生中的作用 | |
Recombinant Human JNK1 Protein | 无载体, 生物活性, ActiBioPure™, His标签, ≥85%(SDS-PAGE), 见COA | 用于JNK1酶活、蛋白互作及抑制剂选择性评价 | |
Recombinant ATF2 Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 0.6 mg/mL | 检测ATF2蛋白,用于评价JNK1下游促再生转录信号 | |
Recombinant ELK1 Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 0.5 mg/mL | 检测ELK1表达,用于分析MKK7–JNK1信号下游的转录反应 |
6.2 肝细胞增殖与能量状态检测产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 作用机制与研究定位 |
Recombinant Ki67 Antibody | 重组, ExactAb™, 已验证, 见COA | 检测处于活动细胞周期的肝细胞,用于评价HRX215处理后的肝细胞增殖 | |
Ki67 Mouse mAb | 无载体, ExactAb™, 无叠氮钠, 已验证, 见COA | 检测Ki67阳性细胞,可作为不同宿主来源的一抗选择 | |
PCNA Mouse mAb (TRITC) | ExactAb™, 已验证, 0.5 mg/mL | 检测DNA复制相关PCNA,适用于肝细胞增殖的荧光成像 | |
EdU细胞增殖检测试剂盒 (6-FAM) | BioReagent, 生物染色剂, 适用于荧光分析, 用于显微镜 | 通过EdU掺入标记新生DNA,定量进入S期的肝细胞 | |
CCK-8试剂盒 | BioReagent, for detection | 通过细胞代谢活性反映活细胞数量,用于筛选HRX215的有效浓度及细胞毒性范围 | |
增强型ATP检测试剂盒 | BioReagent | 定量细胞ATP水平,辅助评价再生肝细胞的能量状态和代谢功能 |
6.3 肝细胞凋亡、细胞损伤及功能状态检测产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 作用机制与研究定位 |
Caspase 3 Mouse mAb | 无载体, ExactAb™, 无叠氮钠, 已验证, 高性能, PBS Only, ≥95%(SDS-PAGE), 1.0 mg/mL | 检测Caspase-3蛋白,用于评价肝细胞凋亡通路变化 | |
Caspase 3活性检测试剂盒 | BioReagent, 适用于分析, 比色法 | 定量Caspase-3酶活,用于判断HRX215是否降低肝细胞执行性凋亡 | |
Caspase3/7 活性检测试剂盒 | BioReagent | 同时检测Caspase-3和Caspase-7活性,用于细胞或组织样本的凋亡定量 | |
一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒 (红色,Cy3) | BioReagent, 适用于荧光分析, 生物技术级 | 通过Cy3荧光标记DNA断裂,用于定位组织切片或细胞中的凋亡事件 | |
aladdin®555 TUNEL 细胞凋亡试剂盒(橙红色荧光) |
| 以橙红色荧光检测DNA断裂,适用于与增殖、细胞核或组织标志物进行多重染色 | |
TUNEL细胞凋亡检测试剂盒(显色法) | BioReagent, 用于显微镜, 比色法 | 通过显色反应检测DNA断裂,适用于肝组织凋亡的明场观察和病理分析 | |
乳酸脱氢酶细胞毒性检测试剂盒(WST-8法) | BioReagent, 即用型, for IP | 检测培养上清中的乳酸脱氢酶,定量肝细胞质膜损伤和细胞毒性 | |
TMRE [四甲基罗丹明,乙酯,高氯酸盐] | 适用于荧光分析, ≥90%(HPCE) | 检测线粒体膜电位,评价HRX215处理后肝细胞线粒体功能和存活状态 | |
Fluo-4 AM (钙离子荧光探针) | BioReagent, ≥90%(HPLC), 2mM | 检测胞质Ca²⁺变化,辅助分析肝切除或生长因子刺激后的早期信号反应 |
6.4 肝损伤、肝功能及纤维化检测产品
货号 | 名称 | 级别和纯度 | 作用机制与研究定位 |
四氯化碳 | 分析标准品, ≥99.9% | 用于四氯化碳定量、标准曲线及方法学对照,不作为肝损伤动物模型的直接给药试剂 | |
谷丙转氨酶活性检测试剂盒 (2,4-二硝基苯肼, 比色法) | BioReagent | 检测ALT活性,用于评价肝细胞损伤程度及肝切除后的功能恢复 | |
谷丙转氨酶(ALT/GPT)活性检测试剂盒(二硝基苯肼, 微量法) | BioReagent | 适用于小体积血清、细胞裂解液或组织匀浆中的ALT活性检测 | |
天门冬氨酸氨基转移酶活性检测试剂盒(赖氏, 比色法) | BioReagent | 检测AST活性,辅助评价肝组织损伤和再生过程中的细胞完整性变化 | |
羟脯氨酸 (HYP) 含量检测试剂盒(Ehrlich, 微量法) | BioReagent | 定量小体积肝组织样本中的羟脯氨酸,评价胶原沉积和肝纤维化程度 | |
羟脯氨酸含量检测试剂盒 (Ehrlich, 比色法) | BioReagent | 用于肝组织羟脯氨酸定量,分析HRX215对慢性肝纤维化的影响 |
HRX215通过抑制MKK4并增强MKK7–JNK1–ATF2/ELK1促再生信号,提高肝细胞增殖和存活能力,在大范围肝切除模型中降低了肝衰竭风险。其临床价值主要指向围手术期肝再生和小体积肝移植物,但长期安全性、肿瘤背景及不同基础肝病中的适用范围仍需进一步验证。
更多相关文章,详见下方:
[1] 3D生物打印驱动的再生医学:原理、关键技术与应用前景
参考文献
[1] Campana L, et al. Liver regeneration and inflammation: from fundamental science to clinical applications. Nat Rev Mol Cell Biol. 2021 Sep;22(9):608-624.
[2] Zwirner et al., First-in-class MKK4 inhibitors enhance liver regeneration and prevent liver failure, Cell (2024),https://doi.org/10.1016/j.cell.2024.02.023
[3] Wuestefeld T, et al. A Direct in vivo RNAi screen identifies MKK4 as a key regulator of liver regeneration. Cell. 2013 Apr 11;153(2):389-401.
危险品化学品经营许可证(带存储)